Name: Die Anwendung eines Maus Ligierte Peyer-Patch-Darmschlinge Assay zu bakterielle Aufnahme von M-Zellen auswerten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-12-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 59 s
Description: Erfahren Sie die Anwendung eines ligatierten Darmschlingen-Assays zur Evaluierung der bakteriellen Aufnahme durch M-Zellen in Maus-Peyer-Patches. Diese Methode ermöglicht die Visualisierung und Quantifizierung der bakteriellen Transzytose.

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Die Autoren bedanken sich bei allen EIB-Mitglieder für die Entwicklung dieser Technik zu danken. Diese Arbeit wurde zum Teil durch Grant-in-Aid for Scientific Research auf Priority Areas &quot;Membrane Traffic&quot; (HO) und &quot;Matrix of Infectious Phenomena&quot; (KH), Young Scientists (SF und KH) und Wissenschaftliche Forschung (HO unterstützt ) und Scientific Research on Innovative Areas &quot;Intrazelluläre Logistik&quot; (HO), vom Ministerium für Bildung, Kultur, Sport, Wissenschaft und Technologie in Japan.

1. Vorbereitung von Bakterienzellen <ol><li> Streak Glycerin gefüllt fluoreszierende Bakterien (z. B. GFP-exprimierenden S. typhimurium) auf LB-Agar-Platte mit 100 ug / ml Ampicillin. </li><li> Kultur einer einzelnen Kolonie von LB-Agar über Nacht in 2 ml der neuen LB-Medium. </li><li> 0,5 ml Bakterienkultur zu 4,5 ml der neuen LB-Medium und Inkubation bis optischen Dichte von 1,0 bei 600 nm erreicht ist. </li><li> Ernte Bakterienzellen durch Zentrifugation (3.000 xg, 5 min, 4 ° C). </li><li> Überstand verwerfen und waschen zweimal mit 5,0 ml sterilem Phosphatpuffer (PBS). </li><li> Resuspendieren Bakterienpellet mit 5 ml PBS, und verwenden Sie 50 ul der Suspension, die etwa 10 7 koloniebildenden Einheit (KBE) als Inokulum. </li><li> Bei Verwendung von fluoreszenzmarkierten Bakterien wurden die Bakterienzellen durch Fluoreszenzmarkierung Reagenz nach Standard-Protokoll bezeichnet. </li></ol> 2. Anesthesia <ol><li> Füllen Sie eine kleine Kunststoff-Box (10 x 10 x 5 cm) mit 5% (v / v) verdampft Isofluran mit Luft gemischt (Flussrate: 200 ml / min). </li><li> Anesthetize acht bis sechzehn schwachen alten männlichen oder weiblichen Mäusen in der Box. </li><li> Bewegen Sie die Maus zu einem Seziertisch nach der Narkose. </li><li> Kontinuierlich betäuben die Mäuse um 2% (v / v) verdampft Isofluran mit Luft gemischt (Flussrate: 200 ml / min) (Abbildung 1). Dies ist ein Terminal-Verfahren. </li></ol> 3. Ligiert Peyer-Patch Loop-Test <ol><li> Incise 1cm der Bauchhaut und dann schneiden Sie die Bauch-Peritoneum einer narkotisierten Maus und nehmen Sie den Dünndarm mit der Peyer-Patch. </li><li> Ligieren des Darms mit Nähgarn, kümmert sich um Blutgefäße zu vermeiden. Hinweis: nur binden einen Seite des Darmes, und lassen Sie die andere Seite zu verlieren. </li><li> Inject 50 ul Bakteriensuspension oder PBS (Kontrolle) mit einer Spritze in ligiert Peyer-Patch-Schleife auf dem losen side des Darms (Abbildung 2). </li><li> Bind Losseite, und schließen Sie die Maus den Bauch mit einem Clip. </li><li> Nach 1 h, entfernen Sie die ligiert Peyer-Patch-Schleife, und einschläfern mit der Maus durch Genickbruch. </li><li> Excise Peyer-Patch von ligiert Peyer-Patch-Schleife. </li><li> Flashing der apikalen Seite der Peyer-Patch von 1 ml PBS mit der Verwendung von Spritzen an einer Nadel, um überschüssige Schleimhaut Flüssigkeit und Bakterien zu entfernen. Flashen der Peyer-Patch weitere zwei Male. </li></ol> 4. Whole mount-Färbung und konfokale mikroskopische Analyse der Peyer-Patch <ol><li> Fix Peyer-Patch in BD Cytofix / Cytoperm Lösung auf Eis für 1 Stunde. </li><li> Wash Peyer-Patch dreimal mit 1 ml BD Perm / Wash-Puffer für 5 min und dann Block mit 1 ml Blocking-Puffer mit 0,1% (w / v) Saponin, 0,2% (w / v) BSA in PBS für 30 min auf Eis. </li><li> Add 200-fach verdünnt Anti-Maus-GP2 monoklonaler Antikörper (5 pg / ml) auf die Probe zu erkennenM-Zellen. </li><li> Inkubieren für 2 Stunden bei Raumtemperatur oder über Nacht bei 4 ° C. </li><li> Wash dreimal mit 1 ml kaltem PBS, fügen Sie dann 200-fach verdünnt Anti-Ratte-IgG-Antikörper, konjugiert mit DyLight549 (20 ug / ml) auf die Probe. </li><li> Inkubieren Sie die Probe auf Eis für 2 Stunden. </li><li> Wash dreimal mit 1 ml kaltem PBS, dann fügen Sie 50-fach verdünnt Alexa 633 konjugierten Phalloidin auf die Probe zu F-Aktin zu erkennen. </li><li> Inkubieren auf Eis für 2 Stunden. </li><li> Wash leicht mit 1 ml kaltem PBS. Dann legen Sie drei Minuten vor vier Stücke runden Deckglas auf einem Objektträger, und betten Sie die Proben in eine 30% ige Glycerin-Lösung in PBS auf der Folie (Abbildung 3). </li><li> Beachten Proben mit einer DM-IRE2 konfokalen Laser Scanning Mikroskop oder einem DeltaVision Restoration Dekonvolution Mikroskop. </li></ol> 5. Repräsentative Ergebnisse: Die Probe beispielsweise einer Maus ligiert Peyer-Patch Loop-Test mit GFP-S. Typhimurium wurde mit einem DeltaVision Restoration Dekonvolution Mikroskop (Abbildung 4) beobachtet. GFP-S. typhimurium wird durch GP2 + M-Zellen transcytosed. Eine Maus Peyer-Patch Darmschlinge Assay identifizieren kann die Art der Kommensalen oder pathogene Bakterien, die durch M-Zellen transcytosed werden kann. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/3225/3225fig1.jpg"> Abbildung 1. Anesthesia von Mäusen unter verdampft Isofluran Zustand. Verdampft Isofluran wurde von einer Anästhesie-dedicated Gerät (links) geliefert. <img alt="Abbildung 2" src="/files/ftp_upload/3225/3225fig2.jpg"> Abbildung 2. Zusammenfassung der ligiert Peyer-Patch Darmschlinge Assay. Die fluoreszierenden Bakteriensuspension wurde mit einer Spritze in ligiert Peyer'schen Patch Schleife auf der losen Seite des Darms injiziert. <img alt="Abbildung 3" src="/files/ftp_upload/3225/3225fig3.jpg"> <img alt="Abbildung 4" src="/files/ftp_upload/3225/3225fig4.jpg"> Abbildung 4. Beispiel einer Maus ligiert Peyer-Patch Loop-Test mit GFP-S. typhimurium. GP2, die als M-Zell-spezifische Marker 5 berichtet wird, wurde mit anti-Maus-Antikörper GP2 (Red) gefärbt. Die Probe wurde mit einer DeltaVision Restoration Dekonvolution Mikroskop beobachtet. GFP-exprimierenden S. Typhimurium wurde mit GP2 auf der apikalen Plasmamembran der M-Zelle und in der subapicalen zytoplasmatischen Vesikeln (Pfeilspitzen) co-lokalisiert. Top, apikale Ansicht. Unten und seitlich, seitliche Ausblicke. Maßstab: 10 pm.

<ol><li>Fagarasan, S., Honjo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+IgA+synthesis%3A+regulation+of+front-line+body+defences%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Intestinal IgA synthesis: regulation of front-line body defences.</a> Nat. Rev. Immunol. 3, 63-72 (2003).</li>
<li>Hapfelmeier, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversible+microbial+colonization+of+germ-free+mice+reveals+the+dynamics+of+IgA+immune+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Reversible microbial colonization of germ-free mice reveals the dynamics of IgA immune responses.</a> Science. 328, 1705-1709 (2010).</li>
<li>Owen, R. L., Jones, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epithelial+cell+specialization+within+human+Peyer%27s+patches%3A+an+ultrastructural+study+of+intestinal+lymphoid+follicles%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Epithelial cell specialization within human Peyer's patches: an ultrastructural study of intestinal lymphoid follicles.</a> Gastroenterology. 66, 189-203 (1974).</li>
<li>Neutra, M. R., Mantis, N. J., Kraehenbuhl, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collaboration+of+epithelial+cells+with+organized+mucosal+lymphoid+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Collaboration of epithelial cells with organized mucosal lymphoid tissues.</a> Nat. Immunol. 2, 1004-1009 (2001).</li>
<li>Hase, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uptake+through+glycoprotein+2+of+FimH%28%2B%29+bacteria+by+M+cells+initiates+mucosal+immune+response%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Uptake through glycoprotein 2 of FimH(+) bacteria by M cells initiates mucosal immune response.</a> Nature. 462, 226-230 (2009).</li>
<li>Punyashthiti, K., Finkelstein, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enteropathogenicity+of+Escherichia+coli.+I.+Evaluation+of+mouse+intestinal+loops%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Enteropathogenicity of Escherichia coli. I. Evaluation of mouse intestinal loops.</a> Infect. Immun. 4, 473-478 (1971).</li>
<li>Owen, R. L., Pierce, N. F., Apple, R. T., Cray, W. C. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((M+cell+transport+of+Vibrio+cholerae+from+the+intestinal+lumen+into+Peyer%27s+patches%3A+a+mechanism+for+antigen+sampling+and+for+microbial+transepithelial+migration%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Infect.+Dis%22%5BJournal%5D)">M cell transport of Vibrio cholerae from the intestinal lumen into Peyer's patches: a mechanism for antigen sampling and for microbial transepithelial migration.</a> J. Infect. Dis. 153, 1108-1118 (1986).</li>
<li>Owen, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((M+cells--entryways+of+opportunity+for+enteropathogens%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">M cells--entryways of opportunity for enteropathogens.</a> J. Exp. Med. 180, 7-9 (1994).</li>
<li>Clark, M. A., Hirst, B. H., Jepson, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((M-cell+surface+beta1+integrin+expression+and+invasin-mediated+targeting+of+Yersinia+pseudotuberculosis+to+mouse+Peyer%27s+patch+M+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">M-cell surface beta1 integrin expression and invasin-mediated targeting of Yersinia pseudotuberculosis to mouse Peyer's patch M cells.</a> Infect. Immun. 66, 1237-1243 (1998).</li>
<li>Jensen, V. B., Harty, J. T., Jones, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interactions+of+the+invasive+pathogens+Salmonella+typhimurium%2C+Listeria+monocytogenes%2C+and+Shigella+flexneri+with+M+cells+and+murine+Peyer%27s+patches%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Interactions of the invasive pathogens Salmonella typhimurium, Listeria monocytogenes, and Shigella flexneri with M cells and murine Peyer's patches.</a> Infect. Immun. 66, 3758-3766 (1998).</li>
<li>Nagai, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+Peyer%27s+patches+in+the+induction+of+Helicobacter+pylori-induced+gastritis%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Role of Peyer's patches in the induction of Helicobacter pylori-induced gastritis.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 104, 8971-8976 (2007).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

<html> Die Inkubationszeit von ligiert Peyer-Patch mit Bakteriensuspension ist in der Regel für 1 Stunde, um die bakterielle Einbau in M-Zellen zu beobachten. Im Falle von 4 Stunden Inkubation werden die Bakterien oft in der T-Zell-Zone der Peyer-Plaques nachgewiesen. Wie das verdampfte Isofluran inhalant Anästhesie halten konnte Mäusen stabil ist, ist die Inkubationszeit von ligiert Peyer-Patch mit Bakteriensuspension erweiterbar, um die Bakterien, die in T-Zell-Zone in die Peyer-Patch bewegen zu beobachten. Der wichtig...

<table border="1"><tbody><tr><th> Name des Reagenzes </th><th> Firma </th><th> Katalog-Nummer </th><th> Kommentare (optional) </th></tr><tr><td> LB Agar Ampicillin- 100 </td><td> SIGMA </td><td> L5667 </td><td></td></tr><tr><td> Cy3 mono-Reactive Dye-Pack </td><td> GE Healthcare </td><td> PA23001 </td><td></td></tr><tr><td> Alexa Fluor 350 Carbonsäure, Succinimidylester </td><td> Invitrogen </td><td> A10168 </td><td></td></tr><tr><td> Inhalationsnarkose Apparat </td><td> Shinano Seisakusho </td><td> SN-487 </td><td></td></tr><tr><td> Fixation und Permeabilisierung Lösung </td><td> BD </td><td> 554722 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-Maus Glycoprotein 2 Antikörper </td><td> MBL </td><td>D278-3 </td><td> 200-facher Verdünnung (5μg/ml) </td></tr><tr><td> Goat Anti-Rat IgG, F (ab &#39;) 2-Fragment spezifisch </td><td> Jackson ImmunoResearch </td><td> 112-505-006 </td><td> 200-facher Verdünnung (20μg/ml) </td></tr><tr><td> Alexa Fluor 633 Phalloidin </td><td> Molecular Probes </td><td> A22284 </td><td> 50-facher Verdünnung </td></tr><tr><td> Konfokalen Laser Scanning-Mikroskop </td><td> Leica Microsystems </td><td> DMIRE2 </td><td></td></tr><tr><td> DeltaVision Restaurierung Dekonvolution Mikroskop </td><td> Applied Precision </td><td> DeltaVision Core- </td><td></td></tr></tbody></table>

die anwendung eines maus ligierte peyer-patch-darmschlinge assay zu bakterielle aufnahme von m-zellen auswerten

Application of a Mouse Ligated Peyer&#x2019;s Patch Intestinal Loop Assay to Evaluate Bacterial Uptake by M cells

Das Innere unseres Darms ist mit enormen Anzahl von symbiotischer Bakterien besiedelt. Die Schleimhautoberfläche des Magen-Darm-Trakt ist ständig mit ihnen und gelegentlich, um Krankheitserreger ausgesetzt. Der Darm-assoziierten lymphatischen Gewebe (GALT) spielen eine Schlüsselrolle für die Induktion der mukosalen Immunantwort auf diese Mikroben 1, 2. Zur Initiierung der mukosalen Immunantwort, muss die Schleimhautzellen Antigene aus dem Darmlumen in das Epithel in organisierte lymphoide Follikel, wie Peyer-Plaques transportiert werden. Dieses Antigen Transzytose wird von spezialisierten epithelialen Zellen M 3, 4 vermittelt. M-Zellen sind atypische Epithelzellen, die sich aktiv phagozytieren Makromoleküle und Mikroben. Im Gegensatz zu dendritischen Zellen (DCs) und Makrophagen, die Ziel-Antigene zu Lysosomen zum Abbau, M-Zellen hauptsächlich transcytose die verinnerlichten Antigene. Diese kräftige makromolekularen Transzytose durch M-Zellen liefert Antigen auf die zugrunde liegende organisierte lymphoide Follikel eind ist vermutlich wesentlich für die Einleitung Antigen-spezifische mukosale Immunantworten. Allerdings sind die molekularen Mechanismen der Förderung dieses Antigen-Aufnahme durch M-Zellen weitgehend unbekannt. Wir haben bereits berichtet, dass Glykoprotein 2 (GP2), insbesondere auf der apikalen Plasmamembran der M-Zellen unter Enterozyten exprimiert, als transcytotic Rezeptor für eine Teilmenge von Kommensalen und pathogene Enterobakterien, darunter Escherichia coli und Salmonella enterica Serovar Typhimurium (S. typhimurium dient ), durch die Anerkennung FimH, eine Komponente des Typ-I-Pili auf der bakteriellen äußeren Membran 5. Hier stellen wir eine Methode für die Anwendung einer Maus Peyer-Patch Darmschlinge Test auf bakterielle Aufnahme durch M-Zellen zu bewerten. Diese Methode ist eine verbesserte Version der Maus Darmschlinge Assay zuvor beschriebenen 6, 7. Die verbesserte Punkte sind wie folgt: 1. Isofluran wurde als Narkotikum verwendet. 2. Etwa 1 cm ligiert Darmschlinge einschließlichIng. Peyer-Patch wurde eingerichtet. 3. Bakterien durch M-Zellen aufgenommen wurden Fluoreszenz durch Fluoreszenzmarkierung Reagenz oder durch Überexpression fluoreszierenden Proteins, wie grün fluoreszierende Protein (GFP) markiert. 4. M-Zellen in der Follikel-assoziierte Epithel Peyer-Patch wurden von insgesamt-mount immunostainig mit anti Gp2 Antikörper nachgewiesen. 5. Fluoreszierende Bakterien Transzytose von M-Zellen wurden durch konfokale mikroskopische Analyse beobachtet. Die Maus Peyer-Patch Darmschlinge Test liefern könnte die Antwort, welche Art von Kommensalen oder pathogenen Bakterien durch M-Zellen transcytosed und kann uns dazu bringen, den molekularen Mechanismus, wie mukosalen Immunsystems durch M-Zellen zu stimulieren verstehen.

M-Zellen in einem spezialisierten Follikel-assoziierte Epithel Peyer-Plaques eine wichtige Rolle spielen für die Schleimhaut Immunüberwachung im Darm-assoziierten lymphatischen Gewebe. Hier beschreiben wir die Auswertungsverfahren für die bakterielle Transzytose von M-Zellen<em&gt; In vivo</em&gt;. Diese Methode stellt eine Methode zur M-Zell-Funktion im Immunsystem zu verstehen.

Die Anwendung eines Maus Ligierte Peyer-Patch-Darmschlinge Assay zu bakterielle Aufnahme von M-Zellen auswerten

Das Innere unseres Darms wird von einer enormen Anzahl kommensaler Bakterien besiedelt. Die Schleimhautoberfläche des Gastrointestinaltraktes ist kontinuierlich exponiert ...

Das allgemeine Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Aufnahme von Bakterien durch M-Zellen im Bereich des intestinalen Schleimhaut-Immunsystems zu untersuchen. Im ersten Schritt des Verfahrens werden die Peyer-Plaques eines anästhesierten Mäuses freigelegt und ligiert. Anschließend werden fluoreszierende Bakterien in den ligierten Bereich injiziert. Eine Stunde später werden die Pflaster der Pyres ausgeschnitten. Die Zellen im Gewebe werden anschließend permeabilisiert und mit dem M-Zell-Marker GP2 gefärbt. Abschließend werden die Proben mit einem konfokalen Mikroskop untersucht, und Bakterien, die von M-Zellen transzytosed werden, können sichtbar gemacht werden.Neben der Aufklärung der molekularen Grundlagen der bakteriellen Transzytose durch M-Zellen kann die Methode auch auf andere Systeme angewendet werden. Beispielsweise könnte dieses Protokoll dazu dienen, die Zellpermeabilität und das umgebende Darmgewebe mithilfe von Chlor und Mikroben zu untersuchen. Streichen Sie die fluoreszierenden Bakterien mit einem sterilen Glasverteiler auf eine LB-Agarplatte und inkubieren Sie die Platte bei 37 Grad Celsius, bis einzelne Kolonien sichtbar sind. Entnehmen Sie eine einzelne Kolonie vom festen Agar und impfen Sie diese in zwei Milliliter frisches LB-Medium an.Kultivieren Sie die Bakterien anschließend über Nacht bei 37 Grad Celsius auf einem Schüttler. Sobald die Starterkultur gewachsen ist, überführen Sie 500 Mikroliter Bakterien in 4,5 Milliliter LB-Medium und inkubieren diese neue Kultur bei 37 Grad Celsius für drei bis vier Stunden, oder bis die optische Dichte bei 600 Nanometern den Wert eins erreicht, was darauf hinweist, dass sich das bakterielle Wachstum in der logarithmischen Phase befindet. Zentrifugieren Sie die Kultur danach bei 3000 × g für fünf Minuten bei vier Grad Celsius, um die Bakterien zu pelletieren. Nach der Zentrifugation entsorgen Sie den Überstand und waschen das Pellet mit fünf Milliliter steriler PBS. Wiederholen Sie den Waschschritt und resuspendieren Sie die Bakterien anschließend in fünf Milliliter PBS.Nachdem die Maus unter kontinuierlicher Isofluran-Anästhesie liegt, verwenden Sie sterile Instrumente, um aseptisch den Bauch der Maus zu öffnen. Beginnen Sie damit, den Dünndarm freizulegen, und suchen Sie die Peyer-Plaques. Sobald eine Peyer-Plaque gefunden wurde, verwenden Sie sterile Nähgarn, um den Darm etwa fünf Millimeter seitlich der Plaque abzuklemmen.Achten Sie darauf, während des Eingriffs Blutgefäße nicht zu verletzen. Sobald der Darm ligiert ist, injizieren Sie mit einer Spritze 50 Mikroliter Bakteriensuspension mit etwa 10 hoch 7 KBE in die ligierte Peyersche-Plaque-Schleife auf der losen Seite des Darms. Anschließend ligieren Sie die andere Seite des Darms mit Garn. Schließen Sie den Bauch der Maus mit einer Klammer und halten Sie die Maus eine Stunde lang unter Anästhesie, bevor Sie sie euthanasiert. Um den Pyres-Fortsatz zu gewinnen, entfernen Sie den Pyres-Fortsatz vorsichtig. Spülen Sie dann mehrmals kräftig PBS durch den gewonnenen Darmabschnitt, um die apikale Seite des PI-Fortsatzes zu waschen und überschüssige Mukusflüssigkeit sowie Bakterien zu entfernen.Nachdem der PI-Patch gewaschen wurde, legen Sie ihn in eine Vertiefung einer 24-Loch-Platte und geben Sie Cyto-Effects- oder Cyto-Perm-Lösung hinzu. Inkubieren Sie die Probe eine Stunde lang auf Eis. Sobald der PI-Patch fixiert ist, tauchen Sie ihn fünf Minuten lang in ein Milliliter Perm-Waschpuffer ein.Wiederholen Sie diesen Waschschritt dreimal. Anschließend geben Sie die Probe in ein Milliliter Blockierpuffer und inkubieren sie 30 Minuten auf Eis. Nach dem Blockierungsschritt fügen Sie anti-maus GP zwei monoklonalen Antikörper zu einer Endkonzentration von fünf Mikrogramm pro Milliliter hinzu und inkubieren die Probe über Nacht bei vier Grad Celsius, um die M-Zellen zu färben.Als Nächstes die Probe wie zuvor waschen. Einen sekundären Antikörper hinzufügen und die Probe zwei Stunden im Dunkeln auf Eis inkubieren. Nach der Färbung die Probe vorsichtig mit PBS waschen.Danach drei oder vier runde Deckgläser auf einen Objektträger geben und den Pires-Patch in 200 Mikrolitern einer 30 %igen Glycerinlösung in PBS einbetten. Auf dem Objektträger die Probe mit einem DM-IRE2-Konfokalmikroskop oder einem Delta-Vision-Restaurierungs-Entfaltungsmikroskop beobachten. In diesem Bild ist grün markiertes GFP-gefärbtes Salmonella typhimurium zu sehen, das von GP2, das rot auf der apikalen Plasmamembran dargestellt ist, umgeben ist.In diesem gedrehten Bild sind Bakterien innerhalb der subapikalen zytoplasmatischen Vesikel sichtbar. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man die bakterielle Transzytose durch M-Zellen mittels ligierter pys intestinaler Lu-Assays beurteilt.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Dieses Video zeigt die Generierung eines Ileumschleifenmodells zur Untersuchung der Darmpermeabilität in einem Mausmodell. Diese Methode bietet ein Live-Modell, um die Funktion der epithelialen Barriere und die daraus resultierende Immunantwort zu verstehen.

Maus-Ileumschleifenmodell: Ein chirurgisches Modell zur Untersuchung der Darmpermeabilität bei der Maus

In diesem Video beschreiben wir ein chirurgisches Verfahren zur Erzeugung einer proximalen Dickdarmschleife oder eines pcLoop-Segments der Maus, gefolgt von einer intraluminalen Injektion von fluoreszierenden Markern in das Segment, um die intestinale Epithelpermeabilität zu untersuchen.

Generierung eines proximalen Dickdarmschleifenmodells der Maus: ein chirurgisches Verfahren zur Erzeugung einer proximalen Dickdarmschleife und zur Messung der intestinalen Permeabilität durch Nachweis von Fluoreszenzmarkern im Serum nach intraluminaler Injektion

Es gibt ein wachsendes Interesse für das Verständnis der immunologischen Funktionen von bestimmten Subpopulationen von Zellen in Peyer-Plaques (PP), die primären induktiven Seiten des Darm-assoziierten lymphatischen Gewebe. Hier beschreiben wir parallele Protokolle zur Herstellung PP Einzelzelle Zubereitungen für die durchflusszytometrische Analyse und PP Kryoschnitten für Immunfärbung.

Isolierung und Immunfärbung Lymphozyten und dendritische Zellen aus Murine Peyer-Plaques

Dieses Protokoll beschreibt die Verwendung von exzidierten Darmgewebepräparaten oder "Darmsäcken" als ex vivo Modell der Darmbarrierefunktion. Dieses Modell kann verwendet werden, um die Integrität sowohl der Epithelbarriere als auch der Schleimhautgelschicht an spezifischen Darmstellen in Tiermodellen für Verdauungserkrankungen zu beurteilen.

Ex vivo-Darm-Sacs zu beurteilen Durchlässigkeit der Schleimhaut in Modelle von Magen-Darm-Krankheit

Wir beschreiben hier ein transgenes Reporter-Mausmodell, um die IL-22-produzierenden Zellen in verschiedenen Mausgeweben sichtbar zu machen. Mit dieser Methode kann die Position anderer Zytokine oder Sekretärsproteine in der Maus verfolgt werden.

Visualisierung von IL-22-exprimierenden Lymphozyten unter Verwendung Reporter Mäuse

Hier stellen wir ein Protokoll zur Festlegung wichtiger Endpunkte und proliferativer Marker für kleine Darmverletzungen und kompensatorische Hyperproliferation unter Verwendung eines Modells der chemotherapieinduzierten Schleimhautitis vor. Wir demonstrieren die Detektion von sich vermehrenden Zellen mit einem zellzyklusspezifischen Marker und mit kleinem Darmgewicht, Kryptatiefe und Villushöhe als Endpunkte.

Wichtige Endpunkte und proliferative Marker zur Beurteilung von kleinen Darmverletzungen und Anpassung mit einem Mausmodell der Chemotherapie-induzierten Mukositis

Unter Ausnutzung der intravitalen Mikroskopie ermöglicht die hier vorgestellte Methode die Echtzeit-Visualisierung des Darmepithelzellvergießens bei lebenden Tieren. Daher wird topisch gefärbte Darmschleimhaut (Acriflavine und RhodamineB-Dextran) von anästhesierten Mäusen bis zur einzelzelligen Auflösung mittels konfokaler Mikroskopie abgebildet.

Ein intravitaler, auf Mikroskopie basierender Ansatz zur Bewertung der Darmdurchlässigkeit und der Epithelzellvergießen-Performance

Hier beschreiben wir eine präzise Methode zum Sammeln von Thoraxkanallymphozyten und zur Beobachtung der Migration von darm-tropischen Lymphozyten in Ratten-Peyer-Pflastern für 3 Stunden mit Zeitrafferfotografie. Diese Technik kann klären, wie die Dynamik von Lymphozyten unter entzündlichen Bedingungen beeinflusst wird.

Mikroskopische Beobachtung der Lymphozytendynamik in Rat Peyers Patches

Dysregulierte intestinale epitheliale Barrierefunktion und Immunantworten sind Kennzeichen entzündlicher Darmerkrankungen, die aufgrund fehlender physiologischer Modelle noch schlecht untersucht sind. Hier beschreiben wir ein Maus-Darmschleifenmodell, das ein gut vaskularisiertes und exteriorisiertes Darmsegment verwendet, um die Schleimhautpermeabilität und die Leukozytenrekrutierung in vivo zu untersuchen.

Funktionelle Beurteilung der Intestinalpermeabilität und der neutrophilen transepithelialen Migration bei Mäusen mit einem standardisierten Darmschleifenmodell

Wir beschreiben ein Mausmodell des postoperativen Ileus, das durch intestinale Manipulation erzeugt wurde. Die gastrointestinale Transitfunktion, die pathologischen Veränderungen und die Aktivierung der Immunzellen wurden 24 Stunden nach der Operation beurteilt.

Postoperatives Ileus-Mausmodell

In dieser Studie wird eine 3D-Bildgebungsmethode vorgestellt, bei der das gesamte Darmgewebe und die Multiphotonenmikroskopie zur Quantifizierung des sezernierten Schleims verwendet werden, was eine präzise volumetrische Analyse und Visualisierung der Schleimdynamik als Reaktion auf Reize wie Carbamoylcholinchlorid ermöglicht.

Dreidimensionale Quantifizierung von Darmschleim mittels Whole-Mount Tissue Imaging

Erfahren Sie die Anwendung eines ligatierten Darmschlingen-Assays zur Evaluierung der bakteriellen Aufnahme durch M-Zellen in Maus-Peyer-Patches. Diese Methode ermöglicht die Visualisierung und Quantifizierung der bakteriellen Transzytose.

Die Anwendung eines Maus Ligierte Peyer-Patch-Darmschlinge Assay zu bakterielle Aufnahme von M-Zellen auswerten

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