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以一只已麻醉并准备好的CRISPR/Cas9基因敲入小鼠模型开始,该小鼠的基因组经过工程化改造,可在强上游启动子驱动下表达Cas9核酸酶和绿色荧光蛋白(GFP)。在正常情况下,启动子下游紧接插入的floxed-STOP盒(LSL)可阻断Cas9和GFP的转录。
切开小鼠腹壁以暴露附着于精囊的前叶前列腺。将所需腺病毒悬液注射至前叶,以促进病毒基因组靶向递送至细胞内。将前列腺叶复位至腹腔内,并缝合切口。
在病毒感染的细胞内,病毒基因组表达 Cre 重组酶和靶向待突变基因的向导 RNA。Cre 酶识别 LSL 磁带并切除两侧带有 loxP 位点的转录阻断序列,从而使启动子驱动 Cas9 核酸酶和绿色荧光蛋白(GFP)的表达。
随后,Cas9核酸酶与病毒编码的向导RNA形成复合物,这些复合物被引导至目标基因内的特定序列。这种定位使得Cas9核酸酶能够在目标基因内切割基因组DNA,从而导致遗传改变。
致癌性改变可导致突变细胞转化为癌细胞。在突变细胞中共同表达GFP报告蛋白有助于识别和追踪癌症进展。
为了将病毒递送至前列腺,按照文本方案对一只8周龄的雄性小鼠进行麻醉后,通过评估肌肉松弛度、足底回缩反应和眨眼反射来检查麻醉深度。当观察到反射消失时,剃除动物下腹部的毛发。使用无菌棉签,小心地将兽用眼科软膏涂抹于动物眼睛上,以防止因干眼症导致的失明。然后,用70%乙醇和10%聚维酮碘擦拭已剃毛的腹部,以消毒手术区域。
接下来,使用无菌手术剪,在腹部下端正中线处做一个约1厘米长的垂直皮肤切口。然后用尖头镊子轻轻提起腹膜,以防止损伤其下方的器官,并用手术剪小心地在腹膜上做一个8毫米或更短的切口。轻柔地将脂肪组织拨至一侧,以暴露精囊。随后,使用带环镊子小心提起精囊,直至可辨认出前叶前列腺。
现在,使用0.5毫升胰岛素注射器和30G × 8毫米针头,将总共30微升病毒溶液注射到前前列腺上皮中。尽量减少渗漏,并确保液体被组织吸收,形成一个小气泡。然后,将精囊放回腹腔内。
为确保液体在组织内以微小气泡形式被吸收且无渗漏,注射时应平行于精囊,并沿前列腺前叶的形态进行。
使用带锥形针尖的针和13毫米、3/8圆弧的缝线,用6-0可吸收缝线对腹膜进行两到三针单纯间断缝合。然后,用镊子提起皮肤以避免损伤腹膜,再用三个无菌的4.8 × 6.5毫米夹子闭合皮肤。
为了术后更好的恢复,使用无菌的1毫升注射器和27G × 1/2英寸针头,按每克体重0.1毫升的剂量,通过腹腔注射给予麻醉拮抗剂。然后,小心地将动物放回其笼中。