-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

DE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

German

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Video-Okulographie in Mäuse
Video-Okulographie in Mäuse
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Video-oculography in Mice

Video-Okulographie in Mäuse

Full Text
24,144 Views
09:43 min
July 19, 2012

DOI: 10.3791/3971-v

Marcel de Jeu1, Chris I. De Zeeuw1,2

1Department of Neuroscience,Erasmus MC, Rotterdam, The Netherlands, 2Department of Neuroscience,Royal Dutch Academy of Arts & Sciences (KNAW)

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Video-EOG ist ein sehr quantitative Methode zur okularen motorischen Leistungsfähigkeit zu untersuchen sowie motorischen Lernens. Hier beschreiben wir, wie man Video-Okulographie bei Mäusen zu messen. Die Anwendung dieser Technik auf normalen, pharmakologisch behandelt oder gentechnisch veränderten Mäusen ist ein leistungsfähiges Werkzeug, um die Forschung zu Grunde liegenden Physiologie der motorischen Verhaltensweisen zu erforschen.

Transcript

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist die Durchführung von Video o Ikonographie bei Mäusen. Dies wird erreicht, indem die Maus zunächst mit einer Sockelkonstruktion auf ihrem Schädel ausgestattet wird, die die Ruhigstellung ihres Kopfes in einem speziellen Kopf-Rückhaltesystem ermöglicht. Der zweite Schritt besteht darin, die Maus in das Video-Ocul-Setup zu platzieren und das Videopupillen-Tracking-System zu kalibrieren.

Als nächstes werden die Augenbewegungen aufgezeichnet, während das okulomotorische System mit einem großen Repertoire an vestibulären und optischen kinetischen Reizen aktiviert wird. Der letzte Schritt besteht darin, diese Augenbewegungen zu analysieren. Letztendlich kann die Video-O-Ikonographie an normalen, pharmakologisch behandelten oder genetisch veränderten Mäusen verwendet werden, um die Physiologie des motorischen Verhaltens zu erforschen.

Obwohl diese Methode Einblicke in das okuläre motorische System geben kann, kann sie auch zur Untersuchung von Krankheiten zerebellären vestibulären oder okulären Ursprungs angewendet werden, indem Mausmutanten verwendet werden, die menschliche Pathologien nachahmen. Um dieses Verfahren zu beginnen, betäuben Sie die Maus in einer Gaskammer mit einer Mischung aus isof, Fluor und Sauerstoff. Halten Sie dann die Anästhesie aufrecht, indem Sie das Gas durch eine Maske abgeben.

Verwenden Sie als Nächstes ein Heizkissen und einen analen Thermosensor, um die Körpertemperatur der Maus auf 37 Grad Celsius zu halten. Tragen Sie anschließend die Augensalbe auf, um die Augen vor dem Austrocknen zu schützen, rasieren Sie das dorsale Schädelfell und reinigen Sie das Operationsgebiet. Machen Sie anschließend einen Schnitt in der Mittellinie, um die dorsale Schädeloberfläche des Schädels freizulegen, reinigen und trocknen Sie die Oberfläche.

Tragen Sie dann einen Tropfen Phosphorsäure von bgma auf Lambda auf. Entfernen Sie nach 15 Sekunden die Ätzung, reinigen Sie dann die Schädeloberfläche mit Kochsalzlösung und trocknen Sie sie erneut. Tragen Sie einen Tropfen opti bond prime auf die Oberseite der geätzten Schädeloberfläche auf und luften Sie es aus.

30 Sekunden trocknen lassen. Geben Sie anschließend einen Tropfen opti bond Kleber auf die opti bond prime. Härten Sie es eine Minute lang mit UV-Licht aus.

Danach bedecken Sie die Klebeschicht mit einer dünnen Schicht Charisma-Komposit. Der Verbinder mit Magnet, Schraube, Loch und Befestigungsstellen ist in den Verbundwerkstoff eingebettet. Anschließend härtet das Komposit mit UV-Licht aus.

Tragen Sie bei Bedarf erneut zusätzliche Schichten Komposit auf und härten Sie diese mit Licht aus. Lassen Sie die Maus mindestens drei Tage nach der Operation genesen. Der nächste Schritt besteht darin, die Maus in den Rückhaltebügel zu legen und ihren Kopf mit dem Magneten an der Rückhaltemaschine zu befestigen und mit einer Schraube den Mauskopf und den Körperhalter auf einer XY-Plattform zu befestigen.

Platzieren Sie mit der XY-Plattform den Kopf der Maus über der Mitte des Drehtellers, sodass die Maus über die Tonhöhen-Ya- und Rollachsen bewegt werden kann. Platzieren Sie dann den Kopf in der richtigen Tonhöhe und dem richtigen Rollwinkel, indem Sie das Auge anhand des visuellen Bildes des Auges ausrichten, das vom Augenscan-System erzeugt wurde. Nun ist der Drehteller an einen AC-Servomotor angeschlossen.

Die Position des Plattentellers wird mit einem Potentiometer überwacht, das an der Achse des Plattentellers angebracht ist. Der Drehteller ist von einem zylindrischen Umlaufsieb mit zufälligem Punktmuster bedeckt, das ebenfalls mit einem AC-Servomotor ausgestattet ist. Die Position des zylindrischen Bildschirms wird durch ein Potentiometer überwacht, das an seiner Achse angebracht ist.

Der Bildschirm kann mit einer Halogenlampe beleuchtet werden. Die Bewegung des Plattenspielers und des umgebenden Bildschirms wird von einem Computer gesteuert, der mit einer Eingabe-Ausgabe-Schnittstelle verbunden ist. Die Positionssignale des Plattenspielers und des umgebenden Bildschirms werden durch eine Grenzfrequenz von 20 Hertz gefiltert, die von der Eingangs-/Ausgangsschnittstelle digitalisiert und auf diesem Computer gespeichert wird.

Das Auge der Maus wird von drei Infrarot-Strahlern beleuchtet. Zwei sind am Drehteller befestigt, der dritte ist an der Kamera befestigt. Dieser dritte Strahler erzeugt eine Referenz-Hornhautreflexion, die während des Kalibrierungsvorgangs und bei der Aufzeichnung der Augenbewegungen verwendet wird.

Eine Infrarot-CCD-Kamera, die mit einem Zoomobjektiv ausgestattet ist, ist an dem Drehteller befestigt und auf den Mauskopf fokussiert. In der Mitte des Plattentellers. Die Kamera kann entriegelt und um genau 20 Grad um die Drehtellerachse bewegt werden.

Während des Kalibriervorgangs. Das Videosignal wird dann von einem Eye-Tracking-System verarbeitet, das die Pupillen- und Referenzhornhautreflexion in horizontaler und vertikaler Richtung mit einer Abtastrate von 120 Hertz verfolgen kann. Dann werden die Referenz-Hornhaut-Referenzposition, die Pupillenposition und die Personengrößensignale von der Eingabe-Ausgabe-Schnittstelle digitalisiert und in derselben Datei wie die Tisch- und Umgebungsbildschirm-Positionssignale gespeichert, um die Augenbewegungen zu kalibrieren, die Kopfposition der Maus mit der Kamera so anzupassen, dass sich das Videobild der Pupille in der Mitte des Monitors befindet, und die Darstellung der Referenz-Hornhautreferenz befindet sich auf der vertikalen Mittellinie des Auges direkt über der Pupille.

Bewegen Sie die Kamera anschließend mehrmals um 20 Grad Spitze. Spitze um die vertikale Achse des Drehtellers. Verwenden Sie die Positionen der verfolgten Pupille und die Referenz-Hornhautreferenz, die in den Extrempositionen der Kamera aufgezeichnet wurden, um den Radius der Pupillendrehung zu berechnen.

Wiederholen Sie diese Schritte viele Male unter verschiedenen Beleuchtungsbedingungen, um das Verhältnis zwischen der Pupillengröße und der Pupillendrehung zu bestimmen. Erstellen Sie dann die Rotationskorrekturkurve einer Pupille. Berechnen Sie nun die Winkelposition des Auges, indem Sie die Referenzposition der Hornhaut, die Pupillenposition und die Pupillengröße messen.

Der Wert der Pupillendrehung kann aus der Rotationskorrekturkurve der Pupille extrahiert werden, und die Winkelposition des Auges kann mit der folgenden Formel berechnet werden. Hier wird das Augenbewegungsexperiment VVOR demonstriert. Konvertieren Sie nun die Augenpositionen, Tabellenpositionen und umgebenden Bildschirmpositionen in Winkelpositionen.

Differenzieren und filtern Sie anschließend die Winkelpositionen des Augentisches und des umgebenden Bildschirms mit einem Butterworth-Tiefpassfilter. Entfernen Sie bei einer Grenzfrequenz von 20 Hertz Sub den Secod aus dem Augengeschwindigkeitssignal mit einer Erkennungsschwelle von 40 Grad pro Sekunde. Mitteln Sie dann die Tabellen- und Augengeschwindigkeitssignale unter Verwendung jedes einzelnen Zyklus in der Studie und passen Sie die gemittelten Signale mit einer geeigneten Funktion an.

In der Regel wird eine sinusförmige Geschwindigkeitsstimulation verwendet und die durchschnittlichen Zyklen mit einer Vorzeichen- oder Kosinusfunktion versehen. Dieser Film zeigt, wie die Augenbewegungen durch die Drehung des umgebenden Bildschirms erzeugt werden, um einen optokinetischen Reflex zu erzeugen, der den umgebenden Bildschirm über einen Frequenzbereich von 0,2 bis einem Hertz mit einer Amplitude von 1,6 Grad dreht. Es zeigt sich, dass das optische kinetische System der Maus im Niederfrequenzbereich effizienter ist als im Hochfrequenzbereich.

Hier ist ein weiterer Film, der zeigt, wie die Augenbewegungen generiert werden. Durch Drehen der Maus im Dunkeln wird der vestibuläre Augenreflex ausgelöst und der Plattenteller über einen Frequenzbereich von 0,2 bis zu einem Hertz mit einer Amplitude von 1,6 Grad gedreht. Es hat sich gezeigt, dass das vestibuläre Okularsystem der Maus im Hochfrequenzbereich effizienter ist als im Niederfrequenzbereich.

Hier wird ein weiterer Film darüber gezeigt, wie die Augenbewegungen durch Drehen der Maus im Licht erzeugt werden, um einen visuell verstärkten vestibulären Augenreflex zu erzeugen, indem der Plattenteller über einen Frequenzbereich von 0,2 bis einem Hertz mit einer Amplitude von 1,6 Grad gedreht wird, während der umgebende Bildschirm gut ausgeleuchtet ist, dass die Maus effiziente kompensierende Augenbewegungen über den gesamten Frequenzbereich erzeugt. Und dieser Film zeigt, wie motorisches Lernen durch adaptive Erhöhung des vestibulären Augenreflexes erreicht wurde. Bei Verwendung eines phasenverschobenen Trainingsparadigmas erhöht das Drehen des Plattenspielers phasenverschoben mit dem umgebenden Bildschirm die VOR-Verstärkung dieser Maus.

Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man eine Videountersuchung bei Mäusen durchführt.

Explore More Videos

Neuroscience Ausgabe 65 Physiologie Medizin Maus-Mutanten Schüler-Tracking motorisches Lernen motorische Leistung Kleinhirn olivocerebellar System vestibulo-okulären Reflexes optokinetischen Reflex Augenheilkunde EOG

Related Videos

Optische Kohärenztomographie zur Beurteilung von Uveitis im Mausmodell

03:12

Optische Kohärenztomographie zur Beurteilung von Uveitis im Mausmodell

Related Videos

492 Views

In vivo Bildgebung von retinalen Mikroglia in einem Mausmodell des Glaukoms

04:55

In vivo Bildgebung von retinalen Mikroglia in einem Mausmodell des Glaukoms

Related Videos

361 Views

In-vivo-Bildgebung der Netzhaut der Maus mittels optischer Kohärenztomographie

04:08

In-vivo-Bildgebung der Netzhaut der Maus mittels optischer Kohärenztomographie

Related Videos

391 Views

Ein Laser-induzierten Maus-Modell der chronischen Ocular Hypertension zu Sehfehler Charakterisierung

07:00

Ein Laser-induzierten Maus-Modell der chronischen Ocular Hypertension zu Sehfehler Charakterisierung

Related Videos

13.3K Views

Optische Kohärenztomographie: Maus retinalen Ganglienzellen Zellen In Vivo Imaging

08:17

Optische Kohärenztomographie: Maus retinalen Ganglienzellen Zellen In Vivo Imaging

Related Videos

19.7K Views

In Vivo Darstellung der Cx3cr1GLP/Gfp  Reporter Mäuse mit Spectral-Domain optische Kohärenztomographie und Scanning Laser Ophthalmoskopie

06:19

In Vivo Darstellung der Cx3cr1GLP/Gfp Reporter Mäuse mit Spectral-Domain optische Kohärenztomographie und Scanning Laser Ophthalmoskopie

Related Videos

10.9K Views

Mit optischen Kohärenztomographie und optokinetischen Antwort als strukturelle und funktionelle visuelles System auslesen bei Mäusen und Ratten

07:08

Mit optischen Kohärenztomographie und optokinetischen Antwort als strukturelle und funktionelle visuelles System auslesen bei Mäusen und Ratten

Related Videos

10.3K Views

Langfristige sensorischen Konflikt in Mäusen frei Verhalten

06:12

Langfristige sensorischen Konflikt in Mäusen frei Verhalten

Related Videos

6.9K Views

Anwendung der optischen Kohärenztomographie auf ein Mausmodell der Retinopathie

08:22

Anwendung der optischen Kohärenztomographie auf ein Mausmodell der Retinopathie

Related Videos

4.7K Views

Abgleich von optischen Kohärenztomographie-Fasergrammen im sichtbaren Licht mit konfokalen Bildern derselben Maus-Netzhaut

07:02

Abgleich von optischen Kohärenztomographie-Fasergrammen im sichtbaren Licht mit konfokalen Bildern derselben Maus-Netzhaut

Related Videos

1.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code