Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Bioengineering

一种改进的机械性能测试方法来评估骨种植体支抗

Published: February 10, 2014 doi: 10.3791/51221

Summary

一种改进的方法以机械测试的骨锚定到候选种植体表面呈现。这种方法精确地垂直或平行,以在植入物表面的平面中允许的干扰力的对准,并提供​​了一​​个准确的方法,可直接进行干扰力为确切的种植体周围区域。

Abstract

在材料科学的最新进展已经导致大幅增加种植体表面地形的复杂性,无论是在微观和纳米级。作为描述种植体表面,例如,传统的方法-表面粗糙度,即数值决定因素-是不够的体内性能预测。生物力学测试提供了一个准确和比较平台来分析生物材料表面的性能。一种改进的机械测试方法测试骨锚固候选种植体表面呈现。该方法适用于愈合的早期和晚期阶段,并且可以被用于化学或机械改性的表面的​​任何范围 - 但不是光滑的表面。自定义的矩形植入物在雄性Wistar大鼠的远侧股骨双侧放置并与周围的骨收集。试样制作和使用一种新的分离模具和破坏盆栽测试是使用机械试验机进行的。这种方法精确地垂直或平行,以在植入物表面的平面中允许的干扰力的对准,并提供​​了用于分离一个确切的种植体周围区域进行检测的精确和可重复的方法。

Introduction

评估骨锚固到骨内种植体表面一直相当关注的焦点,为此,许多机械测试方法已经被描述1,2。所有这些方法施加一个力,破坏正在使用的骨/种植体模型,大致可分为剪,一般表现为外推式或拉式模型3,4,反向扭矩3,5,和拉伸类型6, 7。通常在这样的测试中,无论是骨8或植入材料(在脆性玻璃和陶瓷9,10的情况下)被破碎,假设某种形式的锚固的发生,骨/植入物界面保持不变(至少部分地)保持不变。这样的实验的结果的意思是不仅使模型的断裂(或中断)所需的力是不分开的骨/植入物界面11,12所需的力,而且还使产生的裂缝平面内的复杂的表面积可以是难治精确的测量。然而,这种测试可以是临床相关的,因为它们提供的别共面的设计植入到被固定在骨能力的比较标尺。然而,还应当指出,这种比较是唯一有效的范围内的实验模型,而实验模型之间的比较是充满着困难,因为研究人员使用不同种类的动物表现出无论是片状或编织骨;小梁或皮质骨愈合模型和不同的机械测试几何形状和条件。

在努力获得的骨/植入物界面的拉伸强度的测定,许多研究者已经使用的植入物的公称表面积而得出一个“拉伸强度”值,因为抗张强度被测量为每单位面积上的力。这显然​​是给定的,如上面所解释的一个近似值,该骨/植入物界面在许多破坏试验采用保持完好编辑。除了 ​​测量植入物,特别是复杂的地形表面的表面区域中,由测量技术的分辨率由Ronald 等人 13但是所讨论的限制,通过Brunski 2,作为评论时的植入物的标称表面积是考虑到,在“抗拉强度”与不同的植入物表面的设计相关联的显着的差异被否定,表明植入物表面具有较高的表面面积提供更大的骨/植入物的接触面积,因此需要更大的力来破碎模型。因此,其含义是,地形更复杂的表面可以增加接触成骨,这会导致更大的骨植入物接触(BIC)和由此产生机械测试更高的中断值。接触成骨是两个不同的现象的产品:骨传导和骨形成。事实上,我们已经表明,增加了骨传导的形貌售货机,ically复杂的表面,可以通过测量所得到的BIC 14进行量化,并且这种表面也导致较高的机械破碎值12。

然而,这是有益的是要注意,种植体周围骨可以通过两种机制形成。在间充质起源的接触成骨细胞迁移到植入物表面(骨传导),分化成骨细胞,并阐述从头骨基质在植入物表面(骨形成)。阐述了第一骨基质是在正常骨重塑看到15矿化水泥线(有很多混乱有关该生物矿化结构,有时被认为是未矿化1或一种融合在骨16的所有接口的文献-有关此主题的完整讨论,请参阅戴维斯和侯赛尼17)。联系成骨是骨的现象的一个重要的先决条件接的,但不必要的是对于骨向内生长18。骨的矿化水泥线机械骨骼比19的矿化胶原舱弱。因此,直观地,如果水泥线矩阵与植入物的纳米特征的交错结合与骨组织生长到植入件的宏观特征相比较,然后破坏前所需的机械力会合理地,可以预料到小于后者,并且我们最近已证明了这一点实验12。

种植体周围骨也可以通过距离成骨形成。在这种情况下,骨沉积在旧骨表面并得到逐步接近导致包含无定形基质和成骨细胞20的遗体的接口的植入物表面。一般情况下,距离成骨与光滑,或加工,骨内种植体表面有关,常见于皮质骨的愈合,而microtopographicaLLY复杂曲面与骨的接触是比较典型的骨小梁愈合有关。使用光滑的植入物表面和皮质骨愈合拉伸试验模型已经能够测试此无定形生物基体与地形复杂表面相关联的接触成骨缺失的粘接性能,并且已经表明,发生所谓的“生物化学”接合提供了一个报告与地形复杂的曲面21的“拉伸强度”值较小的组成部分。与此相反,采用了小梁骨愈合模型中,Wong 等人 22表明植入物表面粗糙度和推出故障负载之间“良好的相关性”,并表示化学键合确实起到了骨锚的作用微乎其微到植入物表面。虽然有可能出现两个接触和距离成骨发生,在不同程度上,在所有的骨内围implaNT愈合车厢,microtopographically复杂的表面已经表明自己是特别有利的小梁骨性愈合舱23。后者在牙科文献24列为III级或IV级骨。

我们的目的是要着眼于接触成骨的机制和产生的骨/种植体支抗可在骨小梁愈合环境随之发生。这锚地,这是依赖于植入物表面的形貌(参见上文),可以发生在不同的尺度范围。一方面,只有亚微米植入物的特点有牵连的骨接合 - 所描述的骨水泥线矩阵与这样的表面的交错结合,并看到了生物活性玻璃,陶瓷和网状金属氧化物。另一方面,骨组织(有时完全与血液的血管)可发育成多微米,或宏观尺度,植入物的表面特征18。这两种情况下水库ULT在骨锚固到植入物表面的一种形式,虽然机制明显不同。然而,大多数的上面引用的机械测试方法的通病是使在一个完全垂直或平行的平面上的干扰力,以使植入物表面的(取决于拉伸或剪切模式是否被采用)。我们在此报告来克服这种限制的方法。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1。植入物的设计,制造及表面处理

  1. 从工业纯钛(CPTI);(长x宽x高尺寸4毫米×2.5毫米×1.3毫米)制造长方形的植入物。钻一个孔中央下来的植入物(直径为0.7mm)的长轴手术部位和随后的机械测试( 图1)内以便尽早植入物的稳定性。
  2. 处理所述植入物的上表面和下表面。
    1. 要创建两个不同的面,使用标准的喷砂(GB)的治疗,以创建一个microtopographically复杂的表面。通过叠加磷酸钙(CAP)进一步修改一半的植入物的纳米粒子来创建一个nanotopographically复杂的表面。

注意:不同的化学或机械处理可以应用到产生所需的表面形貌和/或化学物质,这些将取决于实验questi的性质上加以解决。在本文提供的例子中,一组纯钛(CPTI)种植体经喷砂(GB) - 扣除方法 - 创建一个复杂的微观形貌。植入物的一半,然后再通过添加磷酸钙(CAP)纳米晶体的修改,以创建一个超级施加纳米形貌(GB-DCD)。

注意:当观看喷砂微面相比,改性后的纳米表面,在10,000倍的放大倍率,有在表面特性无明显差异。然而,在100,000 X放大率观察时,差异变得非常明显( 图2)。先前已表明,这样的表面变化不会对骨传导14产生深远的影响。

2。动物模型和手术过程

  1. 用年轻的雄性Wistar大鼠(200-250 g)关于这种模式。所有的程序必须由当地动物保健COM批准mittees。让动物自由饮水和大鼠饲料。
    注:Wistar大鼠被选定为这个过程由于与这株鼠以往的经验,虽然大鼠的其他菌株可以采用。获取食物和水可以被改变,这取决于正在解决实验问题的性质。

  2. 采用吸入麻醉通过鼻锥稳重给予大鼠:1路2 /分钟的诱导4%异氟醚,在1升一氧化二氮和0.6 LO 2 /分钟的维修2%异氟醚。开展标准的脚趾捏测试,以确保有效镇静的程序,然后再继续。
  3. 施用镇痛前和手术后通过皮下注射0.01-0.05毫克/公斤丁丙诺啡。
  4. 通过部分随机分配植入物和放置在双侧股骨大鼠的远端干骺端。这使得不同的植入物,分别从选择不同表面形貌的被比较D,在对侧股骨,优化统计分析。
  5. 剃须和清洁每个后腿用10%聚维酮碘的安特罗外侧方面准备的动物。为了防止低温,放置一个温水循环垫麻醉大鼠下方。
  6. 用#15的外科手术刀,通过沿大腿露出肌肉的外侧面的皮肤做一个切口。使用钝性分离偏转肌肉组织中一种微创的方式暴露股骨远端。
  7. 刮掉薄薄的一层骨膜覆盖股骨,用骨膜,充分暴露骨皮质钻孔。必须小心,在钝器解剖和切除骨膜不要损坏膝关节的生长板或关节软骨。
  8. 一旦清洁和检查,旋转股骨横向暴露股骨远端( 图3A)的前方面。
  9. 为了准备手术部位,钻双皮质矩形槽下骨的同时通过皮层中间。为了避免过热组织,生理盐水冲洗,必须保持整个钻探手术助理。进行钻孔在三个阶段:
    1. 首先,钻透前皮层,通过解剖暴露的,使用连接到牙科手持件,以创建两个孔2.5毫米沿着中间的股骨线相距1.3毫米的牙科毛刺。
    2. 接下来,使用第二个钻头(扭1.3毫米牙科毛刺),通过对方皮质这些孔扩大,导致双皮质平行孔。
    3. 最后,加入用在近端-远端方向上的第三定制侧切削毛刺,形成现场为植入物( 图3B)中的孔。
  10. 通过使用附加的针的骨缺损通过一个可生物降解的缝合线,并返回周围的股骨外皮质。
  11. 主题植入物在缝合线的自由端并将其引导到缺陷,瓦特这里应该是压入式。在这种方式中,植入物的长轴应取向垂直于股骨( 图3C)的长轴。
  12. 配合围绕股骨外侧面的缝合手术后的恢复和愈合的早期阶段过程中提供植入物的稳定性。使用剩余的缝合关闭肌肉组织,并用手术钉(9毫米伤口剪辑)reoppose的皮肤组织。
  13. 检查手术部位感染的迹象,和日常监测动物受损的动态能力。排除不完全恢复行走的动物,或者是那些股骨骨折的牺牲,从分析中。

3。样品采集

  1. 牺牲在动物后第9天,手术后由CO 2的曝光颈椎脱位。
  2. 牺牲后,分离股骨和干净的软组织。在15%蔗糖缓冲溶液立即保存,以保持活体组织Hydration在准备机械测试( 图4A)。
    注:样品被存储在缓冲蔗糖溶液至设施之间的运输期间保持组织水合。标本将准备机械测试期间投入约2-3小时的解决方案。

  3. 以制备试样的力学性能测试,修剪骨到使用连接到一个高速系统的圆柱形金刚石毛刺的植入物的宽度。最终的试验样品包括骨的两个拱连接到植入物( 图4B)的各个面。对于准备或运输过程中脱落的拱门,分配为0牛顿的力学性能测试值
    注:修剪样品时要非常轻柔,准确,以免损坏或预应力接口是非常重要的。骨修复性愈伤组织可以围绕所述植入物的长轴和连到纵向孔生长。这样多余的骨骼必须由三被删除mming试样的矩形植入物的精确的尺寸,因为它可以歪斜力学测试的结果。

4。机械性能测试

自定义脱离模具的设计到锅内每个标本,建立准备样品力学性能试验的重复性和准确的方法。在设计允许种植体周围骨一致的测试区的0.5mm的区域的隔离,同时保持在制陶过程为中心的样品和完全水平的,直接垂直于种植体表面允许的的力​​的应用。参见图5为完整的工程图和图6为最终部件。

注:所有行为使用机械测试装置中,以30毫米/分钟的十字头速度操作的测试。对于剩余骨下列测试定性评估,在解剖显微镜可以使用。

  1. 灌封该标本和机械测试的
    1. 从蔗糖缓冲液,轻轻吸干取出标本。
    2. 位置标本在定制模具。水平地通过在模具的壁上的孔,并通过在植入物的中间的孔滑动销。放置在模具上的后侧稳定板,以稳定植入物( 图7)。
    3. 该模具的底部具有可流动的牙科用复合填充并使用高强度的固化的光固化60秒。
      注意:选择不设置放热反应的合成,所产生的热量,例如可能影响组织性质是很重要的。
    4. 固化后,打开模具,取出硬化标本块。画一条细细的黑线在永久性标记上用于识别目的的横向拱。
    5. 固定在一个副试样的预制复制品,并居中机械测试仪的基座上的单元。
    6. 使试样成副,并通过孔的植入( 图8)通过一个尼龙线。附加的松散端向移动横梁的中央。为了保持一致性,始终标签和第一个测试的侧面。与内侧足弓重复上述过程。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

所有的动物下手术的恢复随时间增加他们的活动能力。这很重要,因为负荷对不同的量程范围地形差异的影响,因为我们最近报道12。对试样以下机械试验的代表性力/位移曲线是在图9A,并为每个种植体表面的平均数据列于图9B。由每个试样达到最大力量值,记录和组值平均值进行比较(每组n = 28)。在GB-DCD的表面上,叠加在底层microtopographically复杂曲面亚微米地形特点,有比未改性GB的微面(P <0.0001)( 图9B)显著高于干扰力值。

下面的力学性能测试,它可以被观察到的标本的目标范围内骨折92%编种植体周围区域( 图10)。

图1
图1。定制设计的矩形植入物的顶面和底面是主节点的增长和并置。尺寸:4毫米x2.5毫米×1.3毫米(长x宽x高),孔直径0.7毫米。

图2
图2。使用的植入物表面的场致发射扫描电镜显微照片。在地形差异是很难看到以10,000×放大倍数(上部),但很明显在100,000 X(底部)。 (A,C):GB(B,D):GB-DCD的样品。


图3。 (A)利用钝性剥离暴露股骨和去除骨膜后,(B)一种双皮质槽是用一个三级钻井过程创建的,以及(C)在植入物被压入处,并用可生物降解的缝合线支承。

图4
图4(A)股骨从牺牲的动物收获。长方形的植入物是在股骨远端可见。 (B)的最终测试样品既具有内侧和在植入物的两侧的横向拱。


图5。技术制图用锅力学测试标本分离定制模具。 点击这里查看大图。

图6
图6。定制脱离模具设计,机械测试。

图7
图7。SPECI男人盆栽在开模定制。

图8
图8。标本前,机械测试集中在机械测试仪器。

图9
图9。 (A)后,机械性能测试产生的代表力/伸长曲线。 (二)一般中断力值(N)记录为30 mm / min的十字头速度9天安乐死时间点(每组n = 28例)。 (*)=统计学意义。

1221fig10highres.jpg“SRC =”/ files/ftp_upload/51221/51221fig10.jpg“/>
图10。打破周围的植入下列机械测试皮质拱门的图案。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

此处提供可进行试验力模型提供一种改进性方法评价骨锚地到候选人种植体表面的,容许进行精确垂线或是并联随着applied disruption力轴试样协调一致,骨折区极限到内植入物表面的半毫米。该模型是容易纳入比较的化学或机械方式,修饰的表面的任何范围的有效性的研究,但不适合于光滑表面,因为这些都是从骨标本处理过程中容易脱落。该植入物可以从范围广泛的生物材料来制造。数据很容易被收集并,提供的机械测试设备被正确校准,只需最少的过滤。不同的时间线可用于在愈合的不同阶段来评估机械性能。此外,该模型可以容易地在人类疾病COMPR的动物模型中采用omise骨愈合,包括例如,糖尿病,放射治疗,和自身免疫性疾病。

该模型已被设计为只雄性Wistar大鼠,尽管其它菌株可以很容易地被采用。大鼠的骨骼构造,特别是股骨,虽然不多,能够接收所述自定义植入后承受正常的动态负载,以及它们的手术后的恢复是快速的。由于使用了简单的几何形状,设计很容易扩展为较大的动物模型。虽然可以进行在小鼠类似的操作中,股骨是显著较小,这就需要使用更小的植入物,并提出了在处理的中断测试的挑战。

正如我们先前采用的研究主要集中在中早期愈合点发生的生物学机制这一模式的简化版本,并已聘请9天后,手术时间点,我们用同样的时间点此处。然而,这种添ë期间可以根据研究设计改变,并且多个时间点可以显示的锚固现象的进展与时间的体内

在模型的发展,许多快速固化环氧树脂和水泥进行了探讨,其中很多都不合适由于放热反应,过度扩张,通过骨小梁“灯芯”未固化的解决方案,以及高度可变的固化时间。选择的流动牙科复合材料具有最小的膨胀(约2%),快速固化下的光固化机,以及具有最小的排汗。此外,该复合材料表现没有放热性能。这种材料可以替代现有材料的改变,但它是至关重要的开始项目之前进行严格测试灌封剂。

这种方法得出有价值的比较生物力学数据作为候选种植体表面设计的一个功能。这个IM的主要优点证明该方法是在限制破坏(断裂)面到所述第一0.5毫米,所述植入物表面上,在形成有修复骨。它不同于其中骨折不限于植入物周围区域中的其它方法。因此,如上面所解释的呈现,该方法中,准确地分离已定义的种植体周围区域 - 一个区域即在所有标本一致 - 同时也对准试样,使得所施加的力是完全正常的植入物表面,从而消除因任何偏差错位。这是特别重要的,如果一个人想监视种植体周围骨的成熟与时间。然而,应该强调的是,测试不提供真正的骨/植入物界面本身的生物力学信息,因为有相当大的骨下列测试其余的表面上。

以前,我们已经使用这种方法的一个简单的版本来定义表面形貌的渲染蒂塔的能力鎓表面的骨结合14,以及在近期的工作划定不同等级的地形复杂的生物相关性为治愈12时间的函数。而简单的测试比本文中所呈现更快,并且不需要专门设计的灌封装置,存在在裂缝平面的位置相当大的方差。此外,该方法也允许一个想象旋转试样90度,使得所述植入物上的机械测试仪器垂直对齐。在此配置中,可以进行剪切试验具有相同的实验装置 - 一种方法不可能与其他方法。

不过,也有表示限制几个实际的缺点。作为试验样品是小的,它可以是费时灌封相对于其他方法中适当地对准试样在模具中。此外,一旦试样是盆栽,它可以是难以确认,用肉眼,确切的种植体周围地区,因此使用一个放大镜,或珠宝商的循环,以更准确地可视化的种植体周围地区它可能是有用的。最后,该方法必须在避免了通过在植入物周围区域中的暴露修复骨小梁的芯吸的可流动组合物的方式来完成。最后,我们使用了1,000不称重传感器,因为这是我们现有的装备,但较小的负载单元,在50-100 N挡位时,会更适合将来的测试,允许在测试数据更高的分辨率和精度。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

作者收到的资金和物资支持,巴奥米特3i的(棕榈滩花园,佛罗里达州,美国)。巴奥米特3i的没有参与这个手稿或描述的实验设计的写作。

Acknowledgments

作者要感谢巴奥米特3i的为他们继续提供财政支持,尤其是兰迪·古德曼在定制部件的设计和制造的帮助。斯宾塞贝尔是一个收件人的产业研究生奖学金,由国家科学院和加拿大工程研究理事会(NSERC)提供。我们还要感谢John Brunski博士的手稿准备过程中非常有价值的反馈。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Dulbecco’s Phosphate Buffer solution (DPBS) Gibco Life Technologies, Burlington, ON, Canada 14190-250
10% neutral buffered formalin solution Sigma-Aldrich Co. LLC., Canada HT501128-4L
Custom-designed rectangular implants (commercially pure titanium; dimensions: 4mm x 2.5mm x 1.3mm with a 0.7mm hole drilled centrally down the long axis) Biomet 3i, FL, USA N/A
Custom-designed breakaway mould Biomet 3i, FL, USA N/A
Isoflurane Baxter Internationl Inc. N/A
Buprenorphine Bedford Laboratories N/A
10% betadine Bruce Medical, MA, US FR-2200-90
Scalpel Almedic, Medstore, University of Toronto, Canada 2586-M36-0100
Scalpel blade #15 (sterile) Magna, Medstore, University of Toronto, Canada 2586
Periosteal elevator #24G Spectrum Surgical, OH, USA EX7
Forceps Almedic, Medstore, University of Toronto, Canada 7747-A10-108
Tissue forceps Almedic, Medstore, University of Toronto, Canada 7722-A10-308
Scissors Almedic, Medstore, University of Toronto 7603-A8-240
Absorbant Fabric General Purpose Drape (sterile) Vitality Medical 1089
Gauze (non-sterile) VWR 89133-260
Needles 25G X 5/8" (disposable) BD, Canada 305122
Syringes (sterile) VWR, Canada CABD309653
Needle Driver Almedic, Medstore, University of Toronto, Canada A17-132
Dynarex Surgical gloves (sterile) Amazon.com 2475
Surgical masks Fisherbrand, Medstore, University of Toronto, Canada 296360759
0.9% sterile saline House brand, Medstore, University of Toronto, Canada 1011-L8001
Hair clippers Remington, US N/A
4-0 Polysorb Syneture SL5627G
9mm Wound Clips Becton Dickinson, MD, USA 427631
ImplantMED DU 900 and WS-75 dental hand piece  W&H Dentalwerk, Austria DU1000US
1.3 mm twist drill Brasseler, GA, USA 203.21.013
1.3 mm dental burr  Biomet 3i, FL, USA custom
1.2 mm cylindrical side-cutting burr Biomet 3i, FL, USA custom
Cylindrical diamond burr Brasseler, GA, USA H1.21.014
High speed dental drilling system Handpiece: KaVo Dental Corporation, IL, USA N/A
Handpiece Control: DCI International, OR, USA
99.5% Ultra Pure sucrose BioShop Canada Inc., Burlington, ON, Canada 57-50-1
Flowable dental composite Filtek Supreme Ultra Flowable Restorative, 3M ESPE, St Paul, Minnesota, USA 6033XW
Sapphire Plasma Arc high intensity curing light Den-Mat Holdings, Santa Maria, CA, USA N/A
Instron 4301 with 1000 N load cell Instron, Norwood, MA, USA N/A
Leica Wild M3Z Stereozoom dissecting microscope Leica, Heerbrugg, Switzerland N/A
QImaging Micropublisher 5.0 RTV digital camera coupled with QCapture 2.90.1 acquisition software QImaging, Surrey, BC, Canada N/A
Electronic digital caliper  Fred V. Fowler Company, Inc., Newton, MA, USA N/A
Mechanical testing instrument Instron, Norwood, MA, USA N/A

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Brunski, J. B. In vivo bone response to biomechanical loading at the bone-dental implant interface. Adv. Dental Res. 13, 99-119 (1999).
  2. Brunski, J. B., Glantz, P. -O., Helms, J. A., Nanci, A. Transfer of mechanical load across the interface. In: The Osseointegration Book. Brånemark, P. I., Chien, S., Gröndahl, H. G., Robinson, K. , 209-249 (2005).
  3. Brånemark, R., Ohrnell, L. O., Nilsson, P., Thomsen, P. Biomechanical characterization of osseointegration during healing: an experimental in vivo study in the rat. Biomaterials. 18 (14), 969-978 (1997).
  4. Itälä, A., Koort, J., Ylänen, H. O., Hupa, M., Aro, H. T. Biologic significance of surface microroughing in bone incorporation of porous bioactive glass implants. J. Biomed. Mater. Res. A. 67 (2), 496-503 (2003).
  5. Brånemark, R., Emanuelsson, L., Palmquist, A., Thomsen, P. Bone response to laser-induced micro- and nano-size titanium surface features. Nanomedicine. 7 (2), 220-227 (2011).
  6. Kato, H., et al. Bonding of Alkali- and Heat-Treated Tantalum Implants to Bone. J. Biomed. Mater. Res. 53, 28-35 (2000).
  7. Hong, L., Xu, H. C., de Groot, K. Tensile strength of the interface between hydroxyapatite and bone. J. Biomed. Mater. 26 (1), 7-18 (1992).
  8. Currey, J. D. Mechanical properties of bone tissues with greatly different functions. J. Biomech. 9 (12), 313-319 (1979).
  9. Nakamura, T., Yamamuro, T., Higashi, S., Kokubo, T., Itoo, S. A new glass-ceramic for bone replacement: evaluation of its bonding to bone tissue. J. Biomed. Mater. Res. 19 (6), 685-698 (1985).
  10. Hench, L. L., Splinter, R. J., Allen, W. C., Greenlee, T. K. Bonding mechanisms at the interface of ceramic prosthetic materials. J. Biomed. Mater. Res. Symp. 1, 117-141 (1972).
  11. Edwards, J. T., Brunski, J. B., Higuchi, H. W. Mechanical and morphologic investigation of the tensile strength of a bone-hydroxyapatite interface. J. Biomed. Mater. Res. 36 (4), 454-468 (1997).
  12. Davies, J. E., Ajami, E., Moineddin, R., Mendes, V. C. The roles of different scale ranges of surface implant topography on the stability of the bone/implant interface. Biomaterials. 34, 3535-3546 (2013).
  13. Rønold, H. J., Lyngstadaasb, S. P., Ellingsen, J. E. Analysing the optimal value for titanium implant roughness in bone attachment using a tensile test. Biomaterials. 24, 4559-4564 (2003).
  14. Mendes, V. C., Moineddin, R., Davies, J. E. The effect of discrete calcium phosphate nanocrystals on bone-bonding to titanium surfaces. Biomaterials. 28 (32), 4748-4755 (2007).
  15. Skedros, J. G., Holmes, J. L., Vajda, E. G., Bloebaum, R. D. Cement lines of secondary osteons in human bone are not mineral deficient: new data in a historical perspective. Anat Rec. 286, 781-803 (2005).
  16. McKee, M. D., Nanci, A. Osteopontin and the bone remodelling sequence: colloidal-gold immunocytochemistry of an interfacial extracellular matrix protein. Ann. N.Y. Acad. Sci. 760, 177-189 (1995).
  17. Davies, J. E., Hosseini, M. M. Histodynamics of endosseous wound healing In: Bone Engineering. Davies, J. E. , Em Squared Inc. Toronto. 1-14 (2000).
  18. Welsh, R. P., Pilliar, R. M., Macnab, I. Surgical implants. The role of surface porosity in fixation to bone and acrylic. J. Bone Joint Surg. Am. 53 (5), 963-977 (1971).
  19. O'Brien, F. J., Taylor, D., Clive, L. T. The effect of bone microstructure on the initiation and growth of microcracks. J. Orthop. Res. 23 (2), 475-480 (2005).
  20. Steflik,, et al. Ultrastructural analyses of the attachment (bonding) zone between bone and implanted biomaterials. J. Biomed. Mater. Res. 39 (4), 611-620 (1998).
  21. Sul, Y. -T., Johansson, C., Albrektsson, T. A novel in vivo method for quantifying the interfacial biochemical bond strength of bone implants. J. Royal Soc. 7 (42), 81-90 (2010).
  22. Wong, M., et al. Effect of surface topography on the osseointegration of implant materials in trabecular bone. J. Biomed. Mater. Res. 29 (12), 1567-1575 (1995).
  23. Gotfredsen, K., et al. Anchorage of titanium implants with different surface characteristics: an experimental study in rabbits. Clin. Implant Dent. Relat. Res. 2 (3), 120-128 (2000).
  24. Lekholm, U., Zarb, G. A., Albrektsson, T. Patient selection and preparation. In: Tissue integrated prostheses. , Quintessence Publishing Co. Inc. Chicago. 199-209 (1985).

Tags

生物工程,第84,机械试验,骨锚固,中断测试,表面形貌,种植体周围骨,骨 - 植入物界面,骨键合,微观形貌,纳米形貌
一种改进的机械性能测试方法来评估骨种植体支抗
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Bell, S., Ajami, E., Davies, J. E.More

Bell, S., Ajami, E., Davies, J. E. An Improved Mechanical Testing Method to Assess Bone-implant Anchorage. J. Vis. Exp. (84), e51221, doi:10.3791/51221 (2014).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter