Entwicklung von 3D-organisiertem menschlichem Herzgewebe innerhalb einer mikrofluidischen Plattform
June 15th, 2021
Das Ziel dieses Protokolls ist es, die Entwicklung eines dreidimensionalen (3D) mikrofluidischen Modells von hoch ausgerichtetem menschlichem Herzgewebe zu erklären und zu demonstrieren, das aus Stammzellen gewonnenen Kardiomyozyten besteht, die mit Herzfibroblasten (CFs) in einem biomimetischen, kollagenbasierten Hydrogel in Kokulturiert sind, für Anwendungen in der Kardgewebeentwicklung, im Arzneimittelscreening und in der Krankheitsmodellierung.
Herz-Kreislauf-Erkrankungen sind nach wie vor die häufigste Todesursache weltweit. Traditionelle In-vitro-Modelle basieren auf Monolayer-Kultur. Das Herz, insbesondere der Herzmuskel oder das Myokard, ist jedoch in seiner 3D-Anisotropie und zellulären Zusammensetzung komplex.
Daher ist es wichtig, die Komplexität der Gewebezusammensetzung in In-vitro-Modellen zu verbessern, um sowohl die zellulären Bestandteile als auch die Struktur des Myokards besser nachzuahmen. Hier in dieser Arbeit demonstrieren wir ein Protokoll für die Entwicklung eines 3D-reifen Stammzell-abgeleiteten menschlichen Herzgewebes in einem neuartigen mikrofluidischen Gerät. Dieses Gerät enthält einen 3D-Hauptgewebekanal mit angeborenen elliptischen Mikropfosten, die einen hohen Grad der Ausrichtung der umgebenden Hydrogel-verkapselten Herzzellen induzieren.
Der Hauptkanal wird von Medienkanälen mit Injektionsöffnungen flankiert, die eine Nährstoffdiffusion im gesamten Gewebe ermöglichen. Aufgrund der Sorgfalt, die bei der Handhabung der mikrofluidischen Geräte erforderlich ist, ist die visuelle Darstellung dieses Protokolls hilfreich, um 3D-Herzgewebe in einem mikrofluidischen Gerät mit eingebetteten Mikropfosten für eine verbesserte Gewebeausrichtung richtig zu etablieren. Um den menschlichen Herzfibroblasten zu dissoziieren, nehmen Sie zuerst den Kolben aus dem Inkubator heraus.
In die Biosicherheitswerkbank legen und beginnen, die verbrauchten Medien aus dem Kolben abzusaugen. Nehmen Sie dann drei MLs PBS 1X, um den Kolben zu waschen. Schließen Sie die Kappe und schwenken Sie den Kolben, so dass der Boden ordnungsgemäß mit PBS beschichtet ist.
Saugen Sie das PBS an. Nehmen Sie drei MLs 37-Grad-Trypsin und fügen Sie es in den Kolben. Dann kippen Sie den Kolben und schwenken Sie, so dass der Boden vollständig beschichtet ist.
Dann für vier bis sechs Minuten in den Inkubator geben. Neutralisieren Sie das Trypsin mit FGM3, indem Sie drei MLs nehmen und in den Kolben geben. Pipetieren Sie die Lösung auf und ab, um alle Zellen zu verdrängen, die auf der Rückseite des Kolbens verbleiben.
Sammeln Sie die Zellsuspension in einem 15 ML Falcon-Röhrchen. Nehmen Sie 10 Mikroliter der Zellsuspension und geben Sie sie in einem Hämozytometer ab, um die Zellen mit einem Mikroskop zu zählen. Zentrifugieren Sie die Zellsuspension bei 250 G für vier Minuten.
Nach der Zentrifugation saugen Sie den Überstand an, wobei Sie darauf achten, das Zellpellet nicht zu stören. Resuspendieren Sie das Zellpellet mit frischem FGM3, um die gewünschten 75 Millionen Zellen pro ML-Suspension herzustellen. Setzen Sie die Zellen wieder auf und legen Sie das Röhrchen dann mit einer locker angebrachten Kappe ab.
Um die Kardiomyozyten zu dissoziieren, nehmen Sie die Platte aus dem Inkubator und saugen Sie das Medium an. Nehmen Sie sechs ML PBS und waschen Sie die Brunnen, so dass sich in jedem Brunnen ein ML PBS befindet. Saugen Sie das PBS an und achten Sie darauf, die an der Platte befestigten Zellen nicht zu stören.
Fügen Sie sechs ML erwärmtes trypLE Express hinzu, so dass sich in jeder Vertiefung einer Platte mit sechs Wellen ein ML befindet. Inkubieren Sie die Zellen mit dem trypLE für 10 Minuten. Neutralisieren Sie nach 10 Minuten das TrypLE mit sechs ML RPMI plus B27 plus Insulin, so dass Sie jedem Brunnen einen ML RMPI hinzufügen.
Verwenden Sie eine ML-Pipette, um die Lösung zu sammeln und sie gegen die Rückseite der Vertiefungen zu sprengen, um sicherzustellen, dass alle Zellen abgehoben werden. Sammeln Sie die Zellsuspension in einem 15 ML Falcon-Röhrchen. Zentrifugieren Sie das Röhrchen bei 300 G für drei Minuten.
Nach der Zentrifugation das Medium und das TrypLE absaugen. Dieser Schritt ist wichtig, um die empfindlichen Kardiomyozyten zu waschen. Dieser Schritt stellt sicher, dass alle TrypLE bei der Bildung von 3D-Herzgewebe verschwunden sind.
Resuspend das Zellpellet in fünf MLs RPMI plus B27 plus Insulin. Verwenden Sie eine ML-Pipette, um die Lösung nach oben und unten zu pipetten, um eine homogene Zellsuspension zu gewährleisten. Nehmen Sie 10 Mikroliter der Zellsuspension zum Zählen mit dem Hämozytometer.
Zentrifugieren Sie die Zellen bei 300 G für drei Minuten. Saugen Sie die Medien nach der Zentrifugation zum zweiten Mal an. Fügen Sie die entsprechende Menge rpmI plus B27 plus Insulin hinzu, um 75 Millionen Zellen pro ML-Suspension zu erreichen, und resuspendieren Sie dann.
Um die Kollagenlösung für die Verkapselung vorzubereiten, haben Sie alle Reagenzien auf einem Eiskasten in der Haube. Nehmen Sie dann 75 Mikroliter des Kollagens. Das Kollagen ist sehr viskos, also langsam mit der Pipette aufnehmen, dann in einem Mikrozentrifugenröhrchen auf Eis dosieren.
Nehmen Sie 13,85 Mikroliter RPMI und fügen Sie das Kollagen in der Falcon-Röhre hinzu. Dann nehmen Sie 10 Mikroliter Phenolrot und fügen Sie der Mischung auf Eis hinzu und resuspend. Nehmen Sie schließlich 1,15 Mikroliter eines normalen NaOH und fügen Sie der Suspension hinzu, um sie zu neutralisieren.
Nehmen Sie dann eine 200-Mikroliter-Pipettenspitze und brauen Sie die Suspension wieder auf. Der nächste Schritt ist die Verkapselung der Zellen innerhalb des Kollagen-Metrogels. Dann nehmen Sie ein Aliquot von acht Mikrolitern CMs und fügen Sie es zu einem frischen Falcon-Rohr auf Eis hinzu.
Nehmen Sie dann zwei Mikroliter CS und fügen Sie sie zu dieser Zellmischung hinzu. Resuspendieren Sie die Zellsuspension und greifen Sie 5,6 Mikroliter der Zellsuspension und geben Sie sie in ein frisches Falcon-Röhrchen. Dann schnappen Sie sich das Kollagen, das Sie gerade zubereitet haben, nehmen Sie vier Mikroliter des Kollagens und nehmen Sie dann 2,4 Mikroliter Metrogel.
Pipetten Sie die Mischung auf und ab, um eine homogene Verteilung der Zellhydrogelsuspension zu gewährleisten. Sobald die Gelinjektion vorbereitet ist, können Sie sie in Geräte einführen. Nehmen Sie einen neuen Tipp und resuspendieren.
Nehmen Sie die Petrischale der Geräte, führen Sie die Spitze in den Injektionsanschluss ein und injizieren Sie langsam und stetig. Sie werden sehen, wie sich der Gerätekanal mit der Zellhydrogelsuspension füllt. Sobald der andere Anschluss gefüllt ist, stoppen Sie die Injektion und entfernen Sie die Spitze.
Nach der Injektion die Geräte mit einer Pinzette umdrehen und neun Minuten lang mit Wasser in die größere Petrischale legen. Nach neun Minuten nehmen Sie die Geräte aus dem Inkubator und drehen sie aufrecht und legen Sie sie dann für weitere neun Minuten in den Inkubator, um die Hydrogelpolymerisation abzuschließen. Jetzt ist es an der Zeit, die Medien hinzuzufügen.
Nehmen Sie also RMPI plus B27 und stecken Sie die Spitze in den Medienanschluss und beginnen Sie langsam zu drücken. Tun Sie dies dann auf dem gegenüberliegenden Medienanschluss. Möglicherweise stellen Sie fest, dass das Medium nicht injiziert wird, sodass Sie einen Tropfen Medien auf den Anschluss legen und dann die Pipette nehmen und Unterdruck verwenden können, um das Medium von der anderen Seite durchzuziehen.
Sie werden also sehen, wie die Medien beginnen, durch den Kanal gezogen zu werden. Sobald alle Medienkanäle mit Medien versehen wurden, werden die Geräte bei 37 Grad wieder in den Inkubator gestellt. Das mikrofluidische Gerät ist in der oberen linken Ecke dargestellt.
Die Tage eins, sieben und 14 der Kultur werden dieses Bild gezeigt. Nach 14 Tagen Kultur sollten die Zellen zu stark ausgerichteten Strukturen kondensieren, die sich um die Mikropfosten bilden. Spuren des 14. Tages sind hier in C der spontanen Kontraktion sowie immunfluoreszierende Bilder von Aktin-gefärbtem und herzmarkergefärbtem Gewebe gezeigt.
Zu sehen sind hoch ausgerichtete Aktinfasern, die sich nach 14 Tagen in Kultur bilden, sowie parallele streifenreife Sarkomere und lokalisierte Gap Junctions. Während dieses Verfahrens ist es wichtig, alle Materialien während der Zellhydrogelinjektion bei niedrigen Temperaturen auf Eis zu halten, um eine vorzeitige Polymerisation zu verhindern. Die mikrofluidischen Geräte sollten sowohl bei der Herstellung, Injektion als auch bei der erweiterten Gewebekultur mit Vorsicht behandelt werden.
Die Zellinjektionen sollten ein stetiger Prozess sein, um sicherzustellen, dass sich der gesamte Kanal gefüllt hat, während sie schnell durchgeführt werden, um eine vorzeitige Polymerisation oder ein Austrocknen des Hydrogels vor der Medienzugabe zu verhindern.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Überblick
Dieses Protokoll beschreibt die Entwicklung eines dreidimensionalen (3D) mikrofluidischen Modells von menschlichem Herzgewebe. Das Modell besteht aus aus Stammzellen gewonnenen Kardiomyozyten, die in Ko-Kultur mit kardialen Fibroblasten in einem kollagenbasierten Hydrogel kultiviert werden, mit dem Ziel, die Herzgewebetechnik und das Medikamentenscreening zu verbessern.
Wichtige Studienkomponenten
Wissenschaftsbereich
- Herzgewebetechnik
- Stammzellenbiologie
- Mikrofluidik
Hintergrund
- Herz-Kreislauf-Erkrankungen sind weltweit die häufigste Todesursache.
- Traditionelle in-vitro-Modelle verwenden oft Monolayer-Kulturen.
- Die Komplexität des Myokards erfordert anspruchsvollere Modelle.
- 3D-Modelle können die zelluläre Zusammensetzung und Struktur des Herzens besser nachahmen.
Zweck der Studie
- Entwicklung eines 3D-Modells von menschlichem Herzgewebe.
- Verbesserung der Darstellung von Herzgewebe in vitro.
- Erleichterung von Anwendungen im Medikamentenscreening und Krankheitsmodellierung.
Verwendete Methoden
- Entwicklung einer mikrofluidischen Vorrichtung.
- Erstellung eines 3D-Hauptgewebekanals.
- Einbau von elliptischen Mikroposten für die Zellausrichtung.
- Ko-Kultur von Kardiomyozyten und kardialen Fibroblasten in Hydrogel.
Hauptergebnisse
- Erfolgreiche Entwicklung von ausgerichtetem menschlichem Herzgewebe.
- Verbesserte strukturelle und funktionelle Eigenschaften des Gewebemodells.
- Nachgewiesenes Potenzial für verbessertes Medikamentenscreening.
- Erkenntnisse zur Herzkrankheitsmodellierung.
Schlussfolgerungen
- Das 3D-Mikrofluidikmodell ahmt effektiv menschliches Herzgewebe nach.
- Dieser Ansatz kann die Forschung in Herzgesundheit und -krankheit voranbringen.
- Zukünftige Anwendungen können personalisierte Medizin und therapeutische Tests umfassen.
Häufig gestellte Fragen
Executive Industry Relevance
Engineering 3D organized human cardiac tissue within a microfluidic platform addresses the critical gap in physiologically relevant in vitro cardiac models for drug discovery and disease research. This approach enables predictive evaluation of cardiac function and tissue architecture, supporting translational continuity from early discovery through preclinical assessment. The platform's reproducibility and alignment with native myocardium architecture enhance confidence in mechanistic and safety studies across the biopharma pipeline.
Strategic Applications in Biopharma R&D
Early Discovery & Target Validation
- Enables interrogation of cardiac-specific pathways in a structurally relevant human tissue context.
- Supports biological de-risking by modeling native myocardium anisotropy and cellular complexity.
- Facilitates functional target validation through observation of tissue maturation and contractility.
Screening & Assay Development
- Provides a standardized 3D cardiac tissue system for reproducible compound screening.
- Delivers quantitative outputs such as tissue alignment, contraction, and marker expression.
- Enables scalability and platform reuse for high-content screening applications.
Translational & Preclinical Research
- Aligns with disease-relevant human cardiac biology for translational biomarker studies.
- Supports continuity from discovery to preclinical validation by modeling human tissue responses.
- Reduces risk of late-stage attrition by providing predictive human cardiac data.
Pipeline & Workflow Integration
This microfluidic 3D cardiac tissue model integrates into the discovery-to-preclinical continuum, enabling hypothesis testing, assay development, and translational research within a single platform.
- Discovery Biology: Supports mechanistic studies and pathway clarification in a human-relevant system.
- Screening: Offers reproducible, quantitative readouts for compound evaluation and safety profiling.
- Analytics: Provides measurable outputs such as tissue alignment, contractility, and marker localization for comparative analysis.
- Translational Research: Bridges in vitro findings to preclinical models by mimicking native cardiac tissue architecture.
- Enterprise Reuse: Establishes a reusable platform for ongoing cardiac biology and pharmacology studies.
Operational & Enterprise Impact
- Scientific Value: Increases predictive confidence and reduces mechanistic ambiguity in cardiac research.
- Operational Value: Standardizes tissue engineering and assay workflows for reproducibility and scalability.
- Strategic Value: Improves go/no-go decision-making and capital efficiency by providing robust human cardiac data early in development.
- Portfolio Impact: Enables risk-adjusted prioritization and advancement of cardiac-targeted assets.
Implementation Considerations
- Requires expertise in stem cell biology, tissue engineering, and microfluidics.
- Demands access to specialized microfluidic devices and imaging infrastructure.
- Necessitates cross-team standardization for reproducible tissue formation and analysis.
- Adaptation may be needed for different cardiac cell sources or disease models.
- Careful temperature and handling protocols are critical to prevent premature hydrogel polymerization and ensure tissue integrity.
