Summary
用于重组幽门螺杆菌一步法负纯化的高产量方法，通过使用被描述在批处理模式二乙氨基树脂幽门在大肠杆菌中过表达嗜中性粒细胞激活蛋白（HP-NAP）。通过该方法纯化的HP-NAP是疫苗，药物或诊断为H的发展有利幽门螺杆菌机相关的疾病。
Abstract
幽门螺杆菌中性粒细胞激活蛋白（HP-NAP）是幽门螺杆菌 （ 幽门螺旋杆菌 ）的主要致病因子。它在H的关键作用幽门通过激活几个固有的白细胞包括嗜中性粒细胞，单核细胞和肥大细胞诱导的胃窦炎。 HP-NAP的免疫原性和免疫调节性质使其成为H的潜在的诊断和疫苗候选幽门和肿瘤治疗的新的候选药物。为了获得用于其临床应用纯化的HP-NAP实质性数量时，一个有效的方法，以纯化该蛋白质具有高产率和高纯度的需要建立。
在这个协议中，我们已使用二乙基氨基乙基（DEAE） -离子交换树脂中描述的方法用于在大肠杆菌 （ 大肠杆菌 ）中过表达重组的HP-NAP一步法阴性色谱纯化（ 例如 ，交联葡聚糖）我ñ批处理模式。重组的HP-NAP构成近70％在大肠杆菌中总蛋白的大肠杆菌和几乎完全在细胞裂解的可溶部分在pH9.0回收。下，在pH为8.0的最佳条件下，大多数的HP-NAP在未结合部分被回收，同时从大肠杆菌的内源性蛋白大肠杆菌是由树脂有效地除去。
使用负模式间歇色谱用DEAE离子交换树脂此纯化方法产生来自大肠杆菌官能的HP-NAP 大肠杆菌在高产量和纯度的天然形式。纯化的HP-NAP可进一步用于预防，治疗，及H的预后幽门机相关的疾病以及癌症的治疗。
Introduction
幽门螺杆菌 （ 幽门螺旋杆菌 ）是胃炎和消化性溃疡的主要诱因。这种细菌也被列为被国际癌症研究机构，世界卫生组织的一部分，人类致癌物，在1994年据估计， 幽门的流行幽门螺杆菌感染是在发展中国家70％，在工业化国家1 30-40％。即使H的感染率幽门螺旋杆菌是减少在工业化国家，H.感染率幽门螺杆菌在发展中国家仍高2。标准治疗根除H.幽门螺杆菌感染是由质子泵抑制剂，PPI和两种抗生素，克拉霉素加阿莫西林或甲硝唑3的管理。然而，在H·抗生素抗性的上升幽门 -相关溃疡治疗敦促新的战略，以防止澳发展- [R治愈感染。针对H.预防和/或治疗性疫苗接种的发展幽门螺杆菌可以提供另一种方法来控制H.幽门螺杆菌感染。
幽门螺杆菌中性粒细胞激活蛋白（HP-NAP）， 幽门螺旋杆菌的主要致病因子，在H的水萃取物最初被鉴定幽门螺杆菌与激活嗜中性粒细胞粘附到内皮细胞和产生活性氧（ROS）4的能力。胃黏膜中性粒细胞浸润在H.发现幽门螺旋菌感染的患者活动性胃炎，可能会导致在胃中的炎症和组织损伤。因此，HP-NAP可以通过激活的中性粒细胞发挥 病理作用以诱导胃炎，这进一步导致溃疡或H.幽门螺杆菌机相关胃部疾病。然而，HP-NAP是临床应用5,6的潜在候选。由于免疫原性和免疫调节亲HP-NAP的perties，这种蛋白可用于开发疫苗，治疗剂，和诊断工具。临床试验已经对利用重组的HP-NAP已经进行作为对H的蛋白疫苗的成分之一幽门螺旋杆菌 。此疫苗由重组的HP-NAP，细胞毒素相关基因的（相关蛋白），并用氢氧化铝配制空泡毒素A（毒素）的蛋白质，并已进一步证明是安全和人类中7的免疫原性。此外，HP-NAP充当一个强有力的免疫调节剂，以引发T辅助1型（Th1细胞）偏振光的免疫应答用于癌症治疗8和下调的过敏反应和寄生虫感染9,10-诱发Th2细胞介导的免疫反应。作为用于诊断的，重组的HP-NAP-ELISA已经被应用到检测针对H. HP-NAP血清抗体幽门螺旋杆菌感染的患者11。一项研究表明，HP-NAP特异性抗体的血清水平从H. PY洛瑞感染的胃癌患者较显著高于从慢性胃炎患者12。另一项研究也显示，依靠HP-NAP血清抗体与非贲门胃腺癌13的存在相关联。因此，重组的HP-NAP-ELISA可应用于检测抗HP-NAP血清抗体为H.胃癌预后幽门螺旋杆菌感染的患者。两者合计，纯化的HP-NAP可进一步用于预防，治疗，及H的预后幽门机相关的疾病以及癌症的治疗。
在用于重组的HP-NAP的纯化的几种方法中的天然形式的大肠杆菌 （ 大肠杆菌 ）表达报道，到目前为止，还需要一第二纯化步骤涉及凝胶过滤层析，得到高纯度的HP-NAP 14-16 。这里，使用负模式间歇色谱法的方法二乙基氨基乙基（DEAE） -离子交换树脂是针对在大肠杆菌中过表达的HP-NAP的纯化描述大肠杆菌高产和高纯度。该纯化技术是基于结合宿主细胞蛋白质和/或比的HP-NAP至树脂等杂质。在pH 8.0，除HP-NAP几乎没有其他的蛋白质与未结合的级分回收。采用DEAE离子交换色谱法在负模式该纯化方法是简单的和时间通过允许经由一步法色谱重组的HP-NAP的纯化通过未结合部分的集合保存。除了HP-NAP，其他几个生物分子，如病毒17，免疫球蛋白G（IgG）的18，血红蛋白19，蛋白磷酸酶20，和毒力因子鞭毛蛋白21，也有报道可以通过离子交换层析在负纯化模式。负模式是优选的离子交换色谱法，如果杂质是次要本进行样品中组分待纯化22。在天然或重组生物分子净化负面色谱的应用程序已被最近检讨23。
本报告提供了在大肠杆菌重组HP-NAP表达一步步协议大肠杆菌 ，细胞的溶胞，并且使用负模式间歇色谱用DEAE离子交换树脂HP-NAP的纯化。如果需要纯化的蛋白是适合于在负模式离子交换层析，所描述的协议也可以适于作为起点的纯化过程的发展。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
人体的血液是由来自清大的机构审查委员会，台湾新竹书面知情同意和批准健康志愿者收集。
1. E.重组HP-NAP的表达大肠杆菌
- 准备含H. HP-NAP的DNA序列的质粒pET42a-NAP 幽门螺杆菌 26695菌株如前所述16。制备含有HP-NAP与如所描述的所需的点突变的DNA序列的质粒（见协议，步骤8）。
- 变换上述DNA质粒导入大肠杆菌的10毫微克大肠杆菌 BL21（DE3）感受态细胞通过45秒钟的热休克在42℃下，条纹的琼脂含有50μg/ ml卡那霉素，和在37℃下孵育板16小时板上的细胞上LB培养基（LB）。
- 接种在含有5毫升LB培养液的单独的管单菌落用50微克/ ml卡那霉素，并在3成长它们作为预培养7℃，用在170 rpm振摇16小时。
- 接种将2ml上述预培养的细胞在200ml LB肉汤中含有50μg/ ml卡那霉素的1升烧瓶中。孵育在37℃下接种培养瓶2小时以在170 rpm振摇直到在600nm的吸光度达到约用UV / VIS分光光度计检测0.4-0.5。
- 添加80微升的1M异丙基β-D-1-硫代半乳糖苷（IPTG）的入上述培养到0.4毫米的最终浓度来诱导的HP-NAP的表达。孵育3小时的培养，直到在600nm的吸光度达到约1.6-1.7。
- 离心15分钟将细胞以6000 xg离心在4℃下，以除去上清液。在-70℃下直到纯化存储细胞沉淀。
2.可溶性的蛋白质部分含有HP-NAP的制备
注意：所有以下步骤在4℃进行。
- 重悬将50ml单元p的在协议步骤1.6中ellet制备20毫升的20mM的Tris-HCl，pH值9.0，50mM NaCl中含有0.13毫苯甲磺酰氟（PMSF），0.03毫摩尔N-二的α-甲苯磺酰基-L-赖氨酰 - 氯甲基酮（TLCK），和0.03的毫N-甲苯磺酰基-L- phenylalaninyl-氯甲基酮（TPCK）在4℃下，如前所述16。
- 通过在4℃下通过细菌悬浮液通过在范围为15,000至20,000磅操作7次高压均质破坏细菌细胞。
- 离心机在30,000×g下细胞裂解物在4℃下1小时，通过使用超速离心分离可溶和不溶的蛋白组分。转移上清液作为可溶性蛋白质部分到烧杯中。
- 通过使用用牛血清白蛋白（BSA）的商业试剂盒为标准，根据制造商的说明Bradford方法测定可溶性蛋白级分的蛋白浓度。
- 添加177.6微升的1N HCl于20ml日。从协议步骤2.3获得的在pH 9.0将其pH值调节至pH 8.0È可溶性蛋白质部分。
- 添加20毫摩尔的Tris-HCl，pH值8.0，50mM NaCl中，以上述蛋白质溶液，使最终蛋白质浓度为0.5毫克/毫升。
3.重组HP-NAP从大肠杆菌纯化大肠杆菌通过用DEAE离子交换树脂负态批处理色谱
- 准备15毫升DEAE树脂。
- 权衡的DEAE树脂的出0.6克干粉，并暂停其在30毫升的20mM的Tris-HCl，pH值8.0，50mM NaCl中的在室温下至少1天。
- 离心树脂10,000× 下于4℃下1分钟。
- 取出并弃去上清液。
- 添加20毫摩尔的Tris-HCl，pH值8.0，50mM NaCl中15毫升
- 重复步骤协议3.1.2 3.1.4四次。
- 存储15毫升4℃用于后续结算树脂（在30ml Tris缓冲液的50％浆料）。
注意：所有下列步骤的s的在4℃下进行。
- 添加45毫升在协议步骤2.6制得的可溶性蛋白的〜15的树脂的溶液，并搅拌以在4℃下磁力搅拌1小时蛋白质/树脂浆。
- 倾蛋白质/树脂浆成装配有旋塞的塑料或玻璃柱。使树脂在重力作用下沉降。
- 打开活塞，使蛋白质溶液通过重力流柱运行，直到在塔中的液面刚好树脂上方。收集流通作为未结合的级分，其中包含纯化的HP-NAP。
- 加入15mL冰冷的20mM的Tris-HCl，pH值8.0，50mM NaCl中的入列。
- 打开活塞，以允许洗涤缓冲液，以通过重力流动柱运行，直到在塔中的液面刚好树脂上方。收集流通作为洗涤级分。
- 重复步骤协议3.5〜3.6四次收取额外的洗涤流份。
- 加入15mL冰冷的20mM的Tris-HCl，pH值8.0，1M NaCl的成一列。
- 打开活塞，使洗提缓冲液向通过重力流动柱运行，直到在塔中的液面刚好树脂上方。收集流通作为洗脱级分。
- 重复步骤协议3.8到3.9四次收取额外的洗脱份。
4.缓冲液交换，并通过与DEAE树脂负片模式批量层析纯化HP-NAP的内毒素清除
注：HP纯化-NAP在大肠杆菌中表达大肠杆菌需要进行缓冲液交换，并刺激嗜中性粒细胞之前去除内毒素。
- 执行透析用透析管以截留分子量14千道尔顿如前所述24至纯化的HP-NAP的缓冲器改变为Dulbecco氏磷酸盐缓冲盐水（D-PBS），pH值7.2，在4℃下。
- 通过syring过滤透析HP-NAP与流速在4℃下范围从2.5至4毫升/分钟，以除去内毒素附着到20ml的一次性注射器带正电的，亲水膜ê滤波器。
5.表征十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE），Western印迹，本地-PAGE，凝胶过滤层析，和圆二色光谱纯化的重组HP-NAP的分子性质
- 分析通过SDS-PAGE和免疫印迹用含有小鼠单克隆抗体单克隆16F4 25杂交瘤培养上清中纯化重组的HP-NAP如前所述24。
- 分析由天然-PAGE和凝胶过滤色谱法的纯化，HP-NAP如前所述26以检查其寡聚状态。
- 通过圆二色光谱分析纯化的重组的HP-NAP如前所述26以检查其二级结构。
6. HP-NAP的通过SDS-PAGE胶的银染纯度评价
- 根据银染色试剂盒的制造商的说明制备定影液，敏化溶液，银溶液，显影溶液，停止溶液和洗涤液。
- 根据银染色试剂盒的制造商的说明进行的SDS-PAGE凝胶的银染色。
- 获得凝胶的图像与成像系统。
7. ROS产生的测量中性粒细胞通过HP-NAP诱导
- 如前所述24通过葡聚糖沉降，随后通过密度梯度离心分离从人肝素化血液的人类嗜中性粒细胞。
- 中性粒细胞ROS产生的测量用鲁米诺依赖的化学发光法与HP-NAP刺激。
- 打开读板器，并设置在37℃的温度。放置一个空平底96孔白色板读板器腔室内部，使其温热至37℃。
- 制备刺激混合物在D-PBS中，pH值7.2，含0.9毫氯化钙 ，0.5mM的MgCl 2的，和13.3μM5-氨基-2,3-二氢-1,4-酞嗪二酮（鲁米诺）与存在和不存在从协议的步骤准备4.2μM0.67毒素去除HP-NAP。
- 调整从协议步骤制备的D-PBS，pH 7.2的7.1至2×10 6个细胞/ ml，含有5mM葡萄糖的人中性粒细胞的浓度。
- 加入50μl嗜中性粒细胞悬浮液到96孔而板的各孔中。
- 加入150微升从协议的步骤7.2.2制备成井含有嗜中性粒细胞在每孔5秒的时间间隔的刺激混合物。
- 通过使用平板读数器测量化学发光的为每孔5秒的时间内三小时发射。
8。聚合酶链反应（PCR）的DNA质粒窝藏HP-NAP突变体的建设为基础的站点直接诱变
注意：作为除了“沉默”限制性位点通过定点诱变（SDM） -协助软件28引入到诱变引先前27所述的基本生成基于PCR的位点直接诱变。
- 进行PCR反应。
- 加入10纳克质粒pET42a-NAP的， 表1中所列的诱变引物对的1微米，脱氧核苷三磷酸（dNTPs浓度），和3个单位的高保真PCR酶混合物的成PCR管含有去离子水的200微米，得到最终的25微升体积。
- 启动PCR循环在95 ℃下进行10分钟以变性模板DNA，并遵循具有12个扩增循环在95℃1分钟，Tm 值没有 -5℃1分钟，6分钟72 摄氏度 。
- 完成PCR循环用在的Tm第 -5℃下的退火步骤1分钟，在72℃的延伸步骤为30分钟。
- 治疗15微升的PCR产物用0.4微升DPN限制性酶于37℃2小时，然后用琼脂糖凝胶电泳分析2微升DPN我处理的PCR产物。
- 屏幕上的突变体。
- 变换2微升PCR产物到大肠杆菌大肠杆菌 DH5α感受态细胞的热休克45秒，在42℃。
- 涂布在含有50μg/ ml卡那霉素的LB平板转化细胞，并在37℃下孵育板16小时。
- 隔离从细菌菌落使用根据制造商的方案在商业碱性裂解试剂盒的质粒DNA。
- 治疗在协议步骤8.3.3用XhoI限制性酶分离，以验证根据制造商的协议所需的沉默突变的存在的质粒DNA。
- 序列质粒DNA核实协议步骤8.3.4用T7启动子引物，以确认根据制造商的协议的HP-NAP突变体的编码序列的校正。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
重组的HP-NAP的负纯化的实验程序的示意图在大肠杆菌表达大肠杆菌通过在分批模式下使用DEAE离子交换树脂是在图1所示。该纯化技术是基于结合宿主细胞蛋白质和/或比的HP-NAP至树脂等杂质。在pH 8.0，除了在其天然形式的HP-NAP几乎没有其他的蛋白质与未结合的级分（ 图2A和B）回收。纯化的HP-NAP中未结合的级分通过依靠HP-NAP（ 图2C）的抗体免疫检测，并用银染色（ 图2D），为确认其纯度高于97％。此外，纯化的重组的HP-NAP保持其低聚体形式由天然-PAGE（ 图2B）和凝胶过滤层析（ 图3A），为进行分析。圆二色谱spectroscop集成电路分析表明，纯化的蛋白质主要由α螺旋（ 图3B）的。此外，纯化的HP-NAP是能够刺激人中性粒细胞产生活性氧（ 图3C）的。因此，通过这种方法纯化的重组体的HP-NAP是在具有生物活性的天然形式。此外，这种消极模式批层析可用于纯化重组的HP-NAP与点突变在一个步骤中， 如图4所示，两种重组的HP-NAP Y101H和HP-NAP E97GY101H突变体， 其中模仿H.的HP-NAP 幽门螺杆菌菌株NCTC 11639和NCTC 11637菌株，分别由该负模式批处理色谱纯化，用纯度高于95％纯化。
用于使用DEAE树脂净化的HP-NAP负模式批次层析，纯化中使用的缓冲液的pH值应调整到8.0以确保大多数的HP-NAP的是存在于未结合的级分。 HP-NAP的较少量存在于未结合的级分，当缓冲液的pH值是高于或低于8.0（ 图5）降低。即使存在于未结合的级分的HP-NAP的纯度增加只是一点点pH值从7.0上升到9.0，本HP-NAP中未结合的级分的量为最高时，缓冲液的pH值为pH值8.0（ 图5）。从细胞裂解物上样到树脂上的可溶性蛋白质的量是该纯化的另一个重要因素。这里，该比率为1.5毫克每毫升树脂的蛋白质的用于实现以吸收从大肠杆菌杂质的树脂的最大容量大肠杆菌 （ 图6）。另外，纯度及由该负模式批处理色谱法得到的HP-NAP的产量可以大大提高在可溶性级分增加本HP-NAP的量大肠杆菌裂解液。重组的HP-NAP在时在pH9.0（ 图7）的细胞裂解可溶部分几乎完全恢复。即使在大肠杆菌中的重组HP-NAP的溶解度当细胞在缓冲液中裂解与pH值大于7.5（ 图7）更高大肠杆菌裂解物显着增加，小于90％的HP-NAP的存在作为可溶性蛋白时，细胞在缓冲液中裂解与pH高于9.0以下。
图1：HP-NAP在批处理模式负纯化DEAE树脂的原理简图净化启动了一批结合的过程。含有从细菌裂解物获得的HP-NAP可溶性蛋白质级分被加入到DEAE树脂用Tris缓冲液在pH 8.0预平衡。蛋白质/树脂浆，然后在4℃下温育1小时，轻轻mixi网NG。在温育中，宿主细胞蛋白质结合到树脂上。存在于未结合部分HP-NAP是不是离心收集或由重力流运行柱流出级分后取上清液获得。 请点击此处查看该图的放大版本。
图2：通过用DEAE离子交换树脂负态批处理色谱的HP-NAP的纯化的示例性结果的全细胞裂解物（W）和大肠杆菌的可溶性蛋白质部分的（S） 大肠杆菌 BL21（DE3）表示HP-NAP和DEAE离子交换层析含HP-NAP未结合部分（U）经SDS-PAGE（A），原生-PAGE（B）和免疫印迹（C）分析。未绑定压裂灰与蛋白质从1微克到10微克的指定量进行了分析上的银染色的SDS-PAGE凝胶（D）。分子量（M）以kDa是在染色的凝胶和印迹的左侧。 （从24参考改编） 点击此处查看该图的放大版本。
图3：结构和纯化从 大肠杆菌 重组HP-NAP功能研究 大肠杆菌 通过负片模式批量色谱法（A）的紫外吸收的个人资料记录从凝胶过滤柱洗脱HP-NAP。表明了在色谱图上标记蛋白的分子量。 （B）中的远紫外圆二色性SPECTHP-NAP的朗姆酒录得的波长范围为195到260纳米。 （C）人嗜中性粒细胞（1×10 5个细胞）以0.5μM的HP-NAP和D-PBS，pH 7.2的处理，如在37℃下的阴性对照。从嗜中性粒细胞产生的活性氧含量通过使用鲁米诺依赖性化学发光法连续地测量。数据被表示为平均值±一式三份实验的标准偏差。 （从24参考改编） 点击此处查看该图的放大版本。
图4：在 大肠杆菌 中表达的重组HP-NAP突变体的净化 大肠杆菌 通过负片模式批量色谱法 E.可溶性蛋白组分大肠杆菌 BL21（DE3）表达两种重组的HP-NAP Y101H和HP-NAP E97GY101H突变体和野生型的HP-NAP是由负模式色谱用DEAE树脂纯化。未结合的级分通过SDS-PAGE分析，相对分子质量（M）以kDa是在染色凝胶的左侧。 请点击此处查看该图的放大版本。
图5：缓冲液pH对在 大肠杆菌 中表达的重组的HP-NAP的净化效果 大肠杆菌 由负模式批处理色谱。 大肠杆菌的可溶级分大肠杆菌 BL21（DE3）表达的HP-NAP在pH9.0裂解分别调整至指定的pH范围从7.0到9.0和0.3毫克/毫升的蛋白质浓度。这些调整然后馏分，指示为负载，被装上的DEAE树脂在4℃下以纯化由负模式间歇色谱的重组的HP-NAP。未结合，洗涤和洗脱的级分通过SDS-PAGE进行分析。分子量（M）以kDa是在染色凝胶的左侧。 （从24参考改编） 点击此处查看该图的放大版本。
图6：蛋白质装载到DEAE树脂在 大肠杆菌 表达纯化重组HP-NAP金额的影响。 大肠杆菌 。 大肠杆菌的可溶性蛋白质部分大肠杆菌 BL21（DE3）表达的HP-NAP是根据装载到DEAE树脂 毫克蛋白质每树脂纯化recombi毫升的比例指示楠HP-NAP的负面模式一批色谱在pH值为8.0。可溶性蛋白质，表示为负载（L），未结合的级分（A）中，洗涤级分（B）和洗脱级分（C）的通过SDS-PAGE进行分析。分子量（M）以kDa是在染色凝胶的左侧。 （摘自参考24） 点击此处查看该图的放大版本。
图7：pH值对HP-NAP在 大肠杆菌 中的溶解度的影响 大肠杆菌 裂解物（A）E. 大肠杆菌 BL21（DE3）表达的HP-NAP是在指定的pH范围从7.0至9.5悬浮于冰冷的Tris-HCl缓冲液。细胞溶解，然后全细胞裂解物（W）的离心吨Ø分离可溶性部分（S）和不溶性颗粒（I）。蛋白通过SDS-PAGE进行分析。分子量（M）以kDa是在染色凝胶的左侧。 （B）重组的HP-NAP的溶解度在每个pH值下的全细胞裂解物的百分比从在SDS凝胶上通过，对于全细胞裂解物分成可溶部分（S）的HP-NAP带的强度计算出的（宽）。数据被表示为平均值±至少两个实验的标准偏差。 （摘自参考24） 点击此处查看该图的放大版本。
表1： 引物用于诱变。 请CLICK这里查看此表的放大版本。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
负模式批处理色谱用DEAE阴离子交换树脂这里介绍的是适用于在大肠杆菌中过表达重组的HP-NAP的纯化。在细胞裂解和纯化的步骤中使用的缓冲液的pH值是非常关键的，以确保的HP-NAP的在大肠杆菌中的溶解度大肠杆菌裂解液和重组HP-NAP从宿主细胞的杂质，分别为高效分离。细菌细胞应在pH9.0被裂解，和负纯化应在pH8.0下进行，以获得高产率和高纯度的HP-NAP。 HP-NAP的典型的恢复率为90％，和典型的纯度为95％的24。自HP-NAP是存在于未结合的级分，树脂的最小但足够的量应该被用来实现其吸收的杂质的最大容量。在我们的情况下，最大装载量为1.5毫克从大肠杆菌中可溶性蛋白每毫升大肠杆菌树脂裂解。
该proviDED协议旨在重组HP-NAP纯化从50毫升E.大肠杆菌文化。HP-NAP的产量大约为15毫克。纯化过程既可以按比例缩小或按比例增加相应。例如，两种重组的HP-NAP Y101H和HP-NAP E97GY101H突变体是从1ml的大肠杆菌纯化通过使用该负模式间歇色谱大肠杆菌培养，两者的HP-NAP突变体纯度高于95％的被收集未结合的级分（ 图4）获得的。这种消极的方式批量色谱法也被应用到从860毫升E.纯化重组HP-NAP 大肠杆菌培养。用DEAE负模式间歇色谱步骤的回收率达到97％，纯度高于90％。
HP-NAP在枯草芽孢杆菌表达（ 枯草芽孢杆菌 ）也已成功地由该DEAE负模式批处理色谱法在一个步骤26。在我们的B.枯草表达系统，HP-NAP的表达水平是低的。 HP-NAP仅占5％左右来自细菌裂解的总可溶性蛋白。即使针对纯化的HP-NAP是存在少量，HP-NAP具有高于90％，可以通过减少从装载到树脂细胞裂解物的蛋白质的量的比率可以得到纯度有效地除去几乎所有的内源性从蛋白质B.枯草 26。因此，该方法也可应用于净化在其它细菌宿主中表达的重组的HP-NAP。
几种方法已被报道用于重组的HP-NAP在其天然形式14-16的纯化。然而，需要额外的凝胶过滤层析步骤，以获得高纯度的HP-NAP。这种负面层析纯化能够有效地在一个步骤产生功能性重组HP-NAP高纯度。在additi上，脱盐步骤无需由于在未结合部分的低盐浓度。分批模式纯化也可以免除对柱的需要。因此，使用DEAE树脂这种消极的方式批量色谱提供了一种简单而有效的方法来净化HP-HAP在高产量和纯度的天然形式。通过该方法纯化的HP-NAP可进一步用于疫苗，新的药物和诊断的发展，为H.幽门 -相关疾病或用于其他新的治疗应用。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Material | |||
| pET42a-NAP | N/A | N/A | prepared as described in Supplementary data of Refernce 15 http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0006291X08018317 |
| E. coli BL21 (DE3) | Thermo Fisher Scientific Inc | C6000-03 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/C600003 |
| Kanamycin | Amresco | 25389-94-0 | http://www.amresco-inc.com/KANAMYCIN-SULFATE-0408.cmsx |
| Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) | MD Biomedical Inc | 101-367-93-1 | http://www.antibody-antibodies.com/product_det.php?id=238064&supplier=search&name =IPTG%20 |
| phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) | Sigma-Aldrich | 10837091001 | protease inhibitor http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/roche/PMSFRO?lang=en®ion=TW |
| N-alpha-tosyl-L-lysinyl-chloromethylketone (TLCK) | Sigma-Aldrich | T7254 | protease inhibitor http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/t7254?lang=en®ion=TW |
| N-tosyl-L-phenylalaninyl-chloromethylketone (TPCK) | Sigma-Aldrich | T4376 | protease inhibitor http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/t4376?lang=en®ion=TW |
| Protein standard (bovine serum albumin) | Sigma-Aldrich | P5619 | a standard protein for Bio-Rad Protein Assay http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/fluka/p5619?lang=en®ion=TW |
| DEAE–Sephadex A-25 chloride form | Sigma-Aldrich | A25120 | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/a25120?lang=en®ion=TW |
| Spectrum/Por dialysis tubing | Spectrum Laboratories | 132720 | with molecular weight cutoff of 14 kDa http://www.spectrumlabs.com/dialysis/RCtubing.html?Pn=132720; |
| Acrodisc® units with Mustang® E membrane | Pall | MSTG25E3 | for endotoxin removal; operated at flow rates ranging from 1 to 4 ml/min http://www.pall.com/main/laboratory/product.page?id=19992 |
| mouse monoclonal antibody MAb 16F4 | N/A | N/A | raised against the purified HP-NAP of H. pylori strain NCTC 11637 as described in Refernce 23; A gift from Drs. Evanthia Galanis and Ianko D. Iankov at Mayo Clinic, USA http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0264410X10017585 |
| HiLoad 16/600 Superdex 200 pg | GE Healthcare Life Sciences | 28989335 | for gel filtration chromatography http://www.gelifesciences.com/webapp/wcs/stores/servlet/productById/en/GELifeSciences-tw/28989335 |
| PlusOne silver staining kit, protein | GE Healthcare Life Sciences | 17-1150-01 | http://www.gelifesciences.com/webapp/wcs/stores/servlet/productById/en/GELifeSciences-tw/17115001 |
| Ficoll-Paque PLUS | GE Healthcare Life Sciences | 17-1440-02 | for density gradient centrifugation to purify human neutrophils http://www.gelifesciences.com/webapp/wcs/stores/servlet/catalog/en/GELifeSciences-tw/products/AlternativeProductStructure _16963/17144002 |
| Flat bottom 96-well white plate | Thermo Fisher Scientific Inc | 236108 | http://www.thermoscientific.com/en/product/nunc-f96-microwell-black-white-polystyrene-plate.html |
| Luminol | Sigma-Aldrich | A8511 | protected from light http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/a8511?lang=en®ion=TW |
| Expand long template PCR system | Sigma-Aldrich | 11681834001 | source of High Fidelity PCR enzyme mix http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/roche/elongro?lang=en®ion=TW |
| Dpn I | New England Biolabs | R0176S | https://www.neb.com/products/r0176-dpni |
| Xho I | New England Biolabs | R0146S | https://www.neb.com/products/r0146-xhoi |
| E. coli DH5α | Thermo Fisher Scientific Inc | 18265-017 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/18265017 |
| Name | Company | Product Number | Comments |
| Equipment | |||
| U-2800 double beam UV/VIS spectrophotometer | Hitachi | N/A | out of market and upgraded to a new model http://hitachi-hta.com/products/life-sciences-chemical-analysis/uvvisible-spectrophotometers |
| EmulsiFlex-C3 high pressure homogenizer | Avestin Inc | C315320 | http://www.avestin.com/English/c3page.html |
| Hitachi Koki himac CP80WX general ultracentrifuge | Hitachi Koki Co | 90106401 | for separation of the soluble and insoluble protein fractions from E. coli lysates http://centrifuges.hitachi-koki.com/products/ultra/cp_wx/cp_wx.html |
| ÄKTA FPLC | GE Healthcare Life Sciences | 18-1900-26 | for gel filtration chromatography http://www.gelifesciences.com/webapp/wcs/stores/servlet/productById/en/GELifeSciences-tw/18190026 |
| Aviv model 62ADS CD spectrophotometer | Aviv Biomedical | N/A | out of market and upgraded to a new model http://www.avivbiomedical.com/circular.php |
| LAS-3000 imaging system | Fujifilm | N/A | discontinued and replaced http://www.gelifesciences.com/webapp/wcs/stores/servlet/productById/en/GELifeSciences-tw/28955810 |
| Wallac 1420 (Victor2) multilabel counter | Perkin-Elmer | 1420-018 | for chemiluminescence detection http://www.perkinelmer.com/catalog/product/id/1420-018 |
References
- Centers for Disease Control and Prevention. Chapter 3, Infectious diseases related to travel. CDC Health Information for International Travel 2016. Brunette, G. W., et al. , Oxford University Press. (2015).
- Bauer, B., Meyer, T. F. The human gastric pathogen Helicobacter pylori its association with gastric cancer and ulcer disease. Ulcers. 2011, 340157 (2011).
- Malfertheiner, P., et al. Management of Helicobacter pylori infection--the Maastricht IV/ Florence Consensus Report. Gut. Gut. 61 (5), 646-664 (2012).
- Evans, D. J. Jr., et al. Characterization of a Helicobacter pylori neutrophil-activating protein. Infect. Immun. 63 (6), 2213-2220 (1995).
- Fu, H. W. Helicobacter pylori neutrophil-activating protein: from molecular pathogenesis to clinical applications. World J. Gastroenterol. 20 (18), 5294-5301 (2014).
- de Bernard, M., D'Elios, M. M. The immune modulating activity of the Helicobacter pylori HP-NAP: Friend or foe? Toxicon. 56 (7), 1186-1192 (2010).
- Malfertheiner, P., et al. Safety and immunogenicity of an intramuscular Helicobacter pylori in noninfected volunteers: a phase I study. Gastroenterology. 135 (3), 787-795 (2008).
- Codolo, G., et al. HP-NAP inhibits the growth of bladder cancer in mice by activating a cytotoxic Th1 response. Cancer Immunol. Immunother. 61 (1), 31-40 (2012).
- Codolo, G., et al. The neutrophil-activating protein of Helicobacter pylori Th2 inflammation in ovalbumin-induced allergic asthma. Cell. Microbiol. 10 (11), 2355-2363 (2008).
- Del Prete,, G,, et al. Immunosuppression of TH2 responses in Trichinella spiralis by Helicobacter pylori neutrophil-activating protein. J. Allergy Clin. Immunol. 122 (5), 908-913.e5 (2008).
- Tang, R. X., Luo, D. J., Sun, A. H., Yan, J. Diversity of Helicobacter pylori in expression of antigens and induction of antibodies. World J. Gastroenterol. 14 (30), 4816-4822 (2008).
- Long, M., Luo, J., Li, Y., Zeng, F. Y., Li, M. Detection and evaluation of antibodies against neutrophil-activating protein of Helicobacter pylori in patients with gastric cancer. World J. Gastroenterol. 15 (19), 2381-2388 (2009).
- Song, H., et al. A CagA-independent cluster of antigens related to the risk of noncardia gastric cancer: associations between Helicobacter pylori and gastric adenocarcinoma explored by multiplex serology. Int. J. Cancer. 134 (12), 2942-2950 (2014).
- Kottakis, F., et al. Helicobacter pylori neutrophil-activating protein activates neutrophils by its C-terminal region even without dodecamer formation, which is a prerequisite for DNA protection--novel approaches against Helicobacter pylori inflammation. FEBS J. 275 (2), 302-317 (2008).
- Thoreson, A. C., et al. Differences in surface-exposed antigen expression between Helicobacter pylori isolated from duodenal ulcer patients and from asymptomatic subjects. J. Clin. Microbiol. 38 (9), 3436-3441 (2000).
- Wang, C. A., Liu, Y. C., Du, S. Y., Lin, C. W., Fu, H. W. Helicobacter pylori neutrophil-activating protein promotes myeloperoxidase release from human neutrophils. Biochem. Biophys. Res. Commun. 377 (1), 52-56 (2008).
- Iyer, G., et al. Reduced surface area chromatography for flow-through purification of viruses and virus like particles. J. Chromatogr. A. 1218 (26), 3973-3981 (2011).
- Wongchuphan, R., et al. Purification of rabbit polyclonal immunoglobulin G using anion exchangers. Process Biochem. 46 (1), 101-107 (2011).
- Lu, X., Zhao, D., Su, Z. Purification of hemoglobin by ion exchange chromatography in flow-through mode with PEG as an escort. Artif. Cells Blood Substit. Immobil. Biotechnol. 32 (2), 209-227 (2004).
- Brooks, S. P., Storey, K. B. Purification and characterization of a protein phosphatase that dephosphorylates pyruvate kinase in an anoxia tolerant animal. Biochem. Mol. Biol. Int. 38 (6), 1223-1234 (1996).
- Gewirtz, A. T., et al. Salmonella typhimurium translocates flagellin across intestinal epithelia, inducing a proinflammatory response. J. Clin. Invest. 107 (1), 99-109 (2001).
- Levison, P. R. Large-scale ion-exchange column chromatography of proteins: Comparison of different formats. J. Chromatogr. B Analyt. Technol. Biomed. Life Sci. 790 (1-2), 17-33 (2003).
- Lee, M. F. X., Chan, E. S., Tey, B. T. Negative chromatography: Progress, applications and future perspectives. Process Biochem. 49 (6), 1005-1011 (2014).
- Yang, Y. C., et al. High yield purification of Helicobacter pylori neutrophil-activating protein overexpressed in Escherichia coli. BMC biotechnol. 15 (23), (2015).
- Iankov, I. D., Haralambieva, I. H., Galanis, E. Immunogenicity of attenuated measles virus engineered to express Helicobacter pylori neutrophil-activating protein. Vaccine. 29 (8), 1710-1720 (2011).
- Shih, K. S., et al. One-step chromatographic purification of Helicobacter pylori protein expressed in Bacillus subtilis. PLoS One. 8 (4), e60786 (2013).
- Liu, H., Naismith, J. H. An efficient one-step site-directed deletion, insertion, single and multiple-site plasmid mutagenesis protocol. BMC biotechnol. 8 (91), (2008).
- Karnik, A., Karnik, R., Grefen, C. SDM-assist software to design site-directed mutagenesis primers introducing 'silent' restriction sites. BMC bioinformatics. 14 (105), (2013).
