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从麻醉和制备的 CRISPR/Cas9 敲入小鼠模型开始,该模型具有由强上游启动子设计为表达 Cas9 核酸内切酶和绿色荧光蛋白 (GFP) 的基因组。在正常条件下,立即插入启动子下游的 floxed-STOP 盒或 LSL 可阻断 Cas9 和 GFP 转录。
切开小鼠的腹壁,露出附着在精囊上的前列腺前叶。将所需的腺病毒悬浮液注射到前叶中,以促进靶向病毒基因组递送到细胞中。将前列腺叶放回腹腔并缝合切口。
在病毒感染的细胞内,病毒基因组表达靶向要突变基因的 Cre 重组酶和引导 RNA。Cre 酶识别 LSL 盒并切除 floxed 转录阻滞剂。此步骤允许启动子驱动Cas9核酸内切酶和GFP的表达。
随后,Cas9核酸内切酶与病毒编码的引导RNA形成复合物,将这些复合物引导至要突变的基因内的靶序列。这种定位使 Cas9 核酸内切酶能够切割靶基因内的基因组 DNA,从而导致遗传改变。
致癌改变导致突变细胞癌变。突变细胞内 GFP 报告蛋白的共表达有助于识别和跟踪癌症进展。
为了将病毒输送到前列腺,在根据文本方案麻醉 8 周龄的雄性小鼠后,通过评估肌肉松弛、踏板退缩和眼睑反射来检查麻醉深度。当观察到反射丧失时,剃掉动物的下腹部毛。使用无菌棉签,用兽医眼药膏小心地覆盖动物的眼睛,以防止干眼症引起的失明。然后,用70%乙醇和10%聚维酮碘擦拭剃光的腹部,对手术区域进行消毒。
接下来,使用无菌手术剪刀,在腹部中线下做一个大约 1 厘米的垂直皮肤切口。然后,用细尖镊子抬起腹膜,防止损坏下面的器官,并使用手术剪刀小心地在腹膜上做一个 8 毫米或更短的切口。轻轻地将脂肪组织移到一边,露出精囊。然后,使用环形镊子小心地提起精囊,直到可以识别出前前列腺。
现在,用一个 0.5 毫升的胰岛素注射器和一根 30G x 8 毫米的针头,将总体积为 30 微升的病毒溶液注射到前列腺前上皮细胞中。尽量减少泄漏并确保液体在组织内被吸收,形成小气泡。然后,将精囊放回腹腔内。
为确保液体以小气泡的形式在组织内吸收且不渗漏,请确保平行于精囊并遵循前列腺前叶的形状进行注射。
使用锥点针和 13 毫米 3/8 圆,用 6-0 可吸收缝合线的两到三针简单的间歇缝合腹膜。然后,用镊子提起皮肤以避免损坏腹膜,用三个无菌 4.8 x 6.5 毫米夹子钉住皮肤。
为了在手术后更好地恢复,请使用无菌 1 毫升注射器和 27G x 1/2 英寸针头通过腹膜内注射以每克体重 0.1 毫升的剂量施用麻醉解毒剂。然后,小心地将动物放回笼子里。