Name: Design und Analyse des Temperaturpräferenzverhaltens und seines circadianen Rhythmus in Drosophila (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-13T13:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 9 s
Description: Erfahren Sie die Analyse des Temperaturpräferenzverhaltens und seines circadianen Rhythmus bei Drosophila. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung zirkadianer Regulationsmechanismen unabhängig von der Lokomotorik.

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Wir sind Drs. Aravinthan Samuel und Marc Gershow dankbar, die an der Entwicklung der ursprünglichen Version des Verhaltensapparates mitgewirkt haben, und Matthew Batie, der den Verhaltensapparat modifizierte. Diese Forschung wurde von Trustee Grant von Cincinnati Children es Hospital, JST/PRESTO, March of Dimes und NIH R01 GM107582 to F.N.H. unterstützt.

1. Vorbereitung von Fliegen
<ol><li>Light Dark (LD) Experimente
	<ol>
<li>Heben Sie Fliegen in Inkubatoren (25 °C/40-60%relative Luftfeuchtigkeit (RH)) unter lichten 12 Std/dunkel 12 Std.(LD) Zyklen. Die Lichtintensität der Inkubatoren beträgt 500-1.000 Lux.</li>
		<li>Zwei Inkubatoren sind notwendig, um die Verhaltenstests über einen Zeitraum von 24 Stunden abzuschließen. Beide Inkubatoren sollten ein programmierbares Licht mit ON OFF-Funktionen haben. Sie sollten auch feste Türen haben, die nicht lichtdurchlässig sind(d.h. kein Glas oder Plexiglas). Hinweis: Ein Inkubator sollte als "Tag"-Inkubator bezeichnet und auf einen LD-Zyklus von 12 Stunden Licht und 12 Stunden Dunkelheit eingestellt werden. Der zweite Inkubator sollte als "Nacht"-Inkubator bezeichnet und auf die Umkehrung des ersten mit 12 Stunden Dunkelheit, gefolgt von 12 Stunden Licht gesetzt werden. Der Nachtbrutkasten muss in dem Raum platziert werden, der im Dunkeln zugänglich ist, so dass Fliegen, die Nachtbedingungen erleben, für die Experimente leicht zugänglich sind.</li>
		<li>Platzieren Sie die Fliegenfläschchen entweder in Tages- oder Nachtbrutstätten. Sammeln Sie frisch geschlüpfte Fliegen in einer frischen Durchstechflasche, 20-30 pro Test und halten Sie im gleichen Inkubator für 2-3 Tage.</li>
		<li>Nach 2-3 Tagen, verwenden Sie Fliegen für die Temperatur Präferenz Verhaltenstest.<ol>
<li>Für Tag (Zeitgeber Zeit (ZT) 0-12) Experimente, sammeln Fliegen aus dem Tag Inkubator.</li>
			<li>Unmittelbar vor den Verhaltensexperimenten nehmen Sie die gesammelten Fliegenfläschchen aus dem Tagesbrutkasten.</li>
			<li>Für nächtliche (ZT 13-24) Experimente, sammeln Fliegen aus dem Nachtbrutzentrum.</li>
			<li>Unmittelbar vor den Verhaltensexperimenten die gesammelten Fliegenfläschchen aus dem Nachtbruthaus nehmen, mit Aluminiumfolie umwickeln und in eine Box im dunklen Raum unter einer roten Lampe legen. Anmerkung: Da der Temperaturpräferenz-Verhaltenstest bei Dunkelheit für die Nachtexperimente durchgeführt wird, muss die Lichtexposition gegenüber den Fliegen bis zum Ende der Verhaltensexperimente verhindert werden. Hinweis: Die Fliegen sollten am Tag der Experimente nicht Kohlendioxid ausgesetzt werden.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Experimenten der konstanten Dunkelheit (DD)
	<ol>
<li>
DD-Tag
		<ol>
<li>Für DD-Tagesexperimente, die wir als "Übergangs-Inkubator" für den Rest des Manuskripts bezeichnen, ist ein zusätzlicher Inkubator notwendig. Der Übergangsinkubator muss in dem raumgreifenden Raum platziert werden, der im Dunkeln zugänglich ist, so dass Fliegen, die DD-Bedingungen erleben, für die Experimente leicht zugänglich sind. Ein Beispiel lichte Zeitplan für einen Übergangs-Inkubator hätte das Licht einein von 13-19 Uhr und das Licht OFF von 19.00-13.00 Uhr(Abbildung 1).</li>
			<li>Sammeln Sie die Fliegen, die im Gründerzentrum des Tages aufgezogen wurden. Legen Sie die Fliegenfläschchen zwischen 13 und 19 Uhr in den Übergangsinkubator, wenn das Licht eingeschaltet ist. Auf diese Weise werden die Fliegen bis 19 Uhr richtig dem Licht ausgesetzt, dann schaltet sich das Licht aus.</li>
			<li>Am nächsten Tag, vor 13 Uhr, unter dunklen Bedingungen, nehmen Sie die Fliegenfläschchen aus dem Übergangsbrutkasten, wickeln Sie sie mit Aluminiumfolie und legen Sie sie in eine Schachtel. Bewahren Sie die Box noch einen Tag in jedem Inkubator auf.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
DD Nacht
		<ol>
<li>Sammeln Sie die Fliegen, die im Nachtbruthaus im Dunkeln unter einer roten Lampe angehoben wurden. Oder sammeln Sie zusätzlich die Fliegen, wenn das Nacht-Inkubator-Licht eingeschaltet ist.</li>
			<li>Wrap gesammeltFläschchen mit Aluminiumfolie in der Dunkelheit jedes Mal, wenn die Lichter aus sind und legen Sie die Fläschchen in einer Box. Bewahren Sie die Box für zwei weitere Tage in einem Inkubator auf (Abbildung 1B). Anmerkung: Da der Temperaturpräferenz-Verhaltenstest bei Dunkelheit für die Nachtexperimente durchgeführt wird, muss die Lichtexposition gegenüber den Fliegen bis zum Ende der Verhaltensexperimente verhindert werden.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Experimente mit konstantem Licht (LL)
	<ol>
<li>
LL Day
		<ol>
<li>Für LL-Tagesexperimente ist ein zusätzlicher Inkubator erforderlich. Dieser Inkubator behält den LL-Zustand (25 °C, 800 Lux) bei, wobei das Licht kontinuierlich eingeschaltet ist.</li>
			<li>Sammeln Sie Fliegen, die im Gründerzentrum des Tages aufgezogen wurden. Legen Sie die Fliegenfläschchen jederzeit während ihres "Tages" in den LL-Inkubator.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
LL Night
		<ol>
<li>Sammeln Sie Fliegen, die im Nachtbruthaus angehoben wurden. Übertragen Sie die Fliegenfläschchen vom Nachtbrutschrank zum LL-Inkubator während der Zeit, in der das Licht im Nachtbrutschrank eingeschaltet ist. Hinweis: Zum Beispiel schaltet sich das Licht um 7 Uhr im Nacht-Inkubator aus. Übertragen Sie die Fliegenfläschchen vom Nachtbrutschrank vor 7 Uhr morgens in den LL-Inkubator und bewahren Sie die Fläschchen noch 4 Tage im LL-Inkubator auf. Anmerkung: An Tag 4 unter LL-Bedingungen wird die Schwingung der Bewegungsaktivität15,16abgeschafft, während die TPR noch 3aufrechterhalten wird.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
</ol>2. Das Gerät für den Temperaturpräferenz-Verhaltenstest
<ol><li>Legen Sie eine Plexiglasabdeckung (29 cm x 19,2 cm) (Abbildung 4) auf eine Aluminiumplatte.</li>
	<li>Überwachen Sie die Lufttemperatur zwischen der Platte und der Abdeckung. Sechs Temperatursonden werden an verschiedenen Stellen an der Innenseite der Abdeckung innerhalb einer der Fahrspuren angebracht (Abbildung 2). Hinweis: Stellen Sie sicher, dass die Sonden weder die Aluminiumplatte noch die Plexiglasabdeckung berühren. Die Lufttemperatur sollte auf einen Gradienten von 18-32 °C eingestellt werden.</li>
	<li>Stellen Sie das Gerät in einen Umgebungsraum, der bei 25 °C/65-75% RH gehalten wird. Dieses Zimmer muss von jeder Außenleuchte abgeriegelt werden. Ein Umgebungsraum ist normalerweise mit Ventilatoren ausgestattet, um eine bestimmte Temperatur und Luftfeuchtigkeit zu halten. Hinweis: Die Luft des Lüfters stört wahrscheinlich einen stabilen Temperaturgradienten am Gerät. Um dies zu verhindern, verwenden wir ein transparentes Blatt, das den Bereich um das Gerät abdeckt.</li>
	<li>Bereiten Sie ein Thermometer und Hygrometer vor, um die Temperatur und Luftfeuchtigkeit im Umgebungsraum zu überprüfen. Hinweis: Licht beeinflusst die Temperaturpräferenz von Drosophila3. Die gleiche Lichtintensität sollte gleichmäßig auf das Gerät geliefert werden. Die Intensität unserer Umgebungsraumleuchten beträgt 800 Lux. Hinweis: Wenn die Verhaltensexperimente durchgeführt werden, legen Sie ein Rohr aus demCO2-Tank verbunden oder liefern Sie in der Nähe des Lochs der Oberseite des Geräts, um zu beästhesieren und die Fliegen loszuwerden.</li>
</ol>3. Vorbereitung von Geräten für den Einsatz
<ol><li>Schalten Sie das Gerät mindestens 30 min ein, um den Temperaturgradienten auf der Plattenoberfläche richtig zu bestimmen (Abbildung 3).</li>
	<li>Beschichten Sie die Abdeckung des Verhaltensgeräts mit wasserabweisend, um zu verhindern, dass Fliegen auf die Wände oder die Decke der Abdeckung klettern. Wischen Sie das überschüssige Wasser abweisend ab und lassen Sie die Abdeckung für 25-30 min trocknen.</li>
	<li>Entfernen Sie jegliche Kondensation auf der Aluminiumplatte. Legen Sie die Plexiglasabdeckung auf die Aluminiumplatte und sichern Sie sie mit sechs C-Klemmen (Abbildung 2). Hinweis: Es ist sehr wichtig, dass die Abdeckung gut versiegelt ist, falls erforderlich, Doppelklebeband verwendet werden kann.</li>
	<li>Lassen Sie die Abdeckung für mindestens 15 min. Der Temperaturgradient zwischen der Aluminiumplatte und der Abdeckung wird von 18-32 °C erzeugt.</li>
</ol>4. Temperaturpräferenz Verhalten Assay
<ol><li>Laden Sie die Fliegen in den Raum zwischen der Aluminiumplatte und der Plexiglasabdeckung des Geräts durch kleine Löcher in der Mitte jeder Spur der Abdeckung (Abbildungen 2 und 4). Bedecken Sie die Löcher mit Abdeckungsschlüpfern, um zu verhindern, dass die Fliegen entkommen.</li>
	<li>Für die dunklen Bedingungen, schalten Sie alle Lichter im Umweltraum aus. Eine rote Lampe kann verwendet werden, wenn die Fliegen in das Gerät gelegt werden. Stellen Sie sicher, dass die Fliegen bis zur Verhaltensexperimente keinem Licht außer einer roten Lampe ausgesetzt sind.</li>
	<li>Verwenden Sie für jede Studie 20-25 erwachsene Fliegen, die in nachfolgenden Versuchen nicht wiederverwendet werden sollen. Der Verhaltenstest wird 30 min lang durchgeführt. Nehmen Sie ein paar Bilder mit oder ohne Blitz. Achten Sie darauf, während der Experimente nicht viel Lärm oder plötzliche Bewegungen zu machen.</li>
	<li>Zeichnen Sie die Temperatur aller sechs Sonden auf dem Gerät auf. Beachten Sie die Raumtemperatur sowie die Luftfeuchtigkeit.</li>
	<li>Anästhetisieren Sie die Fliegen im Gerät mit Kohlendioxidgas, lösen Sie die Klammern, entfernen Sie die Plexiglasabdeckung und entfernen Sie die Fliegen von der Platte. Nach jedem Experiment werden die Fliegen verworfen. Wischen Sie jegliche Kondensation oder Feuchtigkeit von der Platte ab. Ersetzen Sie die Abdeckung auf der Platte und ziehen Sie sie mit den Klemmen in Vorbereitung auf das nächste Experiment fest.</li>
	<li>Um eine Darstellung der Temperaturpräferenz über den ganzen Tag zu haben, wird der 24-Stunden-Zeitraum in acht Zeitzonen aufgeteilt, vier tagsüber und vier in der Nacht. Zum Beispiel verwenden wir diese ZT oder CT 1-3, 4-6, 7-9, 10-12, 13-15, 16-18, 19-21 und 22-24. Anmerkung: Da Phänotypschwankungen, die durch Maskierungseffekte verursacht werden, unmittelbar nach dem Einschalten des Lichts (ZT0) oder OFF (ZT12) zu erwarten sind, untersuchen wir nicht das Temperaturpräferenzverhalten in diesen Zeiten (ZT oder CT 0-1, 11.5-13 und 23.5-24). In jeder Zeitzone müssen mindestens fünf Versuche durchgeführt werden, damit die Ergebnisse statistisch einwandfrei sind.</li>
</ol>5. Datenanalyse
<ol><li>Berechnen Sie den Temperaturgradienten wie folgt: Bestimmen Sie, wo die Temperaturfühler platziert werden, basierend auf den beiden Linealen, die auf der oberen und unteren Seite der Plexiglasabdeckung entlang der Kanten platziert werden (Abbildung 2A).</li>
	<li>Der Temperaturgradient zwischen den Temperatursonden wird als linear geschätzt. Basierend auf den Positionen der Temperaturfühler sowie den entsprechenden aufgezeichneten Temperaturen zeichnen Sie Linien, die jeden Temperaturgrad in der entsprechenden Position auf den Bildern darstellen. Zählen Sie die Anzahl der Fliegen in jedem Gradintervall. Schließen Sie alle Fliegen an den Wänden oder der Decke der Abdeckung aus.</li>
	<li>Berechnen Sie den Prozentsatz der Fliegen in jedem Temperaturbereich jeder Spur. Eine mittlere bevorzugte Temperatur wird berechnet, indem die Produkte des prozentualen Anteils der Fliegen und der Temperatur jedes Intervalls summiert werden, wie unten gezeigt: % der Fliegen x 18,5 °C + % der Fliegen x 19,5 °C + % der Fliegen x 20,5 °C ....+ % der Fliegen x 31,5 °C + % der Fliegen x 32,5 °C.</li>
	<li>Berechnen Sie die durchschnittliche bevorzugte Temperatur in jeder Zeitzone: Das Temperaturpräferenzverhalten wird >5 Mal während jeder Zeitzone durchgeführt (ZT 1-3, 4-6, 7-9, 10-12, 13-15, 16-18, 19-21 und 22-24). Um die durchschnittliche bevorzugte Temperatur in jeder Zeitzone zu berechnen, wird die mittlere bevorzugte Temperatur jeder Versuchszeit zusammen gemittelt. Die s.e.m.-Fehlerleisten sind gleich dem Fehler zwischen den Versuchen.</li>
</ol>

<ol><li>Krauchi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+thermophysiological+cascade+leading+to+sleep+initiation+in+relation+to+phase+of+entrainment%5BTitle%5D)+AND+%22Sleep+Med.+Rev%22%5BJournal%5D)">The thermophysiological cascade leading to sleep initiation in relation to phase of entrainment.</a> Sleep Med. Rev. 11, 439-451 (2007).</li>
<li>Krauchi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+human+sleep-wake+cycle+reconsidered+from+a+thermoregulatory+point+of+view%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Behav%22%5BJournal%5D)">The human sleep-wake cycle reconsidered from a thermoregulatory point of view.</a> Physiol. Behav. 90, 236-245 (2007).</li>
<li>Kaneko, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circadian+Rhythm+of+Temperature+Preference+and+Its+Neural+Control+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Circadian Rhythm of Temperature Preference and Its Neural Control in Drosophila.</a> Curr. Biol. 22, 1851-1857 (2012).</li>
<li>Allada, R., Chung, B. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circadian+organization+of+behavior+and+physiology+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Circadian organization of behavior and physiology in Drosophila.</a> Annu. Rev. Physiol. 72, 605-624 (2010).</li>
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<li>Hong, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((cAMP+signalling+in+mushroom+bodies+modulates+temperature+preference+behaviour+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">cAMP signalling in mushroom bodies modulates temperature preference behaviour in Drosophila.</a> Nature. 454, 771-775 (2008).</li>
<li>Dillon, M. E., Wang, G., Garrity, P. A., Huey, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review%3A+Thermal+preference+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Therm.+Biol%22%5BJournal%5D)">Review: Thermal preference in Drosophila.</a> J. Therm. Biol. 34, 109-119 (2009).</li>
<li>Viswanath, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Opposite+thermosensor+in+fruitfly+and%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Opposite thermosensor in fruitfly and.</a> Nature. 423, 822-823 (2003).</li>
<li>Gallio, M., Ofstad, T. A., Macpherson, L. J., Wang, J. W., Zuker, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+coding+of+temperature+in+the+Drosophila+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The coding of temperature in the Drosophila brain.</a> Cell. 144, 614-624 (2011).</li>
<li>Stevenson, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+relative+importance+of+behavioral+and+physiological+adjustments+controlling+body+temperature+in+terrestrial+ectotherms%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+Nat%22%5BJournal%5D)">The relative importance of behavioral and physiological adjustments controlling body temperature in terrestrial ectotherms.</a> Am. Nat. 126 (3), (1985).</li>
<li>Refinetti, R., Menaker, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+circadian+rhythm+of+body+temperature%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Behav%22%5BJournal%5D)">The circadian rhythm of body temperature.</a> Physiol. Behav. 51, 613-637 (1992).</li>
<li>Duffy, J. F., Dijk, D. J., Klerman, E. B., Czeisler, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Later+endogenous+circadian+temperature+nadir+relative+to+an+earlier+wake+time+in+older+people%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Later endogenous circadian temperature nadir relative to an earlier wake time in older people.</a> Am. J. Physiol. 275, 1478-1487 (1998).</li>
<li>Saper, C. B., Lu, J., Chou, T. C., Gooley, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+hypothalamic+integrator+for+circadian+rhythms%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The hypothalamic integrator for circadian rhythms.</a> Trends Neurosci. 28, 152-157 (2005).</li>
<li>Konopka, R. J., Pittendrigh, C., Orr, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reciprocal+behaviour+associated+with+altered+homeostasis+and+photosensitivity+of+Drosophila+clock+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurogenet%22%5BJournal%5D)">Reciprocal behaviour associated with altered homeostasis and photosensitivity of Drosophila clock mutants.</a> J. Neurogenet. 6, 1-10 (1989).</li>
<li>Qiu, J., Hardin, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((per+mRNA+cycling+is+locked+to+lights-off+under+photoperiodic+conditions+that+support+circadian+feedback+loop+function%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">per mRNA cycling is locked to lights-off under photoperiodic conditions that support circadian feedback loop function.</a> Mol. Cell Biol. 16, 4182-4188 (1996).</li>
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<li>Hendricks, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rest+in+Drosophila+is+a+sleep-like+state%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Rest in Drosophila is a sleep-like state.</a> Neuron. 25, 129-138 (2000).</li>
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<li>Parisky, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PDF+cells+are+a+GABA-responsive+wake-promoting+component+of+the+Drosophila+sleep+circuit%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">PDF cells are a GABA-responsive wake-promoting component of the Drosophila sleep circuit.</a> Neuron. 60, 672-682 (2008).</li>
</ol>

Es gibt nichts zu verraten.

Hier veranschaulichen wir die Details des Temperaturpräferenzverhaltensapparates und die Analyse des TPR-Verhaltens. Drosophila weist die markanten, robusten und reproduzierbaren Eigenschaften des uhrgesteuerten TPR auf. Unsere Daten deuten jedoch darauf hin, dass mindestens zwei Faktoren, Umgebungslicht und Alter, die TPR-Verhaltensphänotypen erheblich stören.
Wir beobachten, dass Licht die Temperaturpräferenz in Drosophilaerheblich beeinflusst. Es stimmt mit der Tatsache üb...

Temperatur ist ein allgegenwärtiger Umwelthinweis. Tiere zeigen eine Vielzahl von Verhaltensweisen, um schädliche Temperaturen zu vermeiden und bequeme zu suchen. Drosophila weisen ein robustes Temperaturpräferenzverhaltenauf 6,7. Wenn Fliegen in einen Temperaturgradienten von 18-32 °C freigesetzt werden, vermeiden die Fliegen sowohl warme als auch kalte Temperaturen und wählen schließlich eine bevorzugte Temperatur von 25 °C am Morgen3. Die Warmtemperatursensoren sind eine Reihe von thermosensorischen Neuronen, AC-Neuronen, die Drosophila transienten Rezeptor-Potential (TPR) Kanal, TRPA16,9express. Die Kalttemperatursensoren befinden sich in den 3. Antennensegmenten, da das Abtragen der 3. Antennensegmente das Fehlen von Kalttemperaturvermeidung6verursacht. Kürzlich wurde das TRPP-Protein Brivido (Brv) identifiziert10. Da Brv in den 3. Antennensegmenten exprimiert wird und die Kalterkennung vermittelt, ist Brv ein mögliches Kaltsensormolekül, das für das Temperaturpräferenzverhalten entscheidend ist. Insgesamt verwenden die Fliegen diese beiden Temperatursensoren, um die warmen und kalten Temperaturen zu vermeiden und eine bevorzugte Temperatur zu finden.
Während Säugetiere Wärme erzeugen, um ihre Körpertemperatur zu regulieren, passen Ektoremen ihre Körpertemperaturen in der Regel an die Umgebungstemperatur11an. Einige Ektothermen sind dafür bekannt, ein tägliches TPR-Verhalten zu zeigen, von dem angenommen wird, dass es eine Strategie für die Ektothermen ist, ihre BTR12zu regulieren. Um festzustellen, ob die Fliegen TPR aufwiesen, wiederholten wir die Temperaturpräferenz-Verhaltensanalyse an verschiedenen Punkten während einer Spanne von 24 Stunden. Wir fanden heraus, dass Drosophila eine tägliche TPR aufweisen, die morgens niedrig und abends hoch ist und einem ähnlichen Muster wie BTR beim Menschen folgt13.
In Drosophilagibt es 150-Uhr-Neuronen im Gehirn. Die Uhrenneuronen, die die motorische Aktivität regulieren, werden M- und E-Oszillatoren genannt. Interessanterweise regulieren M- und E-Oszillatoren jedoch tPR nicht, stattdessen zeigten wir, dass DN2-Uhrenneuronen im Gehirn TPR regulieren, aber nicht die motorische Aktivität. Diese Daten deuten darauf hin, dass TPR unabhängig von der Motoraktivität reguliert wird. Insbesondere ist die BTR von Säugetieren auch unabhängig von der motorischen Aktivität reguliert. Ablationsstudien an Ratten zeigen, dass BTR durch spezifische SCN-Neuronen gesteuert wird, die auf eine andere Teilmenge subparaventrikulärer Zonenneuronen abzielen als solche, die die motorische Aktivität steuern14. Daher sehen unsere Daten die Möglichkeit in Betracht, dass die Säugetier-BTR und die Fliege TPR evolutionär konserviert sind3, da sowohl Fliegen-TPR als auch Säugetier-BTR zirkadiane uhrabhängige Temperaturrhythmen aufweisen, die unabhängig von der motorischen Aktivität reguliert werden.
Hier beschreiben wir die Details, wie man den TPR-Verhaltenstest in Drosophilaanalysiert. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung nicht nur des molekularen Mechanismus und der neuronalen Schaltkreise von TPR, sondern auch, wie das Gehirn verschiedene Umwelthinweise und innere biologische Uhren integriert.

<table><tbody><tr><td>Bright Lab Jr. Safelight</td><td>Amazon</td><td>#B00013J8UY</td><td>Rotes Licht für dunkle Räume</td></tr><tr><td>Rain X</td><td>SOPUS Produkte</td><td></td><td>Wasserabweisend: Plexiglasabdeckung anbringen</td></tr><tr><td>C-Clamp</td><td>Home Depot</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Temperatur-/Hygrometer</td><td>Fisher</td><td>15-077-963</td><td></td></tr><tr><td>Peltier-Geräte</td><td>TE Technology, Inc.</td><td>HP-127-1.4-1.15-71P</td><td></td></tr><tr><td>Thermometer</td><td>Fluke</td><td>Fluke 52II</td><td></td></tr><tr><td>Tischregler</td><td>Ofenindustrie</td><td>5R6-570-15R und 5R6-570-24R</td><td></td></tr><tr><td>Temperaturfühler</td><td>Ofenindustrie</td><td>TR67-32</td><td></td></tr><tr><td>Generisches 480 Watt ATX-Netzteil</td><td></td><td></td><td>Computerkühlsystem</td></tr><tr><td>MCR220-QP-RES Dualer 120-mm-Kühler mit Ausgleichsbehälter&nbsp;</td><td>Swiftech</td><td></td><td>Computerkühlsystem</td></tr><tr><td>MCP350 Inline 12V DC Pumpe</td><td>Swiftech</td><td></td><td>Computerkühlsystem</td></tr><tr><td>MCW50 Grafikkarte Flüssigkeitskühler</td><td>Swiftech</td><td></td><td>Computerkühlsystem</td></tr><tr><td>Scythe Kaze-Jyuni SY1225SL12SH Lüfter</td><td>Crazy PC</td><td></td><td>Computerkühlsystem</td></tr></tbody></table>

design und analyse des temperaturpräferenzverhaltens und seines circadianen rhythmus in drosophila

Design and Analysis of Temperature Preference Behavior and its Circadian Rhythm in Drosophila

Die zirkadiane Uhr reguliert viele Aspekte des Lebens, einschließlich Schlaf, Bewegungsaktivität, und Körpertemperatur (BTR) Rhythmen1,2. Wir identifizierten vor kurzem eine neuartige Drosophila zirkadiane Ausgabe, genannt die Temperaturpräferenz Rhythmus (TPR), in dem die bevorzugte Temperatur in Fliegen steigt während des Tages und fällt in der Nacht 3. Überraschenderweise werden die TPR und die motorische Aktivität durch verschiedene zirkadiane Neuronen3gesteuert. Drosophila-Bewegungsaktivität ist eine bekannte zirkadiane Verhaltensleistung und hat starke Beiträge zur Entdeckung vieler konservierter zirkadianer Uhrgene und-mechanismen4 geleistet. Daher wird das Verständnis von TPR zur Identifizierung bisher unbekannter molekularer und zellulärer zirkadianer Mechanismen führen. Hier beschreiben wir, wie der TPR-Assay durchgeführt und analysiert wird. Diese Technik ermöglicht nicht nur die Sezieren der molekularen und neuronalen Mechanismen von TPR, sondern bietet auch neue Einblicke in die grundlegenden Mechanismen der Gehirnfunktionen, die verschiedene Umweltsignale integrieren und tierseuchenverhalten regulieren. Darüber hinaus deuten unsere kürzlich veröffentlichten Daten darauf hin, dass die Fliegen-TPR Merkmale mit dem Säugetier BTR3teilt. Drosophila sind Ektothermen, bei denen die Körpertemperatur in der Regel verhaltensreguliert ist. Daher ist TPR eine Strategie, die verwendet wird, um eine rhythmische Körpertemperatur in diesen Fliegen5-8zu erzeugen. Wir glauben, dass eine weitere Erforschung von Drosophila TPR die Charakterisierung der Mechanismen erleichtern wird, die der Körpertemperaturkontrolle bei Tieren zugrunde liegen.

Ein Beispiel für den Temperaturpräferenzrhythmus ist in Abbildung 5dargestellt. Wenn das Verhaltensverfahren erfolgreich durchgeführt wird, sollten die Fliegen eine TPR aufweisen, in der sie eine niedrige Temperatur am Morgen und höhere Temperatur am Abend bevorzugen. Der Anstieg der Temperaturpräferenz von 1-1,5 °C während des Tages sollte im Laufe des Tages beobachtet werden, unabhängig vom genetischen Hintergrund, da wir gezeigt haben, dass w1118, yw und Canton S ...

Wir haben vor kurzem eine neuartige Drosophila circadiane Ausgabe, Temperaturpräferenz Rhythmus (TPR), in dem die bevorzugte Temperatur in Fliegen steigt während des Tages und fällt während der Nacht identifiziert. TPR wird unabhängig von einem anderen zirkadianen Ausgang, der Motoraktivität, reguliert. Hier beschreiben wir das Design und die Analyse von TPR in Drosophila.

Design und Analyse des Temperaturpräferenzverhaltens und seines circadianen Rhythmus in Drosophila

The circadian clock regulates many aspects of life, including sleep, locomotor activity, and body temperature (BTR) rhythms1,2. We recently identified a ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Temperaturpräferenz von Drosophila zu bestimmen. Dies wird erreicht, indem zunächst die Fliegen und die Versuchsapparatur vorbereitet werden, die um eine temperaturgesteuerte Aluminiumbasis aufgebaut ist. Sobald die Temperaturen in der Apparatur eingestellt sind, werden eine Gruppe Fliegen eingebracht und nach einer halben Stunde ihre Temperaturpräferenz erfasst.Schließlich kann der Assay unter einer Vielzahl experimenteller Bedingungen eingesetzt werden. Zum Beispiel circadiane Rhythmen der Temperaturpräferenz. Diese Methode kann helfen, die zentralen Fragen im Forschungsbereich der Zielrhythmen zu beantworten.Da diese Zielrhythmen der Temperaturpräferenz durch andere Mechanismen gesteuert werden als die motorische Aktivität, wird dieser Verhaltensassay zur Identifizierung neuer molekularer und zellulärer Mechanismen führen, die zuvor mit Ansätzen zur Messung der motorischen Aktivität nicht erfasst wurden. Diese Methode kann zudem helfen, zentrale Fragen im Bereich der sensorischen Neurowissenschaften zu beantworten, beispielsweise bezüglich der Wahrnehmung von Temperatur und Schmerz. Da dieser temperaturbasierte Verhalte

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Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Wir beschreiben Verfahren zur Erfassung täglichen Bewegungsaktivität...

Assaying Bewegungsaktivität zu zirkadianen Rhythmen Study and Sleep Parameter in Drosophila</em

Drosophila-Fruchtfliegen können kleine Temperaturänderungen erkennen und daher Umgebungen mit günstigen thermischen Bedingungen auswählen. Dieses Video beschreibt einen Verhaltensassay, der die Temperaturpräferenz von Drosophila-Larven auf einem linearen thermischen Gradienten testet.

Temperaturgradienten-Assay: Eine Methode zum Testen der Temperaturpräferenz bei Drosophila-Larven

Dieses Video beschreibt das Drosophila-Aktivitätsmonitor-System (DAM), das zur Verfolgung der Bewegungsaktivität verwendet wird. Die Forscher verwenden Aktivitätsdaten, die vom DAM gesammelt wurden, um den zirkadianen Rhythmus bei Fruchtfliegen zu untersuchen. Der vorgestellte Protokollclip zeigt, wie man Fliegen in das Gerät lädt und Aktivitätsdaten für zirkadiane Experimente aufzeichnet.

Drosophila Activity Monitor (DAM): Eine Methode zur Messung der Bewegungsaktivität bei Fliegen

Hier beschreiben wir eine Hell-Dunkel-Präferenz-Test für Drosophila Larve. Dieser Test liefert Informationen zur angeborenen und zirkadiane Regulierung von Licht Abtasten und Verarbeiten photobehavior.

Licht Vorlieben Assay zur angeborenen und Circadian geregelten Photobehavior in Studie<em&gt; Drosophila</em&gt; Larven

Die Speiseschaltung in Drosophila melanogaster-Larven serviert ein einfaches aber leistungsstarkes Modell, das Änderungen in der Zuführungsrate, mit Veränderungen in der neuronalen Schaltkreise stomatogastrischen korreliert werden können. Diese Schaltung wird der zentrale serotonerge Neuronen, die Projektionen auf die Mundhaken sowie die Vorderdarm senden zusammen.

Funktionelle Analyse der Larvenfütterung Circuit in Drosophila</i

Hier präsentieren wir ein Protokoll, um die bevorzugte Umgebungstemperatur von Drosophila -Larven mit einem kontinuierlichen Temperaturgefälle zu bestimmen.

Ein Temperaturgradient Assay thermische Präferenzen der Drosophila Larven bestimmen

Hier präsentieren wir ein Protokoll, um automatisch bestimmen die lokomotorische Leistung von Drosophila bei schwankenden Temperaturen mit einer programmierbaren temperaturgeführte Arena, die schnell und präzise Temperaturänderungen in Zeit und Raum produziert.

Eine automatisierte Methode zur Bestimmung der Leistungsfähigkeit von Drosophila als Reaktion auf Temperaturänderungen in Raum und Zeit

Hier beschreiben wir, wie man Drosophila mit einem zirkadianen Tag synchronisiert. Dies ist der erste und wichtigste Schritt, der für das Studium biologischer Rhythmen und Chronobiologie notwendig ist.

Circadian Entrainment von Drosophila Melanogaster

Insekten haben einen optimalen Umgebungstemperaturbereich, in dem sie bleiben möchten, und viele externe und interne Faktoren können diese Präferenz ändern. Hier beschreiben wir eine kostengünstige und einfache Methode zur Untersuchung der Temperaturwahl, die es Insekten ermöglicht, ihr natürliches Verhalten frei zu zeigen.

Bestimmung der Temperaturpräferenz von Moskitos und anderen Ektothermen

In diesem Video-Beitrag beschreiben wir eine neue Methode erlaubt den Bau von Geruchsrezeptoren Gradienten mit stabilen und kontrollierbaren Geometrien. Wir haben kurz zeigen, wie diese Gradienten zu Bildschirm kann für olfaktorische Mängel (vollständiger oder teilweiser Anosmie) verwendet werden und auf subtilere Funktionen der Chemotaxis Verhalten zu studieren.

Hochauflösende Messung von Odor-Driven Behavior in Drosophila-Larven

Erfahren Sie die Analyse des Temperaturpräferenzverhaltens und seines circadianen Rhythmus bei Drosophila. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung zirkadianer Regulationsmechanismen unabhängig von der Lokomotorik.

Design und Analyse des Temperaturpräferenzverhaltens und seines circadianen Rhythmus in Drosophila

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