Summary
נכון להיום, הפיתוח של שיטות זיהוי בלוטת יותרת התריס (PG) מוגבל על ידי היעדר מודלים של בעלי חיים במחקר פרה-קליני. כאן, אנו מקימים מודל חולדות פשוט ויעיל להדמיית PG תוך ניתוחית ומעריכים את יעילותו על ידי שימוש בננו-חלקיקי תחמוצת ברזל כחומר ניגוד PG חדשני.
Abstract
זיהוי בלוטת יותרת התריס (PG) הוא צורך קריטי שלא נענה בכריתת בלוטת התריס. זיהוי PG מאתגר בניתוח בלוטת התריס מכיוון שהוא דומה בצבעו לבלוטת התריס. היעדר מודלים יעילים של בעלי חיים במחקר פרה-קליני מהווה מגבלה חמורה לפיתוח טכניקות זיהוי PG. פרוטוקול זה מאפשר הקמת מודל חולדות פשוט ויעיל לזיהוי PG. במודל זה, ננו-חלקיקים של תחמוצת ברזל שחורה (IONPs) מוזרקים באופן מקומי לבלוטת התריס ומתפזרים במהירות בתוך בלוטת התריס אך לא PG. PG מוכתם באופן שלילי ובלוטת תריס מוכתמת באופן חיובי ניתנים לזיהוי בקלות בעין בלתי ללא צורך במיקרוסקופ חיצוני. ניתן לזהות את המיקום של PG על ידי הגדלת ניגודיות הצבעים בין בלוטת התריס לבין PG, בהתבסס על הצבע של IONPs שחור. דגם חולדה זה הוא זול ונוח לזיהוי PG, וה-IONPs הם חומר ניגוד PG חדשני.
Introduction
בלוטת יותרת התריס (PG) היא בלוטות אנדוקריניות קטנות בצורת אליפסה הממוקמות בצווארם של בני אדם ובעלי חוליות אחרים, המייצרות ומפרישות הורמוני יותרת התריס כדי לווסת ולאזן את רמות הסידן והזרחן בדם ובעצמות1. לבני אדם יש בדרך כלל שני זוגות של PG הממוקמים מאחורי אונות בלוטת התריס במיקומים משתנים; גודל PG אנושי בדרך כלל מודד 6 מ"מ x 4 מ"מ x 2 מ"מ, עם משקל של כ 35-40 מ"ג2. הסרה או נזק של PG גורם hypoparathyroidism (HP), הפרעה אנדוקרינית המאופיינת hypocalcemia ורמות נמוכות או בלתי ניתנות לגילוי של הורמוני יותרת התריס, אשר גורמים למגוון רחב של תסמינים, החל התכווצויות כמו התכווצויות, שיניים מעוותות למחלות כליות כרוניות. חלק מהסיבוכים הללו הם קטלניים (למשל, אי ספיקת לב ופרכוסים)3,4,5; לפיכך, PG חיוני בוויסות חילוף החומרים של הגוף ובקיום החיים.
HP הוא אחד הסיבוכים השכיחים ביותר לאחר ניתוח צוואר קדמי, במיוחד בכריתת בלוטת התריס, טיפול מרפא מבוסס היטב לסרטן בלוטת התריס, שהוא הסרטן האנדוקריני הנפוץ ביותר בעולם 6,7. לאחר כריתת בלוטת התריס HP נגרמת בעיקר על ידי טראומה ישירה, איסכמיה, או הסרת PG בניתוח בגלל חוסר יכולת חמור להבחין באופן אמין PG מאונות בלוטת התריס ורקמות אחרות שמסביב (למשל, בלוטות לימפה וחלקיקי שומן היקפי) בזמן אמת בחדר הניתוח. בשנת 2021, Barrios et al. דיווחו על שיעור ממוצע של חתך שגוי PG של 22.4% בתוך 1,114 מקרים של כריתת בלוטת התריס, ואפילו מנתחים מנוסים עם שיעור שגיאות מינימלי של 7.7%8. שיעורי PG שגויים כה גבוהים עולים בקנה אחד עם דוחות דומים אחרים 9,10,11. לפיכך, כריתת בלוטת התריס השגויה היא גורם סיכון עצמאי ל- HP, חולף וקבוע לאחר הניתוח.
פיתוח שיטות יעילות לזיהוי PG תוך ניתוחי טומן בחובו את המפתח לטיפול בצורך רפואי קריטי זה שלא נענה; עם זאת, היא הוגבלה מאוד על ידי היעדר מודלים של בעלי חיים במחקר פרה-קליני. עד כה, רוב חקירות זיהוי PG תוך ניתוחיות בוצעו על חולים אנושיים ובעלי חיים גדולים (למשל, כלבים)12, שהם יקרים וקשים לקבלת אישור אתי, הרחבת מספרי הנבדקים ובדיקות חוזרות. בינתיים, לעכבר, מודל החוליות הנפוץ ביותר במחקר ביולוגי, יש PG קטן מאוד, עם גודל של פחות מ-1 מ"מ13. בשל מגבלה זו, דגמי PG של עכברים שימשו לעתים רחוקות במחקר זיהוי PG תוך ניתוחי.
מאמר זה מדווח על הקמת מודל חולדות פשוט, פשוט ויעיל למחקרי זיהוי PG תוך ניתוחיים. חקרנו את השימוש בחולדות מקומיות של Sprague-Dawley (SD) ללא כל שינויים כירורגיים או הנדסה גנטית כמודל אמין של בעלי חיים לבדיקת חומר ניגוד להדמיית PG, IONPs, בניתוח לכריתת בלוטת התריס. מודל החולדות הזה מדגים מבנה פיזיולוגי דומה מאוד של PG והמיקרו-סביבה הסובבת אותו לזה של בני אדם, והגודל של PG של חולדה גדול מספיק כדי שניתן יהיה להבחין בו חזותית בהשוואה לאלה של עכברים. לרוב החולדות יש PG אחד בכל צד של בלוטת התריס. הפשטות והיעילות של מודל חולדות זה הודגמו על ידי ביצוע הדמיית PG משופרת IONP תוך ניתוחית בניתוח לכריתת בלוטת התריס.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
כל המחקרים בבעלי חיים אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים (IACUC) של המכון לרפואה בסיסית וסרטן, האקדמיה הסינית למדעים. זהו ניתוח שאינו הישרדותי.
1. חיה
- השתמש בנקבת חולדת SD בת 6-8 שבועות, במשקל 250 גרם, להדמיית PG תוך ניתוחית.
2. הרדמה
- הפעל את מכונת ההרדמה.
- לפני שמתחילים, יש לוודא שרמת האיזופלורן מלאה במכשיר אידוי ההרדמה. לאחר מכן, הפעל את החמצן והגדר את קצב הזרימה ל 0.4-0.8 ליטר / דקה. יש להשרות הרדמה עם 3-5% איזופלורן ולשמור על איזופלורן 2% (קצב זרימה: 0.4-0.8 ליטר/דקה).
- הכניסו את חולדת ה-SD לקופסה של מכונת ההרדמה ובחרו את דגם התעלה כדי להתחיל בהרדמה של בעלי חיים.
- שימו לב לפעילות החולדות בתיבה. כאשר החולדה נופלת לתרדמת, העבירו אותה לקונוס האף כדי לשמור על הרדמה (תנוחת שכיבה ללא הכרה ללא רפלקס כאב ורפלקס הקרנית).
- השתמשו במסכת ההרדמה כדי לכסות את אפה של החולדה והעבירו את מכונת ההרדמה למצב מסכה כדי לשמור על בעל החיים תחת הרדמה במהלך הניתוח.
3. יציבה וקיבוע
- העבירו את החולדה המורדמת על וילון כירורגי על שולחן ניתוחים. הניחו כרית חימום שחוממה מראש מתחת לבעל החיים כדי לשמור על טמפרטורת הגוף של בעל החיים במהלך הניתוח.
- השתמשו בגומיות כדי לקבע את איברי החולדה לשולחן הניתוחים. הניחו כרית גלילית עשויה וילונות מתחת לכתפו של החולדה כדי להשעין את ראשה לאחור, ולחשוף לחלוטין את אזור הצוואר.
- יש למרוח משחת דמעות מלאכותית על שתי עיני החולדה כדי למנוע יובש במהלך ההרדמה.
4. הסרת שיער
- יש למרוח קרם דפילטורי על אזור הצוואר: עד לחלל התת-לסתי, עד לתהליך הקסיפואיד, ומשני הצדדים לחלק החיצוני של שריר הסטרנוקלידומסטואיד.
- לאחר 3 דקות, לנגב בעדינות את השיער ואת קרם depilatory עם טישו.
5. עיקור
- השתמש כדור צמר גפן יודופור כדי לחטא את אזור הניתוח 3 פעמים מאמצע הצוואר לאזור שמסביב. יש לחטא רק את האזור שממנו הוסר השיער.
6. הנחת וילונות כירורגית
- השתמש בוילון כירורגי כדי לכסות את אזור הניתוח של צוואר החולדה. שמור את החור של הווילון הכירורגי מיושר עם אזור החיטוי של החיה.
7. חתך
- אשר את מישור הניתוח של ההרדמה באמצעות חוסר רפלקס צביטת בוהן לפני ביצוע החתך. לאחר מכן, הכנס את הלהב לאזמל והשתמש באזמל כדי לבצע חתך אורכי בקו האמצע הקדמי של צוואר החולדה. יש לוודא שאורך החתך הוא כ-5 ס"מ ורק בדרמיס.
8. דיסקציה של רקמה תת עורית משריר צוואר הרחם הקדמי
- הרימו את העור לאורך שני צידי החתך.
- השתמש מספריים לחתוך לאורך לאורך linea alba cervicalis.
- השתמש במלקחיים כדי להפריד את שריר הסטרומיואיד ואת שריר הסטרנותיוריד.
9. קבע את שרירי הצוואר הקדמיים לשני הצדדים
- השתמש במלקחיים וסקולריים כדי להדק את שריר הסטרנוהיואיד המופרד ואת שריר הסטרנותיוס לפני הצוואר ולמשוך את הרקמה המהודקת החוצה.
- השתמש במשחזר או במחט כדי להעביר את התפר (3-0#) דרך הרקמה המהודקת, צור קשר וקיבע את התפר לווילון הכירורגי של שולחן הניתוחים.
10. לוקליזציה של בלוטת התריס
- אתר את סחוס בלוטת התריס ואת הסחוס הקריקואיד כגבול העליון באזור הניתוח. זהה את הסחוס של בלוטת התריס בהתבסס על צורת המגן שלו ואת הסחוס הקריקואיד בהתבסס על צורת הטבעת שלו.
- אתר את קנה הנשימה כגבול התחתון באזור הניתוח. חפשו את קנה הנשימה בחלק הקדמי והאמצעי של הצוואר, בהתבסס על צורת טבעת הסחוס הצינורית שלו.
- אתר את בלוטת התריס בין הגבול העליון לגבול התחתון - בלוטה אדומה בצורת פרפר בצד הנגדי של קנה הנשימה.
11. זיהוי חזותי של PG
- אתר את PG בצד העליון והחיצוני של בלוטת התריס. חפשו שני PG בצורת פיוזיפורם באורך של כ-1.2-2 מ"מ וברוחב של 1.0-1.5 מ"מ שהם אדמדמים אך בהירים יותר מבלוטת התריס שמסביב עם גבול מסוים.
- צלם תמונה קדמית של PG עם קנה הנשימה, בלוטת התריס והגרון כדי להשוות כמותית את ההשפעות של IONP לפני ואחרי ההזרקה.
- נתחו את החלק האחורי של הוושט, ולאחר מכן השתמשו במשענת כדי לחשוף את הצד הימני של ה-PG. צלם תמונה בצד ימין של PG עם בלוטת התריס וקנה הנשימה.
- החליפו את המשענת כדי לחשוף את הצד הנגדי של ה-PG וצלמו אותם בצד שמאל עם בלוטת התריס וקנה הנשימה.
12. הזרקת בלוטת התריס של IONPs
- השתמש מזרק אינסולין כדי להזריק באופן מקומי 10 μL של תרחיף IONPs (20 מ"ג / מ"ל במי מלח חוצצים פוספט) למרכז בלוטת התריס. לחץ בעדינות על אתר ההזרקה עם גזה במשך 5 שניות.
13. זיהוי PG לאחר הזרקת IONPs
- לאחר ההזרקה, שימו לב לדיפוזיה המהירה של ה-IONPs בתוך בלוטות התריס אך לא ל-PG, מכיוון שהיא מכתימה לרעה את ה-PG ומבדילה אותם מבלוטת התריס שמסביב.
- צלם תמונה קדמית של PG המוכתם באופן שלילי יחד עם קנה הנשימה, בלוטת התריס והגרון.
- צלם תמונות בצד שמאל ובצד ימין של PG המוכתם באופן שלילי באמצעות אותם הליכים שהוזכרו לעיל.
14. כריתה של הגרון וקנה הנשימה עם בלוטת התריס ו- PG
- לאחר שהחולדות שאפו עודף איזופלורן (5% איזופלורן במשך יותר מ-5 דקות) ונמצאות תחת הרדמה עמוקה, הרדימו אותן על ידי הזרקה תוך לבבית של 0.5 מ"ל של תמיסת אשלגן כלורי רווי.
- לאחר המוות, להסיר את הגרון, קנה הנשימה, בלוטת התריס, PG.
- מתחת למכסה אדים, הניחו את דגימות הגרון, קנה הנשימה, בלוטת התריס ו-PG שהוסרו בתמיסת פרפורמלדהיד 4% למשך 24 שעות.
15. לימודי היסטופתולוגיה
- לייבש את הרקמות ולהטביע אותם פרפין. פורסים לחלקים בעובי 5 מיקרומטר. אופים את הנתחים ב-37°C בתנור למשך לילה וב-65°C למשך שעה.
- הכתימו את המקטעים עם המטוקסילין ואאוזין (H&E) לאחר שטיפה 3X5 דקות עם 75%, 95%, 100% אלכוהול הדרגתי ושטיפה במים בטמפרטורת החדר.
- בקש מפתולוגים לבחון את החלקים המוכתמים ב- H&E תחת מיקרוסקופ אור.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
במודל זה של בעלי חיים, חתכנו בניתוח את צווארה של חולדת SD כדי לחשוף את קנה הנשימה, הגרון והרקמות שמסביב. לאחר מכן, בלוטת התריס הייתה ממוקמת חזותית משני צידי קנה הנשימה; הוא בצורת פרפר וגודלו כ-3 מ"מ x 5 מ"מ. זוג PG ממוקמים בדרך כלל בחלק העליון של בלוטת התריס, וצבעם דומה מאוד לזה של אונות בלוטת התריס, מה שמקשה מאוד להבחין ביניהם בעין בלתי (איור 1).
לאחר ההזרקה, חומר הניגוד (איור 1 ואיור 2), IONPs, מתפזר בקלות בתוך בלוטת התריס ומכתים אותה בשחור, אך אינו יכול לחדור ל-PG בשל צפיפות הרקמה הגבוהה שלהם. הפיזור הלא מאוזן של ה-IONPs בין PG לבלוטת התריס מניב ניגודיות בולטת, אשר ניתן לדמיין בקלות בעין בלתי ללא צורך במכשירים חיצוניים. איור 2 מראה תמונות מייצגות של PG המוכתמת באופן שלילי על-ידי IONPs בבלוטת התריס השמאלית של החולדה, שבהן הניגוד בין PG לבלוטת התריס היה מדהים, וגודל ה-PG של החולדה נקבע כ-2 מ"מ x 1 מ"מ.
לאחר המוות, הגרון של החולדה וקנה הנשימה, הוושט, בלוטת התריס וה-PG הסמוכים נותחו לצורך צביעה היסטופתולוגית. חלקים טוריים של הרקמה המכילה PG התקבלו לביצוע צביעת H&E. התמונות המוכתמות ב-H&E האלה (איור 3) חשפו שה-PG מועשר בתאים ראשיים מיושרים היטב, בעוד שבלוטת התריס כוללת לומן רופף רבים המצביע על צפיפות רקמה נמוכה בהרבה.
איור 1: המבנה הפיזיולוגי של PG והמיקרו-סביבה שלהם. המחשה סכמטית של PG אנושי ובלוטת התריס בהזרקה לפני (A) ואחרי IONPs (B). תמונות ביופסיה מייצגות של רקמות צוואר הרחם הקדמיות של חולדות, כולל PG, בלוטת התריס, קנה הנשימה והגרון בהזרקה לפני (C) ואחרי IONPs (D). תמונות נוספות פורסמו במחקר הקודם שלנו15. קיצורים: PG = בלוטות יותרת התריס; IONPs = ננו-חלקיקים של תחמוצת ברזל; IONP10 = IONPs בקוטר 10 ננומטר; קנה המידה הוא בסנטימטרים (ס"מ). אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 2: זיהוי PG משופר תוך ניתוחי IONPs. תמונות מייצגות של אונות בלוטת התריס של חולדות לא מטופלות (A) ו-IONPs מוזרק (B) בחולדה לפני ואחרי הזרקת IONPs. היעילות של זיהוי PG משופר של IONPs עקבית בהזרקת IONPs (D) הניתנת לשחזור. קיצורים: PG = בלוטת יותרת התריס; IONPs = ננו-חלקיקים של תחמוצת ברזל; IONP10 = IONPs בקוטר 10 ננומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 3: ניתוח היסטולוגי של בלוטת התריס המוזרק IONPs והמיקרו-סביבה שלה . (A) צילומי ex vivo מייצגים של רקמות צוואר הרחם הקדמיות של חולדות בהזרקת IONPs. (B) תמונות מייצגות מוכתמות H&E של חולדה PG. סרגל קנה מידה = 50 מיקרומטר. (C) תמונה מוגדלת של התיבה האדומה המקווקו בלוח B. סרגל קנה מידה = 20 מיקרומטר. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
אנו מדגימים טכניקת הדמיה שלילית מונחית IONPs של PG חולדה באמצעות IONPs שחורים, אשר הוזרקו מקומית במרכז בלוטת התריס ופוזרו בתוך בלוטת התריס אך לא PG. הוא מאפשר זיהוי ברור של PG בעיניים בלתי ללא סיוע של מיקרוסקופ כלשהו. למרות שעכברים טרנסגניים עם חלבון פלואורסצנטי ירוק מבוטא באופן סלקטיבי ב-PG דווחו13, המודל המתואר במאמר זה פשוט יותר לביצוע. זה לוקח רק ~ 1 דקות לכל חולדה לאחר ההזרקה, וניתן לראות הבדל ברור בין בלוטת התריס לבין PG בעיניים בלתי.
בנוסף, יתרון נוסף של מודל זה הוא שהעלות והקושי התפעולי נמוכים משמעותית עבור מודל חולדות זה מאשר עבור מודלים של בעלי חיים גדולים (למשל, כלבים12) המשמשים כיום במחקרים פרה-קליניים להערכת שיטות זיהוי PG חדשות. העלות הממוצעת של חולדת SD קרובה לזו של עכבר BALB/C, שהיא זולה יותר מפי 30 מכלב. יתרון זול זה של מודל החולדות מאפשר להרחיב את מספר הנבדקים ולבצע ניסויים חוזרים במחקר פרה-קליני, דבר שקשה במודלים של בעלי חיים גדולים. לעומת זאת, משקל הגוף הטיפוסי של חולדת SD הוא 300-350 גרם, שהוא גם קל פי 66 מזה של כלב (22-23 ק"ג)14.
הפרש כה גדול במשקל הגוף מפחית מאוד את קושי הניתוח במודל החולדות על פני מודלים של בעלי חיים גדולים, שכן ביצוע כריתת בלוטת התריס בבעלי חיים גדולים כמו כלבים דורש הליכי הרדמה וניתוח מורכבים יותר, מה שהופך אותו לקשה ומאתגר יותר מבחינה טכנית. הדרישה לניתוח (נדרשות מיומנויות כירורגיות בסיסיות) מציבה מגבלה למודל זה. IONPs ששימשו במחקר זה הראו בטיחות ביולוגית מעולה ומתכלה, כפי שדווח בעבר15. בסופו של דבר, אנו מקווים ששיטה זו של הדמיה שלילית של PG חולדות באמצעות IONPs תוכל לספק מודל פשוט ויעיל של בעלי חיים למחקרים פרה-קליניים הכוללים זיהוי PG, ובכך להקל על הפיתוח של טכניקות זיהוי PG חדשניות.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
פ.ג. וו.ז. הם ממציאים משותפים של בקשת פטנט שהוגשה על ידי בית החולים לסרטן של האקדמיה הסינית למדעים (בית החולים לסרטן ג'ג'יאנג) המבוססת על הפרויקט. המחברים האחרים מצהירים כי אין ניגודי עניינים.
Acknowledgments
מחקר זה נתמך על ידי הקרן הלאומית למדעי הטבע של סין (NSFC) (82172598), הקרן למדעי הטבע של מחוז ג'ג'יאנג, סין (LZ22H310001), פרויקט הכשרת כישרונות הבריאות 551 של ועדת הבריאות של מחוז ג'ג'יאנג, סין, ופרויקט המדע והטכנולוגיה הרפואיים והבריאותיים של מחוז ג'ג'יאנג, סין (2021KY110).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| alcohol | Li feng | 9400820067 | |
| anesthesia machine | RWD Company | R520IE | Machine number |
| blade | Daopian | TB-JZ-10# | |
| cylindrical pillow | made by ourselves | ||
| depilatory cream | Nair | TMG-001 | |
| electronic scale | Hong xingda | CN-HXD2 | |
| eosin | Thermo Fisher (Waltham, USA). | C0105S-2 | |
| erythromycin | Shuang ji (Beijing, China) | 200409 | |
| gauze | Fulanns | YY0331-2006 | |
| heating pad | Johon (ShenZhen,China) | JH-36-2006 | |
| hematoxylin | Thermo Fisher (Waltham, USA). | C0105S-1 | |
| insulin injection needle | Jiangyin NanquanMacromolecule | 20170702 | |
| iodophor cotton ball | HOYON | 19-6007 | |
| iron oxide nanoparticle solution | Zhongke Leiming Technology (Beijing, China) | Mag9110-05 | |
| isoflurane | Sigma Aldrich (St Louis USA). | 21112801 | |
| needle holder | Meijun | MH0587 | |
| operation table | BioJane | BJ-P-M | |
| paraformaldehyde solution | Biosharp | 21269333 | |
| rubber | G-CLONE | XT41050 |
|
| scanning machine | Olympus | Slideview VS200 | |
| surgical forceps | Suping | SPHC-0676 | |
| surgical knife handle | Aladdin | S3052-06-1EA | |
| surgical retractor | TOCYTO | 18-4010 | |
| surgical scissors | Suping | SPHC-0795 | |
| surgical towel | Along technology | YCKJ-RJ-036205 | |
| suture | Ethicon | SA84G | |
| suture with needle | Jinhuan (Shanghai,China) | F301 | |
| vascular forceps | Along technology | YCKJ-RJ-016218 | |
| Water Bath-Slide Drier | Hua su (Jinhua, China) | HS-1145 |
References
- Cope, O., Donaldson, G. A. Relation of thyroid and parathyroid glands to calcium and phosphorus metabolism. Study of a case with coexistent hypoparathyroidism and hyperthyroidism. The Journal of Clinical Investigation. 16 (3), 329-341 (1937).
- Mansberger, A. R., Wei, J. P. Surgical embryology and anatomy of the thyroid and parathyroid glands. Surgical Clinics of North America. 73 (4), 727-746 (1993).
- Koch, A., Hofbeck, M., Dorr, H. G., Singer, H. Hypocalcemia-induced heart failure as the initial symptom of hypoparathyroidism. Zeitschrift für Kardiologie. 88 (1), 10-13 (1999).
- Shoback, D. M., et al. Presentation of hypoparathyroidism: etiologies and clinical features. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 101 (6), 2300-2312 (2016).
- Arneiro, A. J., et al. Self-report of psychological symptoms in hypoparathyroidism patients on conventional therapy. Archives of Endocrinology Metabolism. 62 (3), 319-324 (2018).
- Olson, E., Wintheiser, G., Wolfe, K. M., Droessler, J., Silberstein, P. T. Epidemiology of thyroid cancer: a review of the national cancer database, 2000-2013. Cureus. 11 (2), 4127 (2019).
- Du, L., et al. Epidemiology of thyroid cancer: incidence and mortality in China, 2015. Frontiers in Oncology. 10, 1702 (2020).
- Barrios, L., et al. Incidental parathyroidectomy in thyroidectomy and central neck dissection. Surgery. 169 (5), 1145-1151 (2021).
- Sitges-Serra, A., et al. Inadvertent parathyroidectomy during total thyroidectomy and central neck dissection for papillary thyroid carcinoma. Surgery. 161 (3), 712-719 (2017).
- Sakorafas, G. H., et al. Incidental parathyroidectomy during thyroid surgery: an underappreciated complication of thyroidectomy. World Journal of Surgery. 29 (12), 1539-1543 (2005).
- Sahyouni, G., et al. Rate of incidental parathyroidectomy in a pediatric population. OTO Open. 5 (4), (2021).
- Erickson, A. K., et al. Incidence, survival time, and surgical treatment of parathyroid carcinomas in dogs: 100 cases (2010-2019). Journal of the American Veterinary Medical Association. 259 (11), 1309-1317 (2021).
- Bi, R., Fan, Y., Luo, E., Yuan, Q., Mannstadt, M. Two techniques to create hypoparathyroid mice: parathyroidectomy using GFP glands and diphtheria-toxin-mediated parathyroid ablation. Journal of Visualized Experiments. (121), e55010 (2017).
- Soulsby, S. N., Holland, M., Hudson, J. A., Behrend, E. N. Ultrasonographic evaluation of adrenal gland size compared to body weight in normal dogs. Veterinary Radiology & Ultrasound. 56 (3), 317-326 (2015).
- Zheng, W. H., et al. Biodegradable iron oxide nanoparticles for intraoperative parathyroid gland imaging in thyroidectomy. PNAS Nexus. 1 (3), 087 (2022).
