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流动 Cytometry-based 药物筛选系统对促进细胞分化胶质母细胞瘤小分子的鉴定
流动 Cytometry-based 药物筛选系统对促进细胞分化胶质母细胞瘤小分子的鉴定
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Flow Cytometry-based Drug Screening System for the Identification of Small Molecules That Promote Cellular Differentiation of Glioblastoma Stem Cells

流动 Cytometry-based 药物筛选系统对促进细胞分化胶质母细胞瘤小分子的鉴定

Full Text
8,670 Views
10:28 min
January 10, 2018

DOI: 10.3791/56176-v

Raffaella Spina1, Dillon M. Voss1, Laura Asnaghi2, Andrew Sloan1,3, Eli E. Bar1

1Department of Neurological Surgery, Case Comprehensive Cancer Center,Case Western Reserve University School of Medicine, 2Department of Pathology,Johns Hopkins University, School of Medicine, 3Department of Neurological Surgery, University Hospital-Case Medical Center, Case Comprehensive Cancer Center,Case Western Reserve University School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

提出了一种有效的筛选方案, 以识别小分子, 促进形分化的胶质母细胞瘤干细胞 (GSCs)。该检测是基于一个干细胞分化的记者, 即增强 GFP (eGFP) 的表达是由人胶质细胞促进剂驱动。

该程序的总体目标是筛选小分子文库,以查找促进胶质母细胞瘤干细胞中星形胶质细胞分化的药物。这种方法可以帮助回答癌症干细胞领域的关键问题,例如维持胶质母细胞瘤干细胞处于未分化状态所需的信号通路是什么。正确执行该技术可以直接识别促进胶质母细胞瘤干细胞分化的小分子。

该技术的含义延伸到 Ehlers-Danlos 胶质母细胞瘤的治疗,因为降低胶质母细胞瘤干细胞的百分比可能会降低复发的可能性。该方法也可用于使用其他报告基因构建体将分化设置为其他细胞谱系。我们的报告首次建立了一种高通量方法来筛选迫使神经胶质瘤干细胞分化的药物。

在来自患者的癌细胞中使用慢病毒颗粒可能非常危险。因此,应始终遵循处理血源性病原体的标准程序。首先,将 100 万个胶质母细胞瘤干细胞或 GSC 接种在 6 孔板中的 2 毫升完全神经干细胞生长培养基中。

接下来,用慢病毒报告基因以等于 5 的感染复数转导细胞。向细胞和病毒混合物中加入 2 微升聚凝胺,使最终浓度为每毫升 8 微克,并在 37 摄氏度和 5% CO2 下孵育细胞过夜。孵育后,更换生长培养基以去除未结合的病毒。

并以 360 倍 G 离心细胞 5 分钟。然后小心吸出培养基,并将细胞铺回 6 孔板中。并继续孵育细胞 24 小时。

收获 0.5 毫升总培养物体积。在室温下以 360 倍 G 离心 5 分钟来沉淀细胞。将细胞重悬于 0.5 mL 新鲜神经干细胞生长培养基中。

将板放回培养箱中,让其扩增至少 72 小时。加入 200 μL 解离试剂,在设定为 37 摄氏度的水浴中孵育 5 分钟。通过轻轻上下吹打来解离细胞。

向解离的细胞中加入 800 微升 HBSS,以确保最小的细胞附着或聚集。接下来,将 200 μL 的每种细胞悬液转移到 96 多孔板的孔中。通过流式细胞术确定表达绿色荧光蛋白的细胞百分比。

在每次采集中至少记录 10, 000 个活细胞。在所有流式细胞术分析中,使用亲本未转导的细胞或载体转导的非荧光细胞来建立基线荧光。为了选择和扩增单个亚克隆,将细胞以每孔 0.7 个细胞的密度接种在 96 孔板中的 100 μL 神经干细胞培养基中。

将这些克隆在培养物中维持 11 天。注意直径大于 100 微米的神经球。我们之前已经确定了这个临界大小,以回顾性地确定中脑球是否起源于自我更新的胶质母细胞瘤干细胞。

当使用不同的胶质母细胞瘤细胞模型时,可能需要优化此临界大小。在配备 FITC 滤光片的荧光显微镜下观察细胞,并标记包含单个神经球的孔,其中大约 1% 至 5% 的细胞为 GFP 阳性。标记后,扩增单个克隆,直到有足够数量的细胞可用于流式细胞术分析。

假设报告克隆含有 1% 至 5% 的 GFP 阳性细胞,则从每个克隆中收获 0.5 毫升以及等量的未转导对照细胞,以确定 GFP 阳性细胞的确切百分比。在室温下以 360 倍 G 沉淀细胞 5 分钟后,吸出上清液。向每个沉淀中加入 200 微升解离试剂,并在设置为 37 摄氏度的水浴中孵育试管。

孵育后,将细胞研磨约 20 至 30 次,以获得单细胞悬液。然后加入 800 μL HBSS 以确保最小的细胞附着或聚集。现在将 200 μL 的每种细胞悬液转移到 96 多孔板的孔中。

最后,进行流式细胞术,每次采集至少记录 10, 000 个活细胞。为了评估克隆形成能力,通过研磨细胞约 20 至 30 次来制备分化报告亚克隆的单细胞悬液。然后将这些细胞接种在 96 多孔板中,密度约为每孔 5 至 500 个细胞。

将这些细胞在培养物中保存 9 至 11 天。在光学显微镜下寻找神经球。包含至少一个大神经球的井被认为是阳性的。

以亲本未转导细胞和 GFP 阳性慢病毒转导细胞为对照,在 ELDA 在线界面上输入分析的总孔数和阳性细胞的数量。开始筛选时,将 5000 个细胞接种在 96 孔板中的 99 μL 完全神经干细胞生长培养基中。然后用 12 通道移液器用 2 微摩尔终浓度的稀释文库化合物或 DMSO 对照处理细胞。

将细胞孵育 72 小时。现在使用 12 通道移液器在每个孔中加入 150 μL 细胞解离试剂,并在 37 摄氏度下孵育 20 分钟。然后使用 12 通道移液器轻轻研磨每个孔中的细胞约 20 至 30 次,直到获得单细胞悬液。

现在进行流式细胞术并确定表达 GFAP:GFP 报告基因的细胞百分比。首先,从前向和侧向散射物中确定细胞大小和活力,并对活细胞群进行门控。然后确定活细胞群中的 GFP 阳性细胞。

与对照相比,GFP 阳性细胞的百分比增加三个标准差被认为是阳性命中,可以进行调整以适应用户对严格性的偏好。显示了表达低水平和高水平 GFAP:GFP 的 HSR-GBM1 GSC 亚克隆的代表性图像。通过流式细胞术为患者来源的神经球系选择 GFAP:GFP 表达阳性的亚克隆。

在这里,低 GFAP:GFP 表明克隆中不到 5% 的细胞是 GFP 阳性,而高 GFAP:GFP 表明克隆中超过 75% 的细胞是 GFP 阳性。这些结果表明,由 ELDA 确定的 GFAP 低亚克隆的体外自我更新能力高于其 GFAP 高亚克隆。因此,GH 亚克隆比 GL 亚克隆分化更多。

最后,筛选药物库以确定能够在 GSC 中诱导星形胶质细胞分化的药物。发现 12 种药物显着增加表达 GFAP:GFP 报告基因的细胞百分比。一旦掌握,如果执行得当,这项技术可以在几周内完成。

遵循此程序,可以进行其他方法,如 alamarBlue 测定、半固体培养基中的克隆形成测定、侧腹或颅内异种图注射,以回答其他问题,例如选择性药物对体外细胞增殖和克隆形成性的影响以及体内致瘤性的影响。看完这个视频,你应该对如何鉴定能够在胶质母细胞瘤干细胞中诱导星形胶质细胞分化的化合物有一个很好的了解。

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