Name: 由紫外线引起的复制中间体的可视化 E。大肠杆菌使用二维的琼脂糖凝胶电泳分析 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-21T16:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 36 s
Description: 学习使用二维琼脂糖凝胶电泳技术可视化紫外线诱导的大肠杆菌DNA复制中间体。该方法通过Southern杂交分析揭示DNA损伤修复过程中的结构动态变化。

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本实验室的工作得到了美国国家科学基金会 CAREER 奖 MCB0551798 和 NIGMS-NIH AREA 资助 R15GM86839 的支持。

1. 生长与紫外照射。
<ol>
	<li>取200μl在DGCthy培养基（Davis培养基1中添加0.4%葡萄糖、0.2%酪蛋白氨基酸和10 μg/ml胸腺嘧啶）中过夜培养并含有pBR322质粒的新鲜培养物，加入100 μg/ml氨苄青霉素，离心收集菌体。将菌体沉淀重悬于200μl不含氨苄青霉素的DGCthy培养基中，并用于接种20 ml DGCthy培养基。</li>
	<li>在37°C摇床培养箱中，将培养物在无氨苄青霉素选择压力下培养至OD600为0.5（约5 × 108 个细胞/ml）。在无氨苄青霉素条件下培养可避免对某些突变体中可能出现的异常或无功能复制中间体产生选择性压力。此外，若使用紫外光诱导损伤，则必须从培养基中去除氨苄青霉素，因其在该波长范围内有强吸收，会屏蔽细胞，降低有效紫外剂量。</li>
	<li>在黄光灯下操作，将培养物置于直径15 cm的培养皿中，并放置于旋转平台上以保持搅动。将培养皿置于距离15瓦杀菌灯一定距离处，使照射强度约为1 J/m²/sec（使用UVC光度计测定），进行照射。培养物接受50 J/m²剂量照射后，立即放回37°C摇床培养箱中继续培养直至实验结束。该剂量平均在每4.5 kb单链DNA中产生1个环丁烷嘧啶二聚体。黄光照明可防止光复活——即光解酶介导的环丁烷嘧啶二聚体的修复。</li>
</ol>
2. DNA 提取
<ol>
	<li>当需要检测复制中间体时，取 0.75 ml 培养物加入到 0.75 ml 冰冷的 NET30 缓冲液（100 mM NaCl、10 mM Tris，pH 8.0、30 mM EDTA）中，并置于冰上直至时间进程实验结束。我们通常进行 90 分钟的时间进程实验，分别在 0、15、30、45、60 和 90 分钟取样。EDTA 和低温可有效终止复制及核苷酸切除修复过程。</li>
	<li>将每个样品离心沉淀后，重悬于 150 μl 含 1.5 mg/ml 溶菌酶和 0.2 mg/ml RNaseA 的 TE 缓冲液（10 mM Tris，pH 8.0，1 mM EDTA）中，在 37°C 裂解 20 分钟。随后加入 10 μl 蛋白酶 K（10 mg/ml）和 10 μl 20% Sarkosyl，继续孵育 1 小时。蛋白酶 K 和 Sarkosyl 可在苯酚抽提前帮助释放可能与膜或蛋白质结合的 DNA 片段。由于活跃复制的 DNA 常与蛋白质或膜复合物结合，此步骤有助于提高回收复制片段的得率。</li>
	<li>向每个样品中加入 2 倍体积的苯酚，轻轻颠倒离心管混匀 5 分钟。然后加入 2 倍体积的氯仿/异戊醇（24:1），再次轻轻颠倒混匀 5 分钟。</li>
	<li>将样品在微量离心机中以 14,000 rpm 离心 5 分钟，收集上层水相转移至新管中。随后加入 4 倍体积的氯仿/异戊醇（24:1），轻轻颠倒混匀 5 分钟，再次以 14,000 rpm 离心 5 分钟。</li>
	<li>将各样品的上层水相进行透析：取 100 μl 样品点样于漂浮在盛有 250 ml 0.1X TE 的烧杯中的 47 mm Whatman 0.025 μm 孔径滤膜上，透析 1 小时。由于含有单链区域或分支点的复制结构更易受到剪切力破坏，我们通常用剃刀片切去移液器吸头末端以增大开口，从而最小化剪切力。一般情况下，在 DNA 经限制性内切酶消化前应尽量减少移液操作。</li>
	<li>每个样品随后用 PvuII（New England Biolabs）进行消化，该酶可在复制起点下游将质粒线性化。</li>
	<li>上样前，向每个样品中加入 100 μl 氯仿和 20 μl 含溴酚蓝和二甲苯蓝的 6X 上样染料，混匀。然后取 40 μl 含上样染料的水相上样至琼脂糖凝胶。为避免结构偏差、人工假象及 DNA 剪切，本分离流程在细胞裂解后不包含任何富集单链区域、沉淀或浓缩 DNA 样品的步骤。</li>
</ol>
3. 二维凝胶电泳与Southern分析。
<ol>
	<li>二维琼脂糖凝胶分析方法经文献3改良而来。第一维电泳中，将酶切后的DNA样品在1× TBE缓冲液中，以1 V/cm的电压通过0.4%琼脂糖凝胶进行电泳。1升10× TBE贮存液的配制如下：
 <ul>
		<li>108 g Tris碱</li>
		<li>55 g 硼酸</li>
		<li>40 ml 0.5 M EDTA（pH 8.0）</li>
 </ul>
</li>
	<li>在第一泳道加入λ Hind III DNA分子量标准，随后每隔一泳道加样。第一维电泳通常运行约12–15小时。跳过泳道加样有助于在第二维电泳时更方便地切出所需泳道。低电压和低浓度琼脂糖凝胶主要根据DNA片段的大小进行分离。</li>
	<li>进行第二维电泳时，使用大型切肉刀从第一维凝胶中切出泳道。含有λ Hind III标记的第一泳道可用溴化乙锭染色。以λ Hind III标记为参照，裁剪并弃去预计线性化质粒迁移位置以下的凝胶区域。在本实验条件下，我们发现线性化的pBR322迁移位置略高于二甲苯青染料条带。</li>
	<li>进行第二维凝胶制备时，将每条泳道水平放置于空的凝胶制胶槽顶部。配制1.0%琼脂糖的1× TBE溶液，并冷却至55°C。此时将该凝胶溶液倒入制胶槽中，确保完全覆盖凝胶条带。待凝胶凝固后，在允许缓冲液循环的电泳装置中以6.5 V/cm的电压进行电泳。第二维电泳通常运行约5.5–7小时。高电压和高浓度琼脂糖凝胶可有效根据DNA片段的构象以及大小进行分离。非线性构象的DNA在第二维中迁移较慢。</li>
	<li>电泳结束后，将凝胶用H2O冲洗，随后在400 ml 0.25 M盐酸中洗涤两次，每次15分钟；再用H2O冲洗，然后在400 ml 0.4 M NaOH中洗涤两次，每次30分钟。酸处理可使DNA分子部分切口化，产生更小的片段，从而提高转膜效率。由于DNA复制中间体分子量大且构象特殊，此步骤必不可少。</li>
	<li>将凝胶中的DNA转移至Hybond N+尼龙膜4上。我们采用向下碱转移系统，使用0.4 M NaOH。具体操作：将两张浸透0.4 M NaOH的滤纸置于大量纸巾堆上，尼龙膜也浸入0.4 M NaOH后放置于滤纸上，再小心将凝胶覆盖其上，随后覆盖另一张用NaOH溶液润湿的滤纸。最后，将一张长条状润湿滤纸横跨于顶部，其两端分别浸入盛有1 L 0.4 M NaOH溶液的容器中作为引流芯。DNA转移通常持续6–12小时。</li>
	<li>取出尼龙膜，用5× SSC缓冲液洗涤20–30秒，然后放入含有10.5 ml预杂交液的杂交滚瓶中。将膜在42°C下旋转孵育超过6小时。预杂交液配方如下：
	<ul>
		<li>5.0 ml 甲酰胺</li>
		<li>0.5 ml 20% SDS</li>
		<li>2.5 ml 20× SSC*</li>
		<li>2.0 ml 50× Denhardt's*</li>
		<li>0.5 ml 鲑精DNA（10 mg/ml） *SSC和Denhardt's溶液的配制方法见文献5</li>
 </ul>
 </li>
	<li>在预杂交期间，按照Roche公司提供的说明书，使用α标记的[32-P]-dCTP通过缺口平移法对1 μg pBR322质粒进行32P标记。将放射性标记的探针（100 μl）置于螺旋盖微量离心管中，在98°C孵育10分钟使其变性，随后立即置于冰上。</li>
	<li>将变性后的探针加入5.9 ml杂交液中，杂交液组成如下：
 	<ul>
		<li>3.0 ml 甲酰胺</li>
		<li>1.5 ml SSC</li>
		<li>1.0 ml H2O</li>
		<li>0.15 ml 50× Denhardt's</li> 
		<li>0.10 ml 20% SDS</li>
		<li>0.15 ml 10 mg/ml 鲑精DNA</li>
	</ul>
</li>
	<li>倒出滚瓶中的预杂交液，加入杂交液。将滚瓶放回42°C孵育箱中，旋转孵育超过12小时。</li>
	<li>倒出杂交液，随后在滚瓶中用约150 ml含0.5× SSC和0.1% SDS的洗涤液，在42°C下旋转洗涤4次，每次20分钟。</li>
	<li>最后一次洗涤后，将膜置于纸巾上，直至液体明显消失。然后用聚氯乙烯塑料膜包裹膜，并暴露于磷屏成像仪的成像屏上。我们使用Storm 840成像系统及其配套的ImageQuant软件对放射性信号进行可视化和定量分析。</li>
</ol>
4. 典型结果：
<img src="/files/ftp_upload/2220/2220fig1.jpg" alt="显示UV诱导中间产物的DNA损伤修复过程示意图；展示了紫外线照射的影响。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图1"> 图1. 在存在和不存在UV诱导DNA损伤的情况下观察到的质粒复制中间体。 图示为通过二维琼脂糖凝胶分析观察到的PvuII酶切pBR322质粒的迁移模式。非复制型线性质粒以4.4 kb的线性片段形式迁移。复制中的质粒形成Y形结构，因其尺寸更大且形状非线性，迁移速度较非复制片段更慢。该迁移模式形成一条从线性区域向外延伸至加样孔方向的弧线。经紫外线照射后，在迁移速度比Y形分子弧线更慢的锥形区域中可观察到双Y形或X形分子。图中展示了用³²P标记的pBR322探针进行Southern杂交分析二维凝胶的一个示例，分别显示细胞在紫外线照射后立即取样以及照射后15分钟的分析结果（经出版方许可转载）。

<ol><li>Davis, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Isolation+of+Biochemically+Deficient+Mutants+of+Bacteria+by+Means+of+Penicillin%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">The Isolation of Biochemically Deficient Mutants of Bacteria by Means of Penicillin.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 35, 1-10 (1949).</li>
<li>Courcelle, J., Donaldson, J. R., Chow, K. H., Courcelle, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+Damage-Induced+Replication+Fork+Regression+and+Processing+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">DNA Damage-Induced Replication Fork Regression and Processing in Escherichia coli.</a> Science. 299, 1064-1067 (2003).</li>
<li>Friedman, K. L., Brewer, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+replication+intermediates+by+two-dimensional+agarose+gel+electrophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Analysis of replication intermediates by two-dimensional agarose gel electrophoresis.</a> Methods Enzymol. 262, 613-627 (1995).</li>
<li>Spivak, G., Hanawalt, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+damage+and+repair+in+specific+DNA+sequences%5BTitle%5D)+AND+%22METHODS%3A+A+Companion+to+Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Determination of damage and repair in specific DNA sequences.</a> METHODS: A Companion to Methods in Enzymology. 7, 147-161 (1995).</li>
<li>Sambrook, J., Russell, D. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSambrook%2C+J+%22Molecular+Cloning+-+A+laboratory+manual%22">Molecular Cloning - A laboratory manual</a>. , CSHL Press. Cold Spring Harbor. (2001).</li>
<li>Donaldson, J. R., Courcelle, C. T., Courcelle, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RuvABC+is+required+to+resolve+holliday+junctions+that+accumulate+following+replication+on+damaged+templates+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">RuvABC is required to resolve holliday junctions that accumulate following replication on damaged templates in Escherichia coli.</a> J Biol Chem. 281, 28811-28821 (2006).</li>
<li>Donaldson, J. R., Courcelle, C. T., Courcelle, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RuvAB+and+RecG+Are+Not+Essential+for+the+Recovery+of+DNA+Synthesis+Following+UV-Induced+DNA+Damage+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">RuvAB and RecG Are Not Essential for the Recovery of DNA Synthesis Following UV-Induced DNA Damage in Escherichia coli.</a> Genetics. 166, 1631-1640 (2004).</li>
<li>Chow, K. H., Courcelle, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RecO+Acts+with+RecF+and+RecR+to+Protect+and+Maintain+Replication+Forks+Blocked+by+UV-induced+DNA+Damage+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">RecO Acts with RecF and RecR to Protect and Maintain Replication Forks Blocked by UV-induced DNA Damage in Escherichia coli.</a> J Biol Chem. 279, 3492-3496 (2004).</li>
<li>Belle, J. J., Casey, A., Courcelle, C. T., Courcelle, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inactivation+of+the+DnaB+helicase+leads+to+the+collapse+and+degradation+of+the+replication+fork%3A+a+comparison+to+UV-induced+arrest%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Inactivation of the DnaB helicase leads to the collapse and degradation of the replication fork: a comparison to UV-induced arrest.</a> J Bacteriol. 189, 5452-5462 (2007).</li>
<li>Chow, K. H., Courcelle, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RecBCD+and+RecJ%2FRecQ+initiate+DNA+degradation+on+distinct+substrates+in+UV-irradiated+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Radiat+Res%22%5BJournal%5D)">RecBCD and RecJ/RecQ initiate DNA degradation on distinct substrates in UV-irradiated Escherichia coli.</a> Radiat Res. 168, 499-506 (2007).</li>
<li>Al-Hadid, Q., Ona, K., Courcelle, C. T., Courcelle, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RecA433+cells+are+defective+in+recF-mediated+processing+of+disrupted+replication+forks+but+retain+recBCD-mediated+functions%5BTitle%5D)+AND+%22Mutat+Res%22%5BJournal%5D)">RecA433 cells are defective in recF-mediated processing of disrupted replication forks but retain recBCD-mediated functions.</a> Mutat Res. 645, 19-26 (2008).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

图1展示了在有无紫外线诱导损伤的情况下，从野生型细胞中获得的典型结果。在无损伤情况下，当细胞处于快速指数生长期时，总质粒DNA中约有1%存在于Y弧中。经照射后，随着复制叉在损伤位点处受阻并积累，Y形分子出现短暂增加。X形复制中间体也短暂积累，并持续存在，直至与损伤修复的时间点相对应。
可以使用塑料吸管将复制中间体从凝胶中 punched out（打孔取出），替代 Southern 杂交分析，经纯化后直接通过电子显微镜观察。我们已成功利用该方法鉴定出在复制叉遭遇 DNA 损伤时所需的关键基因产物，并鉴定了在这些突变体中积累的异常复制中间体。此外，该方法还可轻松改进以检测其他形式的 DNA 损伤。

<table><tbody><tr><td>2D 凝胶 Southern 杂交分析示例</td><td>GE Healthcare</td><td>G15T8</td><td>黄色照明灯</td></tr><tr><td>15 &amp;mu;watt 杀菌灯</td><td>Sylvania</td><td>F20T12/GO</td><td>紫外灯</td></tr><tr><td>Blak-Ray 254 nm 紫外强度计</td><td>Daigger</td><td>EF28195T</td><td>UVC 光度计</td></tr><tr><td>0.025 &amp;mu;m 孔径透析盘</td><td>Whatman, GE Healthcare</td><td>VSWP04700</td><td>漂浮式透析盘</td></tr><tr><td>PvuII</td><td>Fermentas</td><td>ER0632</td><td>限制性内切酶</td></tr><tr><td>缺口平移试剂盒</td><td>Roche Group</td><td>976776</td><td>用于制备 32P 标记探针</td></tr><tr><td>吸水纸</td><td>Whatman, GE Healthcare</td><td>3030-704</td><td>用于 Southern 转印</td></tr><tr><td>尼龙膜</td><td>GE Healthcare</td><td>RPN203S</td><td>用于 Southern 转印</td></tr></tbody></table>

紫外线诱导的复制中间体的可视化 e. coli 使用二维琼脂糖凝胶分析

Visualization of UV-induced Replication Intermediates in E. coli using Two-dimensional Agarose-gel Analysis

在DNA损伤存在的情况下，不准确的复制是所有细胞类型中观察到的大多数细胞重排和诱变现象的主要原因，并且普遍认为其与人类癌症的发生直接相关。DNA损伤（例如由紫外线照射引起的损伤）会严重损害复制过程准确拷贝基因组模板的能力。已有若干基因产物被鉴定出来，它们在复制遇到模板中的DNA损伤时是必需的。然而，目前仍面临的一个挑战是如何确定这些蛋白质在复制过程中处理损伤的机制。in vivo. 以大肠杆菌为模型系统，我们描述了一种利用二维琼脂糖凝胶分析来鉴定复制质粒上产生的结构中间体的实验方法in vivo在紫外线诱导的DNA损伤之后。该方法已被用于证明，由紫外线诱导的损伤所阻滞的复制叉会发生短暂的逆转，这种逆转由RecA及若干与RecF途径相关的基因产物共同稳定。该技术表明，这些复制中间体会持续存在，直至与核苷酸切除修复清除损伤位点的时间相吻合，随后DNA复制恢复。

我们介绍了一种利用二维琼脂糖凝胶分析来鉴定紫外线照射后产生的复制中间体结构的实验方法。

紫外线诱导的复制中间体的可视化 E. coli 使用二维琼脂糖凝胶分析

DNA损伤存在时的不准确复制是所有细胞类型中观察到的大多数细胞重排和诱变的原因。

本实验的总体目标是利用二维凝胶分析技术，观察当DNA复制遇到DNA损伤时所产生的DNA结构中间体。首先从已诱导产生复制阻断性损伤的活跃分裂细胞中分离DNA，然后通过凝胶电泳根据回收DNA的大小进行分离，从而实现该目标。接下来，将切下的胶条水平嵌入第二块凝胶中进行再次电泳，该电泳根据DNA的大小和形状进一步分离DNA。最后，通过Southern杂交分析来观察在紫外线诱导损伤发生前以及损伤发生后不同时间点与复制中DNA片段相关的DNA结构。最终，该实验流程可用于证明某些突变体无法处理DNA损伤，从而导致DNA修复中间产物的积累。大家好，我叫Arthur Ian，来自波特兰州立大学的Corella实验室。大家好，我叫Brand she，我也来自Corella实验室。今天我们将向您展示一种二维凝胶电泳的实验方法。我们在实验室中使用该方法来研究DNA复制和修复的中间产物。现在让我们开始吧。开始此实验步骤时，将含有质粒PBR 322的200微升大肠杆菌（E. coli）过夜培养物接种于DGC大腿培养基中，加入氨苄青霉素，在37摄氏度条件下培养。使用DGC大腿培养基可最大限度减少紫外线屏蔽效应。过夜培养后，在14,000 RRP M条件下离心30秒，收集菌体沉淀。然后将细胞沉淀重悬于200微升不含氨苄青霉素的DG C th培养基中，并接种至20毫升不含氨苄青霉素的DG C thigh培养基中，在37摄氏度摇床培养箱中培养至OD600为0.5，相当于约5×10⁸个细胞/毫升。在无氨苄青霉素条件下培养可避免对某些突变体中可能出现的异常或无功能复制中间体产生选择压力。此外，如果使用紫外光诱导损伤，必须从培养基中去除氨苄青霉素，因为它在这些波长下具有强吸收，会起到屏蔽作用，从而在细胞生长过程中降低紫外光的有效剂量。使用UVC光度计确定距离15瓦杀菌灯多远的位置，可产生约每平方米每秒一焦耳（JUUL）的照射速率。后续步骤应在黄光下进行，以防止紫外线照射后光裂合酶介导的环丁烷嘧啶二聚体发生光复活逆转。当细胞密度达到预期值时，使用移液器将培养物转移至置于旋转平台上的直径15厘米的培养皿中，以确保整个细胞群体受照均匀。接着，以50焦耳/平方米的剂量照射培养物，随后立即将其转移至无菌的预热烧瓶中，并放回37°C摇床培养箱中继续培养。在整个实验过程中，该剂量平均每次检测时间点在每4.5 kb单链DNA中产生一个环丁烷嘧啶二聚体。将0.75 mL培养物移入含有0.75 mL冰冻NET 30缓冲液的管中。NET 30缓冲液作为终止缓冲液，可阻止复制和核苷酸切除修复的进行。加入终止缓冲液后，样品可在冰上保存至时间过程结束。时间过程结束后，离心收集各样品并重悬沉淀。在150微升裂解缓冲液中，于37摄氏度孵育20分钟以裂解细胞，期间不进行震荡。由于具有单链区域或分支点的复制结构更容易受到剪切力的影响，因此需使用剃刀片将移液管尖端切去，使管口变宽，以尽量减少剪切力。通常情况下，在裂解后应尽量减少移液和震荡操作，直至DNA经限制性内切酶消化完成。裂解后加入蛋白酶K和沙卡氏细胞，并继续孵育一小时，以释放与蛋白质结合的DNA片段。由于活跃复制的DNA通常与蛋白质或膜复合物结合，这有助于提高复制片段的得率。一小时后，向每个样品中加入两倍体积的酚，轻轻颠倒试管五分钟，进行样品提取。然后加入两倍体积的氯仿、异戊醇和乙醇，再次轻轻颠倒试管，继续振荡五分钟。接下来，在微量离心机中以14,000 RPM离心样品5分钟，并将每个样品的上层水相转移至新的离心管中。然后加入四倍体积的氯仿-异戊醇，再次轻轻颠倒混匀管子5分钟。随后再次以14,000 RPM离心5分钟。将透析膜置于盛有250毫升0.1 xte的烧杯顶部，取每种样品100微升点样到透析膜上。透析完成后，让样品透析1小时。将每种样品80微升加入含有20微升酶混合液的新的1.5毫升离心管中。在37摄氏度下过夜消化样品。PV two在复制起点的下游将质粒线性化。在上样琼脂糖凝胶之前，加入100微升氯仿和20微升含有溴酚蓝的6×上样缓冲液。向每个样品中加入酚蓝和二甲苯青，混匀，氯仿将去除任何仍与DNA末端结合的PV2。通过在第一维中电泳已酶切的DNA样品，开始二维琼脂糖凝胶分析。首先将λ Hind III DNA大小标记物加入已制备好的0.4%琼脂糖凝胶（1×TBE缓冲液）的第一泳道中。然后，每份样品加入40微升含有上样染料的水相，上样时跳过泳道以便于后续切胶。电泳完成后，以每厘米1伏的电压进行第一维电泳，时间约为12至15小时。低电压和低浓度琼脂糖凝胶主要用于根据DNA片段的大小进行分离。第一维电泳结束后，使用大型切片刀切下含有λ-Hind III标记物的第一条泳道，并用溴化乙锭染色。进行第二维电泳时，以λ-Hind III标记物为参照，用大型切片刀将凝胶泳道切成条状，弃去每条泳道中预计线性化质粒迁移位置以下的区域。制备第二维凝胶时，将每条凝胶切片水平放置在空的凝胶制胶板顶部。配制1% AROS的一倍XTBE溶液，并冷却至55摄氏度。待冷却后，倒入凝胶溶液以制备第二维凝胶，确保完全覆盖凝胶切片。在倒入凝胶前，必须确保切片排列均匀且凝胶模具水平。凝胶完全凝固后，在允许缓冲液循环的电泳装置中，以每厘米6.5伏的电压进行第二向电泳，运行时间为五个半小时至七小时。高电压和高浓度琼脂糖凝胶能有效根据DNA片段的大小和构型进行分离。非线性构型的DNA片段在第二向电泳中的迁移速度较慢。电泳结束后，先用蒸馏水冲洗凝胶一次，然后在400毫升0.25摩尔盐酸溶液中轻轻振荡洗涤两次，每次15分钟。酸洗的目的是将DNA分子部分切割成较小的片段，以便在Southern分析过程中更高效地转移，这对于分子量较大且形状特殊的DNA复制中间体而言是必要的。为准备凝胶进行碱性转移，需再次用清水冲洗凝胶，然后将其在400毫升0.4摩尔氢氧化钠溶液中洗涤两次，每次30分钟。随后，使用下压式碱性转移系统将凝胶中的DNA转移至高结合力N+尼龙膜上，转移液为0.4摩尔氢氧化钠，具体操作如本实验方案文字部分所述。DNA转移时间应为6至12小时。完成DNA转移后，按照书面实验方案中所述步骤继续进行探针杂交。膜经过探针杂交并洗脱后，将膜置于一张纸巾上，直至液体明显消失。随后用聚氯乙烯塑料膜包裹膜，并使其接触磷屏成像仪的成像屏。最后，使用Storm 840成像仪及其配套的ImageQuant软件对放射性信号进行可视化和定量分析。通过二维琼脂糖凝胶分析观察到PV两次消化PBR322质粒的迁移模式示意图。非复制型线性质粒以4.4 KB线性片段的形式迁移，而复制型质粒则形成Y形结构，由于其尺寸更大且呈非线性结构，迁移速度较非复制片段更慢。该迁移模式形成一条弧线，从线性区域向外延伸至加样孔方向，此现象在紫外照射后出现。在锥形区域观察到双Y形或X形分子，其迁移速度比Y形分子的弧线更慢。图中展示了使用P32标记的PBR322探针对二维凝胶进行Southern分析的示例，分别显示细胞在紫外线照射后立即取样以及照射后15分钟取样的结果。当细胞在辐射后处于快速指数生长期时，总质粒DNA中约有1%存在于Y形弧线上。随着受阻的复制叉在损伤位点处累积，可观察到Y形和S形分子的短暂增加。L形复制中间体也会短暂累积，并持续存在，直至与损伤被修复的时间点相对应。我们刚刚向您展示了如何利用二维凝胶电泳来可视化DNA修复中间体。进行此操作时，需注意可能降低得率的剪切力，并对所有样品和凝胶轻柔操作。以上就是全部内容。感谢观看，祝您的实验顺利成功。

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Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

由紫外线引起的复制中间体的可视化 E。大肠杆菌使用二维的琼脂糖凝胶电泳分析

本方案展示了一种简单的单分子荧光显微镜技术，用于实时观察单个复制体进行的DNA复制过程。...

利用荧光显微镜观察单分子DNA复制

DT40 是一种模式脊椎动物遗传系统，为分析蛋白质功能提供了强有力的工具。本文介绍一种简单的方法，可在单分子水平上对 DT40 细胞 S 期期间影响 DNA...

利用DNA纤维技术在脊椎动物模型系统DT40中可视化DNA复制

来源：Cayron, J., and Lesterlin, C. 应激处理条件下细菌生长的多尺度分析。 J. Vis. Exp. (2019)本视频演示了在使用抑制细胞分裂的抗生素处理条件下，通过平板计数法测定活力以及流式细胞术分析细胞大小和DNA含量，来评估大肠杆菌（E.

评估抗生素诱导的丝状化现象 大肠杆菌 使用平板测定法和流式细胞术

来源：Mettrick, K. A., Lawrence, 等，利用荧光阻遏蛋白-操纵子系统在E. coli中诱导位点特异性复制阻滞。J. Vis. Exp. (2016)本视频展示了利用阿拉伯糖诱导表达黄色荧光蛋白标记的TetR蛋白结合染色体上tetO阵列，从而在Escherichia...

荧光标记阻遏蛋白介导的复制阻断 大肠杆菌

来源：Bratton, B. P., et al., 用于精确细胞表征与精准蛋白质定位的细菌细胞三维成像。J. Vis. Exp.

通过荧光成像实现细菌蛋白质分布的三维可视化

来源：Philip, A. A., 等 ，一种用于拯救表达报告蛋白的重组轮状病毒的简化反向遗传学方法。 J. Vis. Exp.

通过凝胶电泳分离与可视化轮状病毒基因组

光激活定位显微镜（PALM）结合单分子示踪技术，可直接观察并定量活体大肠杆菌（Escherichia...

利用光激活单分子示踪技术在活体细菌细胞中可视化蛋白质-DNA相互作用

我们提出了一种用于识别影响转录因子（TF）DNA结合的非编码遗传变异的策略性方案和实验流程。本文提供了针对基因型依赖性转录因子DNA结合的电泳迁移率变动分析（EMSA）和DNA亲和沉淀分析（DAPA）的详细实验方案。...

利用电泳迁移率变动分析（EMSA）和DNA亲和沉淀分析（DAPA）筛选功能性非编码遗传变异

我们在此描述一种利用位点特异性、可逆的系统 体内 蛋白阻断导致复制叉停滞和崩溃...

在 E. coli 中利用荧光阻遏蛋白-操纵子系统诱导位点特异性复制阻滞

本文概述了利用二维凝胶电泳分析通过致病性、易形成结构的重复序列进行复制进程的实验步骤。...

基于SV40的人工附加体中通过结构倾向性DNA重复序列的复制电泳分析

学习使用二维琼脂糖凝胶电泳技术可视化紫外线诱导的大肠杆菌DNA复制中间体。该方法通过Southern杂交分析揭示DNA损伤修复过程中的结构动态变化。

紫外线诱导的复制中间体的可视化 E. coli 使用二维琼脂糖凝胶分析

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