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Immunology and Infection
Mikrofluidischer Ansatz zur Auflösung der gleichzeitigen und sequentiellen Zytokinsekretion einze...
Mikrofluidischer Ansatz zur Auflösung der gleichzeitigen und sequentiellen Zytokinsekretion einze...
JoVE Journal
Immunology and Infection
This content is Free Access.
JoVE Journal Immunology and Infection
Microfluidic Approach to Resolve Simultaneous and Sequential Cytokine Secretion of Individual Polyfunctional Cells

Mikrofluidischer Ansatz zur Auflösung der gleichzeitigen und sequentiellen Zytokinsekretion einzelner polyfunktioneller Zellen

Full Text
2,534 Views
09:43 min
March 8, 2024

DOI: 10.3791/66492-v

Aline Linder*1, Kevin Portmann*1, Luca Johannes Schlotheuber1, Alessandro Streuli1, Wiona Sophie Glänzer1, Klaus Eyer1,2, Ines Lüchtefeld1,3

1Laboratory for Functional Immune Repertoire Analysis, Institute of Pharmaceutical Sciences, Department of Chemistry and Applied Biosciences,ETH Zürich, 2Department of Biomedicine,Aarhus University, 3Laboratory for Tumor and Stem Cell Dynamics, Institute of Molecular Health Sciences, Department of Biology,ETH Zürich

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents an advanced microfluidic platform designed to quantitatively measure cytokine secretion dynamics at the single-cell level. The platform allows for the simultaneous measurement of three cytokines (IL-6, TNF伪, and IL-1尾) from individual human peripheral blood mononuclear cells stimulated with lipopolysaccharide.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Immunology
  • Microfluidics

Background

  • Understanding cytokine dynamics is crucial for insights into immune responses.
  • Traditional methods often overlook cellular heterogeneity and dynamic responses.
  • Single-cell analysis provides a deeper understanding of immune cell functionality.
  • Disruption in immune regulation can lead to various disorders.

Purpose of Study

  • To develop a method for real-time measurement of cytokine secretion at the single-cell level.
  • To capture the dynamic range of cytokine secretion across different samples.
  • To enhance understanding of immune cell polyfunctionality.

Methods Used

  • Microfluidic chip design for single-cell analysis.
  • Use of functionalized nanoparticles for cytokine detection.
  • Dynamic flow control to establish stable droplet production.
  • Quantitative measurement of cytokine secretion over time.

Main Results

  • The platform successfully measures cytokine secretion from individual cells.
  • Simultaneous detection of multiple cytokines was achieved.
  • Dynamic analysis revealed insights into immune cell responses.
  • Results indicate the importance of single-cell measurements in immunology.

Conclusions

  • The developed microfluidic platform is a valuable tool for immunological research.
  • Single-cell analysis can provide critical insights into immune cell behavior.
  • This approach may lead to better understanding of immune-related disorders.

Frequently Asked Questions

What is the significance of measuring cytokines at the single-cell level?
Measuring cytokines at the single-cell level allows for a more detailed understanding of cellular heterogeneity and the dynamic nature of immune responses.
How does the microfluidic platform work?
The platform uses a microfluidic chip to isolate individual cells and measure their cytokine secretion in real-time.
What cytokines can be measured using this platform?
The platform can measure IL-6, TNF伪, and IL-1尾 simultaneously from individual cells.
Why is it important to study cytokine dynamics?
Studying cytokine dynamics helps in understanding the immune response and can provide insights into various immune disorders.
What challenges does this study address?
This study addresses the challenge of capturing the dynamic range of cytokine secretion and the complexity of immune cell responses.
Can this method be applied to other types of cells?
Yes, the microfluidic platform can potentially be adapted to study cytokine secretion from other cell types.

Das Protokoll beschreibt eine fortschrittliche mikrofluidische Plattform zur quantitativen Messung der Zytokinsekretionsdynamik einzelner mononukleärer Zellen des menschlichen peripheren Blutes. Die Plattform misst bis zu drei Zytokine parallel (IL-6, TNFα und IL-1β) für jede einzelne Zelle, die beispielsweise mit Lipopolysaccharid stimuliert wird.

In diesem Projekt konzentrieren wir uns auf die Entwicklung und Anwendung neuartiger Analysestrategien, die eine direkte, quantitative und tiefe Analyse zellulärer Funktionalitäten mit Einzelzellauflösung ermöglichen. Indem wir über die reine Ein-Datenpunkt-Messung hinausgehen, wollen wir diese Multifunktionalität, die von komplexen Reaktionen im Wirt und im Gewebe ausgeht, besser verstehen und nutzen. Ein umfassendes Verständnis dieser Funktionalitäten zu erlangen, ist komplex, schwierig und erfordert interdisziplinäre Ansätze.

Eine Herausforderung in diesem Zusammenhang besteht daher darin, sicherzustellen, dass der dynamische Bereich der Assay-Entwicklung geeignet ist, um die Menge und Dynamik eines sezernierten Proteins zu erfassen, die je nach Probe, Präparat und Gewebe stark variieren kann. Eine Störung der Regulation der Immunantwort kann verschiedene Störungen hervorrufen, die zu leichtem Fieber und potenziell lebensbedrohlichen Komplikationen führen. Über traditionelle Endpunktmessungen hinausgehend, haben wir vorgeschlagen, die Dysregulation und Aktivierung von Immunzellen direkt und dynamisch auf Einzelzellebene zu messen, um zusätzliche Erkenntnisse zu gewinnen.

So werden Zytokine in der Regel zum spezifischen Zeitpunkt als Konzentration im Überstand oder Konzentration aktivierter Zellen nachgewiesen. Massenmessung direkt zur Quantifizierung der Sekretion jeder einzelnen Zelle, wobei die zelluläre Heterogenität maskiert wird, die als Endpunktmessungen nicht zwischen gleichzeitiger und sekundärer Sekretion unterscheiden. Abgesehen vom dynamischen Aspekt der Reaktion bezieht sich die zelluläre Vollfunktionalität auf die Fähigkeit einer Immunzelle, mehrere Zytokine gleichzeitig zu sezernieren.

Dies ermöglicht es ihnen, beispielsweise ihre Reaktion auf Bedrohungen fein abzustimmen und diese Polyfunktionalität dynamisch zu messen, was bedeutet, dass sie im Laufe der Zeit einen umfassenden Einblick in die verschiedenen Nuancen einer Immunantwort geben kann.

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Schlüsselwörter: Mikrofluidik Zytokinsekretion polyfunktionelle Zellen Einzelzellanalyse Immunantwort Multiplex-Immunoassay Fluoreszenzbildgebung magnetische Nanopartikel Zellverkapselung Datenanalyse

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