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取一个检测板,其中含有混合的磁性聚苯乙烯微球,这些微球内部掺杂了光谱不同的荧光染料。
每种微球组均通过共价键偶联了针对不同病原菌的特异性捕获抗体。
加入热灭活的致病菌混合物。孵育。
捕获抗体结合目标细菌抗原,形成微球-细菌复合物。
使用磁力分离器沉淀复合物。弃去未结合的细菌,并用缓冲液洗涤。
加入缓冲液和生物素标记的检测抗体,它们可特异性结合微球上的细菌。
将复合物进行磁力分离,并用缓冲液洗涤。
用缓冲液重悬复合物。加入报告分子溶液,其中含有偶联荧光染料的链霉亲和素,可与生物素标记的检测抗体结合。
将复合物进行磁力分离并洗涤。用缓冲液重悬。
在基于流式的分析过程中,第一束激光激发微球内部的荧光染料,产生独特的光谱特征,从而识别不同的微球集合。
第二束激光激发结合在微球上细菌的荧光报告分子,定量检测不同微球组上的细菌,从而实现多重定量细菌检测。
进行样本捕获时,首先将50 µL与捕获抗体偶联的微球或磁珠加入96孔板中。然后,向样本孔中加入50 µL致病菌,再向背景孔中加入50 µL PBS-TBN缓冲液。
用铝箔板密封膜覆盖酶标板,在800 rpm的板式摇床上孵育1小时。
随后,将培养板置于磁力架上1分钟,以分离磁珠。在保持培养板位于磁力架上的同时,吸除残留溶液。然后,在实验室纸巾上轻拍3至4次以干燥。用PBS-TBN彻底洗涤各孔,重复两次。
进行样本检测时,向孔中加入50 µL检测缓冲液,随后加入50 µL浓度为4 µg/mL的生物素化检测抗体。
将培养板置于避光环境中孵育一小时,以确保细菌与检测抗体充分结合。随后,使用磁力分离器分离微珠,并用 PBS-TBN 洗涤微珠,操作步骤如前所述。
将珠子重悬于50 µL分析缓冲液中,并加入50 µL的链霉亲和素-R-藻红蛋白(streptavidin-R-phycoerythrin)或SAPE(一种荧光报告分子)。用铝箔板封膜覆盖酶标板,在板式摇床上孵育30分钟。
洗涤完成后,将磁珠重悬于 100 µL PBS-TBN 中,并将该板放入基于流式的分析仪中。
使用适当的软件记录读数。可通过标准曲线评估每种生物体的净中位荧光强度值,以确定样品中存在的细菌载量。