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为了定量检测待测样本中具有生物活性的I型干扰素(如干扰素-α和干扰素-β),可采用含有基因工程改造的报告细胞的多孔板。这些细胞在干扰素-α和干扰素-β可诱导启动子的调控下,表达分泌型胚胎碱性磷酸酶(SEAP)报告基因。
加入含有未知浓度I型干扰素的待测样本。向其他孔中加入一系列已知浓度的人类I型干扰素,作为标准品对照。孵育。
检测孔中的I型干扰素与特定的细胞表面受体结合,激活Janus激酶。这些蛋白激酶使信号转导子和转录激活子(STAT)蛋白发生磷酸化,后者二聚化并与特定的干扰素调节因子形成复合物。
进入细胞核后,该复合物会结合到干扰素-α和β可诱导启动子中的特定DNA序列,从而激活SEAP基因的转录,产生SEAP酶,并分泌到培养基中。
将含有SEAP的培养基转移至含SEAP特异性底物的多孔板孔中。SEAP可水解粉红色底物,生成紫蓝色产物。
使用酶标仪测定测试孔和标准孔中产物的吸光度,以反映SEAP水平和I型干扰素浓度。
根据绘制的标准 I 型干扰素曲线,确定测试样本中具有生物活性的 I 型干扰素浓度。
使用 HEK-Blue 干扰素-α/β 报告细胞检测具有生物活性的 I 型干扰素时,首先将报告细胞以每孔 50,000 个细胞的密度接种于 96 孔平底板中,终体积为 180 微升。然后,将 20 微升新鲜收集的共培养上清液加入各孔中,每组设复孔。同时设置一组内部标准对照,并将培养板置于 37 摄氏度、5% 二氧化碳条件下孵育 18 至 22 小时。
为了测定报告细胞释放的碱性磷酸酶水平,向一个新的平底板的每孔中加入 180 微升 QUANTI-Blue 溶液。然后,向每孔加入 20 微升诱导后的 HEK-blue 干扰素-α/β 细胞上清液,并在 37 摄氏度孵育该板,直至标准干扰素对照孔中出现颜色变化。
在酶存在的情况下,QUANTI-Blue 溶液的颜色会从粉红色变为紫色-蓝色。最后,使用分光光度计在 620 至 655 纳米波长下检测分泌型碱性磷酸酶的水平,并根据干扰素标准曲线的线性部分推算出 I 型干扰素的浓度。