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DOI: 10.3791/62984-v
Kasper Mølgaard*1, Anne Rahbech*1, Özcan Met1, Inge Marie Svane1, Per thor Straten1,3, Claus Desler2, Marlies J. W. Peeters1
1National Center for Cancer Immune Therapy, Department of Oncology,University Hospital Herlev, 2Department of Cellular and Molecular Medicine, Center for Healthy Aging,University of Copenhagen, 3Department of Immunology and Microbiology, Inflammation and Cancer Group,University of Copenhagen
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Die metabolische Anpassung ist für T-Zellen von grundlegender Bedeutung, da sie Differenzierung, Persistenz und Zytotoxizität bestimmt. Hier wird ein optimiertes Protokoll zur Überwachung der mitochondrialen Atmung in ex vivo Zytokin-differenzierten humanen primären T-Zellen vorgestellt.
Der mitochondriale Stoffwechsel ist ein wesentlicher Regulator der Haltbarkeit und des Gedächtnisses von T-Zellen. Die Messung der mitochondrialen Atmung liefert daher wichtige Einblicke in die Eigenschaften von T-Zellen. Die Seahorse-Maschine kann verschiedene Elemente der mitochondrialen Atmung in Echtzeit in lebenden menschlichen primären T-Lymphozyten messen, ohne dass eine Markierung erforderlich ist.
Diese Methode eignet sich sehr gut zur Überwachung der T-Zell-Fitness und des Gedächtnispotenzials, die wichtige Prädiktoren für den Erfolg der Krebsimmuntherapie sind. Waschen Sie zunächst CD3 / CD28-Perlen, indem Sie 12,5 Mikroliter Perlen pro Million Zellen in ein Mikrozentrifugenröhrchen übertragen und 12,5 Mikroliter PBS pro 12,5 Mikroliter der Perlen in der Tube hinzufügen. Legen Sie dann das Mikrozentrifugenröhrchen für eine Minute auf einen geeigneten Magneten, entsorgen Sie den Puffer und suspendieren Sie die Perlen im ursprünglichen Volumen des T-Zell-Mediums.
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