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取一个含有真菌热带念珠菌的微孔板。
细胞分泌 Sap2,这是一种蛋白水解酶,可切割一种称为 Msb2 的跨膜糖蛋白,去除其抑制结构域。
这会诱导真菌粘附在底部并长成酵母和丝状形式的微菌落。细胞分泌可溶性成分和生物聚合物,启动生物膜形成。
将含有 Sap2 特异性抗体的血清样品添加到选定的孔中,并在黑暗中孵育。
抗体与 Sap2 结合并中和其活性,阻碍细胞活力和生物膜成熟。
在未经处理的孔中,生物膜成熟成细胞和细胞外基质的致密网络。
吸出液体,清洗生物膜,然后风干板。加入显色底物,并在黑暗中孵育。
活细胞利用膜结合氧化还原酶将底物还原为有色产物。
转移有色上清液并读取吸光度。
血清处理孔中的吸光度较低表明抗体介导的生物膜抑制。
在
无菌RPMI1640 MOPS 培养基中制备热灭活血清样品的连续稀释液。将 100 微升选定的血清稀释液添加到 96 孔微量滴定板的每个孔中。
在第 10 列中,仅添加仅真菌阳性对照的 RPMI1640-MOPS 培养基。向第 11 列中的所有孔中加入 1 至 50 稀释的血清,作为无真菌加血清阴性对照。用盖子和铝箔盖住板后,将板在37摄氏度下孵育24小时。
第二天,使用多通道移液器小心地吸出血清后,轻轻敲击倒置的板以去除任何残留的血清。重复PBS洗涤3次,并在生物安全柜内在室温下风干板30分钟,以干燥任何多余的PBS。
然后,将 25 毫克 XTT 溶解在 50 毫升过滤灭菌的乳酸林格氏液中。将 10 毫升分装在单独的管中。用铝箔盖住,在零下80摄氏度下存放。接下来,将 8.6 毫克甲萘醌溶解在 5 毫升丙酮中,将 50 微升分配到 100 个单独的微管中后,将等分试样储存在零下 80 摄氏度。
取XTT10毫升,加入甲萘醌1微升,得到1微摩尔工作液。在96孔微量滴定板的每孔中加入100微升XTT甲萘醌溶液。接下来,用盖子和铝箔盖住板后,将板在黑暗中在37摄氏度下孵育两个小时。最后,将每个孔中的 80 微升有色上清液转移到新鲜的 96 孔板中,并在 490 纳米处读取板。