-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
عزل إيمونوماجنيتيك سريعة ومحددة من الماوس Oligodendrocytes الأولية
عزل إيمونوماجنيتيك سريعة ومحددة من الماوس Oligodendrocytes الأولية
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Rapid and Specific Immunomagnetic Isolation of Mouse Primary Oligodendrocytes

عزل إيمونوماجنيتيك سريعة ومحددة من الماوس Oligodendrocytes الأولية

Full Text
14,413 Views
09:32 min
May 21, 2018

DOI: 10.3791/57543-v

Rafael E. Flores-Obando1, Mona M. Freidin2, Charles K. Abrams2

1Program in Molecular and Cellular Biology,State University of New York Downstate Medical Center, 2Department of Neurology and Rehabilitation,University of Illinois at Chicago

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study details the immunomagnetic isolation of primary mouse oligodendrocytes, facilitating rapid and specific cell isolation for in vitro analysis. The technique targets O4 positive oligodendrocytes from neonatal mice to explore questions related to myelination and its associated diseases.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cell Biology
  • Myelination Studies

Background

  • Oligodendrocytes are crucial for myelin sheath formation in the nervous system.
  • Understanding their isolation enhances research into demyelinating diseases.
  • This method significantly improves cell culture purity and efficiency.
  • Immunomagnetic isolation aids in studying oligodendrocytic behavior and function.

Purpose of Study

  • To isolate and culture oligodendrocytes for in vitro experiments.
  • To investigate the cellular and molecular dynamics associated with oligodendrocytes.
  • To establish a method with high cell viability and purity for future research.

Methods Used

  • Immunomagnetic isolation method for primary oligodendrocyte cultures.
  • Mouse pups, specifically those aged 5-7 days, serve as the biological model.
  • No multiomics workflow was mentioned.
  • The isolation process aims for greater than 80% purity and takes approximately one hour.
  • Key steps include tissue dissociation, cell suspension preparation, and magnetic sorting.

Main Results

  • The method achieves a high yield and purity of oligodendrocytes suitable for subsequent experimental analyses.
  • Immunofluorescence staining reveals characteristic features of early proliferating oligodendrocytes.
  • Successful isolation enables the study of mechanisms involved in myelination and related disorders.
  • The implications of the findings underscore the method's role in evaluating oligodendrocyte functionality.

Conclusions

  • This study demonstrates an effective approach to isolating oligodendrocytes for neuroscience research.
  • The immunomagnetic isolation technique significantly enhances the purity of isolated cells.
  • Findings contribute to a deeper understanding of oligodendrocyte biology and implications for demyelinating conditions.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of immunomagnetic isolation?
Immunomagnetic isolation allows for rapid selection and purification of specific cell types, such as oligodendrocytes, improving research efficiency.
How is the cellular model implemented in this study?
Neonatal mouse pups are dissected to obtain oligodendrocytes, which are then isolated using immunomagnetic techniques for in vitro culture.
What types of outcomes are obtained from this method?
The isolation method yields high-purity oligodendrocytes, enabling detailed studies of their behavior, differentiation, and associated molecular dynamics.
How can this method be applied or adapted for other studies?
The immunomagnetic isolation technique can be adapted for isolating various cell types by changing the antibodies used for specific targeting.
Are there any limitations to this isolation method?
While effective, the method may require optimization for specific cell types or experimental conditions to ensure maximal yield and viability.
What are the key steps involved in the isolation process?
Critical steps include tissue dissociation, cell counting, and magnetic sorting, which together enable the efficient isolation of oligodendrocytes.
What implications do the findings have for future research?
By improving oligodendrocyte culture techniques, this study paves the way for investigating myelin-related diseases and oligodendrocyte biology.

يصف لنا عزلة إيمونوماجنيتيك oligodendrocytes الماوس الأساسي، الذي يسمح لعزل الخلايا في المختبر الثقافة سريعة ومحددة.

الهدف العام من هذه التقنية هو استخدام العزل المغناطيسي المناعي لاختيار O4 قليلة التغصن الإيجابية من صغار الفئران حديثي الولادة لتحليل الثقافة في المختبر. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في مجال العلوم العصبية المتعلقة بدراسة الأمراض التي تصيب المايلين وتكوين النخاع. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنها تسهل تحضير ثقافة الخلايا قليلة التغصن النهائية بنقاء أكبر من 80٪ في حوالي ساعة ساعات.

ابدئي باستخدام مقص تشريح صغير لقص الجلد على طول خط الوسط لفروة الرأس من خمسة إلى سبعة فأر نهار بعد الولادة. اسحب رفرف الجلد لكشف الجمجمة ، وقم بقص الجمجمة بعناية على طول خط الوسط من الفتحة في الخلف إلى المنطقة الأمامية. من الفتحة الموجودة في الجزء الخلفي من الجمجمة ، اقطع باتجاه كل تجويف في العين على طول قاعدة العظم واستخدم ملقطا دقيقا لإثارة القشرة برفق بعيدا عن الدماغ المتوسط.

بعد ذلك ، انقل القشرة إلى طبق زراعة أنسجة 60 ملم يحتوي على سبعة ملليلتر من B-27 Neurobasal A Medium. عندما يتم جمع كل الأدمغة ، انقل القشرة إلى طبق جديد لزراعة الأنسجة بحجم 60 ملم يحتوي على خمسة ملليلتر من المخزن المؤقت للتفكك ، واستخدم شفرة مشرط رقم 15 لتقطيع القشرة إلى قطع مليمتر مكعب واحد. احتضان قطع الدماغ في حاضنة 37 درجة مئوية 5٪ CO2 لمدة 20 دقيقة.

ثم أضف ملليلتر واحد من مصل نمو الأبقار لوقف التفاعل الأنزيمي. باستخدام ماصة مصلية سعة 10 ملليلتر، انقل ملاط الأنسجة إلى أنبوب مخروطي سعة 15 ملليلترا وقم بفصل أنسجة المخ برفق من ست إلى ثماني مرات باستخدام سحب العينات. اترك قطع الأنسجة المنفصلة تستقر لمدة دقيقتين إلى ثلاث دقائق.

ثم انقل المادة الطافية إلى أنبوب جديد. بعد ذلك ، أضف ثلاثة ملليلتر من Neurobasal A Medium ، المكملة بمصل نمو الأبقار و DNase I إلى الأنسجة ، واستخدم ماصة سعة خمسة ملليلتر لفصل الأنسجة بلطف مع مزيد من سحب العينات. كما ترى ، فإن قوة سحب العينات المناسبة ضرورية لضمان إنتاجية عالية من الخلايا القابلة للحياة.

إذا كان سحب العينات صعبا للغاية، فقد تكون قابلية الاستخدام منخفضة. بينما إذا كانت سحب العينات لطيفة جدا ، فقد يكون العائد الخلوي منخفضا. اترك قطع المناديل تستقر لمدة دقيقتين إلى ثلاث دقائق أخرى.

بعد ذلك ، انقل المادة الطافية إلى أنبوب جديد ، وأضف ثلاثة ملليلتر من Neurobasal A Medium الطازج ، مع استكمال مصل نمو الأبقار و DNase I إلى الأنسجة. افصل أنسجة المخ برفق باستخدام طرف ماصة P-1000 حتى لا يتبقى جزء كبير من الأنسجة، مع الحرص على تجنب الفقاعات. استخدم ماصة سعة 10 ملليلتر لتصفية محلول الخلية من خلال مصفاة خلية 70 ميكرون في أنبوب مخروطي سعة 50 مليلتر ، وقم بإحضار الحجم النهائي للتعليق أحادي الخلية إلى 30 مل مع Neurobasal A Medium الطازج ، مع استكمال مصل نمو البقر و DNase I. وحبيبات الخلايا العصبية عن طريق الطرد المركزي.

قم بإزالة جميع المواد الطافية العكرة باستثناء آخر خمسة إلى 10 ميكرولترات وأضف ثلاثة ملليلتر من Neurobasal A Medium المكمل بمصل نمو الأبقار إلى الخلايا. أعد تعليق الخلايا بعناية ورفع الحجم النهائي إلى 15 مل مع Neurobasal A Medium الطازج الذي يحتوي على 10٪ مصل نمو الأبقار. قم بتصفية محلول الخلية من خلال مصفاة خلية 40 ميكرون في أنبوب مخروطي جديد سعة 50 مليلتر ، وارفع الحجم النهائي إلى 30 مل باستخدام Neurobasal A Medium الطازج الذي يحتوي على 10٪ مصل نمو البقر.

بعد ذلك ، قم بتقسيم تعليق الخلية المفلترة بين أنبوبين مخروطيين سعة 15 مليلتر للطرد المركزي. وأعد تعليق الكريات في 2.5 مل من عازلة فرز الخلايا المغناطيسية المثلجة قبل تجميع الخلايا. بعد العد ، قم بالطرد المركزي للخلايا مرة أخرى ، وأعد تعليق الحبيبات في 90 ميكرولتر من المخزن المؤقت لفرز الخلايا المغناطيسية الطازجة لكل مرة واحدة في 10 إلى الخلايا السبع.

بعد ذلك ، أضف 10 ميكرولترات من الخرز المضاد ل 04 لكل مرة واحدة في 10 إلى الخلايا السبع ، واخلط محلول الخلية بنقرة لطيفة. بعد 15 دقيقة عند أربع درجات مئوية مع نقرة لطيفة كل خمس دقائق ، أضف برفق ملليلترين من المخزن المؤقت لفرز الخلايا المغناطيسية لكل مرة واحدة في 10 إلى الخلايا السبع للغسيل بالطرد المركزي ، وتخلص من المادة الطافية عن طريق الشفط بالفراغ بعناية. أعد تعليق الحبيبات في 500 ميكرولتر من المخزن المؤقت لفرز الخلايا المغناطيسية الطازجة لكل مرة 10 إلى الخلايا السبع ، وضع عمود فرز الخرز المغناطيسي بحجم مناسب في الفاصل المغناطيسي المقابل له.

ضع مصفاة 40 ميكرون على العمود واشطف المصفاة مسبقا بثلاثة ملليلتر من المخزن المؤقت لفرز الخلايا المغناطيسية ، واترك المخزن المؤقت يمر عبر العمود دون ترك العمود يجف. أضف الخلايا إلى المصفاة ، متبوعا بغسل مليلتر واحد باستخدام Magnetic Cell Sorting Buffer. اغسل العمود ثلاث مرات بثلاثة ملليلتر من المخزن المؤقت لفرز الخلايا المغناطيسية لكل غسلة ، ومرة واحدة باستخدام وسيط انتشار الخلايا قليلة التغصن.

بعد ذلك ، انقل العمود إلى أنبوب سعة 15 مليلتر ، واستخدم المكبس لطرد خمسة ملليلتر على الفور من وسيط انتشار الخلايا قليلة التغصن الطازج عبر العمود. بعد العد ، قم بتخفيف الخلايا إلى كثافة طلاء مناسبة ، واستبدل اللامينين من زلات الغطاء المطلي مسبقا في صفيحة 24 بئر ب 100 ميكرولتر من وسط انتشار الخلايا قليلة التغصن. احتضان الخلايا قليلة التغصن عند 37 درجة مئوية و 5٪ ثاني أكسيد الكربون2 لمدة لا تزيد عن 45 دقيقة لتعزيز التصاق الخلايا قليلة التغصن بزلات الغطاء.

بعد ذلك ، قم بإغراق كل بئر من صفيحة 24 بئرا ب 500 ميكرولتر من وسيط انتشار الخلايا قليلة التغصن لمدة 24 ساعة. في اليوم التالي ، استبدل المواد الطافية بوسيط تمايز الخلايا قليلة التغصن ، وأعد الخلايا إلى الحاضنة حتى تصبح جاهزة للتثبيت. بعد 24 ساعة من الطلاء ، تبدو الخلايا ثنائية الأقطاب أو ثلاثية الأقطاب تحت الفحص المجهري التبايني الطوري ، وهي سمة مميزة لانتشار الخلايا قليلة التغصن في المرحلة المبكرة.

يظهر تلطيخ التألق المناعي أنه بعد 24 ساعة من الطلاء ، تظهر غالبية هذه الخلايا قبل قليلة التغصن أيضا وضع العلامات على NG2 و O4 ، في حين أن وضع العلامات باستخدام GFAP والأجسام المضادة المضادة ل 01 أقل شيوعا ، مما يشير إلى أن غالبية الخلايا في هذه المرحلة ae الخلايا قبل قليلة التغصن مع عدد قليل قليل التغسنين غير الناضجة أو الناضجة. في 72 ساعة ، يبدو أن مورفولوجيا الخلايا قليلة التغصن أكثر تعقيدا مما كانت عليه في 24 ساعة ، وهناك تواتر أقل بكثير من الخلايا الإيجابية لعلامة الخلايا قليلة التغصن المبكرة ، NG2. أيضا ، تظهر معظم الخلايا تسمية O4 ، وما يقرب من نصف الخلايا ملطخة بجسم مضاد 01 في هذه المرحلة ، مما يشير إلى أن الخلايا تتمايز إلى نمط ظاهري أكثر نضجا.

والجدير بالذكر أن وجود الخلايا النجمية لا يزال منخفضا للغاية. تشير هذه النتائج إلى أنه بمرور الوقت ، تكون الخلايا قليلة التغصن المعزولة مغناطيسيا قادرة على التمايز في المختبر إلى المرحلة الثالثة من النضج مع القليل جدا من التلوث لأنواع الخلايا الأخرى ، مثل الخلايا النجمية. بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية عزل الخلايا قليلة التغصن الأولية من صغار الفئران حديثي الولادة باستخدام العزل المناعي المغناطيسي.

بمجرد إتقانها ، يمكن إكمال هذه التقنية في أربع ساعات ، إذا تم إجراؤها بشكل صحيح. شكرا للمشاهدة. حظا سعيدا في تجاربك.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأعصاب 135 قضية oligodendrocytes في المختبر الخلايا الأولية الماوس وعلم الأعصاب وتنقية أوليجوديندروسيتي العزلة إيمونوماجنيتيك

Related Videos

العزل المغناطيسي للخلايا الدبقية الصغيرة من أدمغة جرو الفأر

04:45

العزل المغناطيسي للخلايا الدبقية الصغيرة من أدمغة جرو الفأر

Related Videos

826 Views

عزل واستزراع الخلايا السليفة قليلة التغصن من قشرة دماغ جرو الفأر

04:39

عزل واستزراع الخلايا السليفة قليلة التغصن من قشرة دماغ جرو الفأر

Related Videos

785 Views

عزل الخلايا قليلة التغصن الأولية في الفئران باستخدام الخرز المناعي المغناطيسي

03:06

عزل الخلايا قليلة التغصن الأولية في الفئران باستخدام الخرز المناعي المغناطيسي

Related Videos

536 Views

عزل الخلايا الدبقية الصغيرة من الآفات المزيلة للميالين في دماغ الفأر باستخدام فرز الخلايا المنشطة المغناطيسية

04:09

عزل الخلايا الدبقية الصغيرة من الآفات المزيلة للميالين في دماغ الفأر باستخدام فرز الخلايا المنشطة المغناطيسية

Related Videos

544 Views

عزل المغناطيسي السريع والمكرر CD11b من الابتدائية الخلايا الدبقية الصغيرة مع الطهارة تعزيز وطلاقة

07:54

عزل المغناطيسي السريع والمكرر CD11b من الابتدائية الخلايا الدبقية الصغيرة مع الطهارة تعزيز وطلاقة

Related Videos

10.3K Views

توصيف والعزلة للماوس Microglia الأولية بكثافة التدرج الطرد المركزي

10:21

توصيف والعزلة للماوس Microglia الأولية بكثافة التدرج الطرد المركزي

Related Videos

20.1K Views

تشريح وعزل الفئران الدبقية من مناطق الجهاز العصبي المركزي المتعددة

08:00

تشريح وعزل الفئران الدبقية من مناطق الجهاز العصبي المركزي المتعددة

Related Videos

3.8K Views

العزل المغناطيسي للخلايا الدبقية الصغيرة من فأر حديث الولادة لمزارع الخلايا الأولية

07:23

العزل المغناطيسي للخلايا الدبقية الصغيرة من فأر حديث الولادة لمزارع الخلايا الأولية

Related Videos

3.7K Views

عزل الخلايا الدبقية الصغيرة الأولية للفأر عن طريق فرز الخلايا المنشطة مغناطيسيا في النماذج الحيوانية لإزالة الميالين

04:53

عزل الخلايا الدبقية الصغيرة الأولية للفأر عن طريق فرز الخلايا المنشطة مغناطيسيا في النماذج الحيوانية لإزالة الميالين

Related Videos

4.1K Views

العزل المتزامن لأنواع الخلايا المقيمة في الجهاز العصبي المركزي الرئيسي من الفئران المصابة بالتهاب الدماغ والنخاع المناعي الذاتي للبالغين

08:49

العزل المتزامن لأنواع الخلايا المقيمة في الجهاز العصبي المركزي الرئيسي من الفئران المصابة بالتهاب الدماغ والنخاع المناعي الذاتي للبالغين

Related Videos

2.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code