脑切片中神经元细胞的同步光学与电生理监测

0 次观看4:08 分钟 • July 8th, 2025

首先,在灌流室中的网状网格上灌注含氧的人工脑脊液(aCSF)。

转移含有表达荧光蛋白神经元的脑切片,并用铂金丝装置固定。

旋转网格以进行对齐。

将多通道探针缓慢降至切片上。

调整滤光立方体以观察荧光蛋白。

旋转切片以对齐探针。

调节探头高度至组织表面以下。

现在,灌注 aCSF 并聚焦于荧光标记的神经元。

使用高倍物镜聚焦组织,并调节激发光。

使用适当的光学滤光片观察神经元中的荧光。

调整物镜,为膜片电极留出空间,并施加正压。

接下来,将移液管置于神经元附近,以形成细胞膜凹陷。

最后,施加微弱负压以形成膜封接,随后施加强负压破裂膜片,从而对目标神经元进行电生理记录。

将多通道探针置于 ex 体内 脑组织切片,以每分钟三至六毫升的速度灌注通入氧气的实验用人工脑脊液,将包含目标区域的脑切片转移至显微镜灌流室中的网格支架上。用铂金丝网固定脑切片。旋转网格支架,使多通道探针远端电极触点的连线大致垂直于PL表面。

在宽场照明和精细控制显微操作器的条件下,将多通道探针缓慢下降至脑片表面。启用适当的滤光镜组,以观察皮层传入纤维轴突末梢中表达的荧光报告蛋白。

如有必要,旋转脑片以更精确地使探针与PL层表面对齐。将探针置于脑片平面略上方,在x轴方向距离最终目标位置200 µm处,确保至少有一个通道位于记录组织区域之外。沿探针的长轴方向缓慢将其插入脑片中。

为尽量减少对组织的损伤,仅将探针推进至锐利尖端刚好可见于组织表面下方即可。将实验用人工脑脊液(ACSF)的来源切换至预装袋的对照溶液,并识别出荧光标记的细胞以进行靶向膜片钳记录。将孔径缩小至最小直径,启用高倍水浸物镜,注意避免多通道探针与物镜镜头发生接触。调节使组织进入清晰焦点。

将光源对准多通道探针附近但不重叠的组织区域。启用适当的滤光片组,以实现表达Cre依赖性荧光标记的细胞成像。升高物镜,为降低膜片钳电极留出充足空间。

用内液填充玻璃微电极,并将其安装在电极夹持器上。使用1毫升注射器施加正压,相当于约0.1毫升空气。将玻璃微电极缓慢放入溶液中,在视觉引导下使电极尖端进入焦点位置,并对目标细胞获取全细胞记录。