Name: Método rentable para el Rastreo de uso microbiana específica virus humanos y animales (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-12-03T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 29 s
Description: Aprenda un método rentable para el rastreo de fuentes microbianas en agua mediante PCR cuantitativa de adenovirus y poliomavirus humanos, porcinos y bovinos. Esta técnica permite identificar contaminación fecal y mejorar la vigilancia de la calidad del agua.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Este trabajo fue parcialmente financiado por el Gobierno español &quot;Ministerio de Educación y Ciencia&quot; (proyecto AGL2008-05275-C01/ALI), por el Marco Europeo de Investigación de la Unión siete proyectos financiados VIROBATHE (Contrato N º 513.648), VIROCLIME (Contrato N º 243923 ) y por la Agencia Catalán de agua, Agència Catalana de l&#39;Aigua (ACA), Departamento de Control i Millora dels Ecosistemes acuáticos. Durante el estudio desarrollado Marta Rusiñol era un compañero del catalán Gobierno &quot;AGAUR&quot; (FI-DGR).

1. Concentración de las partículas virales presentes en muestras de agua <ol><li> Recolección y acondicionamiento de muestras de agua <ol><li> Recoger un mínimo de dos réplicas de 10 L por cada muestra en recipientes de plástico con fondo plano y una muestra adicional, como el control del proceso. Esta última muestra se enriquece con una cantidad conocida de partículas virales y se utiliza como control. Nota: Se recomienda contar con un material especial independiente (botellas, tubos, etc) para muestras adicionadas. </li><li> Verificar la calibración del conductímetro y volver a calibrar si es necesario. Preparar un control negativo con agua del grifo previamente ajustado a la conductividad adecuada (ver más abajo 1.6) en un recipiente de plástico adicional L 10. </li><li> Para muestras adicionadas: Añadir el volumen estándar de la lucha contra el virus (aproximadamente 10 5 copias del genoma por cada 10 litros de agua) a la muestra. Mezclar por agitación evitar salpicaduras y aerosoles. Los controles positivos que podría consistir en una cepa poco común de adenovirus sran como HAdV-35 o un bacteriófago como MS2. </li><li> Si la muestra presenta gran cantidad de material en suspensión (arena u otros materiales), hizo que los sedimentos durante 15 minutos. Transferir el agua en un recipiente nuevo. </li><li> Ajustar el pH de la muestra de agua a 3,5 (± 0,1) con la adición de HCl 1 N. Este paso es importante para la concentración de los virus, así que asegúrese de que el pH se ha ajustado correctamente. Mezcle el agua bien por agitación vigorosa, mientras que la adición de HCl. (Nota: Si el pH es inferior a 3,5 añadir NaOH 1 M). </li><li> Ajustar la conductividad. Si la muestra tiene una conductividad de 1500 uS / cm o más, este paso no es necesario. Si la conductividad es inferior a 1.500 uS / cm la formación de material floculado (flóculos) no está garantizada para ajustar la conductividad de 1500 uS / cm por la adición de sales de mar artificial (Sigma). Mezclar enérgicamente con agitación, mientras que la adición de las sales del mar. </li><li> Registre el pH de las muestras antes y después del acondicionamiento, así como uns el volumen de HCl utilizado. La conductividad también deben ser registrados después de ajustar el pH. Siempre desinfectar los electrodos de pH-metro y conductímetro con una nueva solución de HCl, el cloro con una solución de sodio al 10% Tiosulfato y finalmente enjuagar con agua destilada. </li></ol></li><li> Preparación de pre-floculado leche desnatada 1% (PSM) <ol><li> Verificar la calibración del pH-metro y conductímetro y volver a calibrar si es necesario. </li><li> Prepare una solución pre-floculado leche desnatada (1 PSM%, w / v) disolviendo 10 g de polvo de leche descremada (Difco) en un agua de mar artificial L (se disuelven 33,3 g de sal marina artificial en 1 litro de agua del grifo sin cloro y autoclave) y cuidado de ajustar el pH a 3,5 con HCl 1N. Los flóculos deben ser visibles. Prepare la solución justo antes de ser utilizado o se almacenan a 4 ° C durante 24 h. Para decloración uso 1 ml de solución Tiosulfato 10% por cada 100 ml de agua. </li></ol></li><li> Floculación de las partículas virales presentes en las muestras de agua<ol><li> Añadir 100 ml de 1% PSM a la muestra de agua 10-L. </li><li> Agitar las muestras de 80-10 h para permitir que el virus de absorber a los flóculos. Use un temporizador para apagar la agitación después de 8-10 h. </li><li> Detener la agitación y dejar que el sedimento flóculos por la gravedad de 80-10 h. </li></ol></li><li> Recolección y re-disolver los flóculos. Centrifugación <ol><li> Eliminar el sobrenadante mediante una bomba peristáltica y una pipeta de plástico conectada a un tubo de plástico. Para muestras adicionadas el sobrenadante debe ser recogida en una botella y desinfectados de acuerdo a los procedimientos internos. En todos los casos CUIDAR no recoger el sedimento. </li><li> Recoger los sedimentos con los flóculos (500 ml) en una botella de centrífuga. </li><li> Balance de las ollas con la adición de pH 3,5 PSM. </li><li> Centrífuga de las macetas en una centrífuga de alta velocidad a 8.000 xg durante 30 min a 4 ° C. Tan pronto como se detiene la centrífuga, retire con cuidado los botes de centrífuga de la centrifugadora. </li><li> Muy gently verter y desechar el sobrenadante. Siga las medidas apropiadas para material infeccioso. </li><li> 7 ml de solución amortiguadora de fosfato para disolver el precipitado en cada botella de centrífuga. </li><li> Una vez que los copos se han disuelto, medir y añadir tampón fosfato para llegar a un volumen total de 10 ml. </li><li> Homogeneizar el concentrado viral por agitación y distribuir los 10 ml en microtubos limpia que debería estar congelado a -80 ° C hasta que se necesite en su posterior análisis. </li></ol></li></ol> 2. Extracción del ácido nucleico <ol><li> Realizar una extracción de ácidos nucleicos con el QIAamp Viral RNA Mini Kit de las instrucciones del fabricante. Este kit permite la utilización de una plataforma automatizada (como Qiacube, Qiagen). </li></ol> 3. PCR cuantitativa de los adenovirus humanos (HAdV), poliomavirus JC (JCPyV), adenovirus porcino (PADV) y poliomavirus bovina (BPYV) <ol><li> La cuantificación de copias del genoma en las muestras <ol><li> Prepararla mezcla de PCR cuantitativa en un área separada limpia utilizando TaqMan PCR Master Mix Ambiental 2x (Applied Biosystems). La reacción tiene lugar en una placa de reacción de 96 pozos cubierto con óptica cubre adhesivo óptico. Las concentraciones de la mezcla maestra, primers y sondas se describen en la Tabla 1. </li><li> Una vez que la mezcla ha sido preparado, 15μl alícuotas en cada pozo incluyendo los controles (ver 3.2). El volumen total de una reacción después de la adición de la meta se 25μl (mezcla de 15μl de la muestra + 10μl o estándar). </li><li> Añadir el ácido nucleico extracciones de las muestras (10μl) en un área separada. Ejecutar directa y una dilución de diez veces en agua purificada de cada muestra por duplicado. Cubrir los pozos que contienen las muestras con parte de una cubierta adhesiva, tenga la otra parte de la cubierta para el siguiente paso. </li><li> Añadir las diluciones de la suspensión de ADN estándar (10μl) de 10 0 a 10 6 GC/10μl por triplicado y con una micropipeta de uso exclusivo para el Stanestándar de ADN. Es recomendable añadir las normas en una zona equipada con la radiación UV para la destrucción de ADN plásmido, y para limpiar la micropipeta tras cada uso. Cubrir los pozos que contienen las normas de la cubierta adhesiva pre-cortadas. Nota: Para preparar suspensiones estándar para ser utilizado en la cuantificación de copias del genoma, la región del ADN objetivo debe ser clonado en un plásmido y lineal. En la siguiente dirección se encuentra un procedimiento detallado de cómo crear curvas de nivel con las plantillas de ADN plásmido para ser utilizados en qPCR: <a href="http://www.appliedbiosystems.com/support/tutorials/pdf/quant_pcr.pdf">http://www.appliedbiosystems.com/support/tutorials/pdf/quant_pcr.pdf</a> </li><li> Realizar la qPCR en un sistema adecuado de seleccionar los parámetros adecuados (teniendo en cuenta el uso de la cubierta adhesiva y el volumen total en cada pozo, etc.) Tras la activación del AmpliTaq Gold durante 10 min a 95 ° C, 40 ciclos de amplificación se realizan de la siguiente manera: 15 s a 95 ° Cy 1 min a 60 ° C durante HAdV, JCPyV y BPYV, y 15 s a 95 ° C, 20 a 55 ° C y 20 a 60 ° C para PADV. </li><li> Una vez que las reacciones se han completado, los datos almacenados y los resultados como se describe en el manual del usuario de los equipos utilizados. La cantidad de ADN se define como la mediana de los datos obtenidos después de corregir el factor de dilución cuando sea necesario. </li></ol></li><li> Controles <ol><li> Utilice los controles positivos y negativos. El ensayo debe incluir más de un no-modelo de control (NTC) para probar la mezcla no produce fluorescencia. Es aconsejable que ejecute el control de procesos positivos con el fin de evaluar la potencial inhibición enzimática debido a los inhibidores presentes en las muestras estudiadas. </li><li> Registrar los resultados de los ensayos de qPCR de dos diferentes diluciones del ADN estándar y de control de procesos. Usar los resultados para elaborar gráficos de control para el control de calidad (QC) los programas relacionados con la sensibilidad y la eficiencia de los ensayos. </li></ol></li><li> La confirmación deresultados <ol><li> Los resultados positivos pueden ser confirmado mediante secuenciación PCR anidada y de nucleótidos de los amplicones, la producción de datos sobre las secuencias de nucleótidos de las cepas detectadas 1,5,6,7,9,12. </li></ol></li></ol> Siguiendo el procedimiento descrito, los virus humanos y animales han sido detectados y cuantificados en las aguas de baño, agua de mar y agua de los ríos 2,3. Como ejemplo representativo, las muestras de agua subterránea de las áreas que presentan altos niveles de nitratos fueron evaluados para definir las fuentes de la contaminación. Diez litros de muestras de agua fueron recolectadas en cuatro pozos diferentes en las zonas rurales de una región del noreste de España. Cinco réplicas se obtuvieron en cada una repetición bienestar sembrado con adenovirus humanos 2 utilizadas como control de procesos. Las muestras fueron procesadas de acuerdo al protocolo representadas en la figura 1. Las cuatro réplicas analizadas en uno de los cuatro sitios estudiados mostraron resultados positivos para PADV (valor medio 7.74x10 2 GC / L), que se relaciona con la presencia de purines de cerdo en los alrededores del sitio de muestreo y apoyaría la contaminación fecal porcina como la fuente de nitratos en el agua subterránea (Tabla 2). 4. Los resultados representativos: <img src="/files/ftp_upload/2820/2820fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Procedimiento para la detección y cuantificación de virus en el agua. <img src="/files/ftp_upload/2820/2820table1.jpg" alt="Tabla 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tabla 1"> Tabla 1. Concentración de los cebadores y sondas para ensayos de PCR cuantitativa. <img src="/files/ftp_upload/2820/2820table3.jpg" alt="Tabla 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tabla 3"> Tabla 2. Detección y cuantificación de adenovirus humanos y animales y poliomavirus en muestras de agua subterránea. n número de réplicas analizadas Porcentaje% de los positivos se replica (-) No detectados

<ol><li>Bofill-Mas, S., Clemente-Casares, P., Major, E. O., Curfman, B., Girones, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+the+excreted+JC+virus+strains+and+their+potential+oral+transmission%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurovirol%22%5BJournal%5D)">Analysis of the excreted JC virus strains and their potential oral transmission.</a> J. Neurovirol. 9 (4), 498-507 (2003).</li>
<li>Bofill-Mas, S., Albinana-Gimenez, N., Clemente-Casares, P., Hundesa, A., Rodriguez-Manzano, J., Allard, A., Calvo, M., Girones, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+and+stability+of+human+adenoviruses+and+polyomavirus+JCPyV+in+wastewater+matrices%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Quantification and stability of human adenoviruses and polyomavirus JCPyV in wastewater matrices.</a> Appl. Environ. Microbiol. 72 (12), 7894-7896 (2006).</li>
<li>Calgua, B., Mengewein, A., Grunert, A., Bofill-Mas, S., Clemente-Casares, P., Hundesa, A., Wyn-Jones, A. P., López-Pila, J. M., Girones, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+application+of+a+one-step+low+cost+procedure+to+concentrate+viruses+from+seawater+samples%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Development and application of a one-step low cost procedure to concentrate viruses from seawater samples.</a> J. Virol. Methods. 153 (2), 79-83 (2008).</li>
<li>Hernroth, B. E., Conden-Hansson, A. C., Rehnstam-Holm, A. S., Girones, R., Allard, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Environmental+factors+influencing+human+viral+pathogens+and+their+potential+indicator+organisms+in+the+blue+mussel%2C+Mytilus+edulis%3A+the+first+Scandinavian+report%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Environmental factors influencing human viral pathogens and their potential indicator organisms in the blue mussel, Mytilus edulis: the first Scandinavian report.</a> Appl. Environ. Microbiol. 68, 4523-4533 (2002).</li>
<li>Hundesa, A., Bofill-Mas, S., de Motes, M. aluquer, Rodriguez-Manzano, C., Bach, J., Casas, A., M,, Girones, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+quantitative+PCR+assay+for+the+quantitation+of+bovine+polyomavirus+as+a+microbial+source-tracking+tool%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Development of a quantitative PCR assay for the quantitation of bovine polyomavirus as a microbial source-tracking tool.</a> J. Virol. Methods. 163 (2), 385-389 (2010).</li>
<li>Hundesa, A., de Motes, M. aluquer, Albinana-Gimenez, C., Rodriguez-Manzano, N., Bofill-Mas, J., Suñen, S., E,, Girones, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+qPCR+assay+for+the+quantification+of+porcine+adenoviruses+as+an+MST+tool+for+swine+fecal+contamination+in+the+environment%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Development of a qPCR assay for the quantification of porcine adenoviruses as an MST tool for swine fecal contamination in the environment.</a> J. Virol. Methods. 158 (1-2), 130-135 (2009).</li>
<li>Hundesa, A., de Motes, M. aluquer, Bofill-Mas, C., Albinana-Gimenez, S., N,, Girones, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+human+and+animal+adenoviruses+and+polyomaviruses+for+determination+of+sources+of+fecal+contamination+in+the+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Identification of human and animal adenoviruses and polyomaviruses for determination of sources of fecal contamination in the environment.</a> Appl. Environ. Microbiol. 72 (12), 7886-7893 (2006).</li>
<li>Layton, B. A., Walters, S. P., Lam, L. H., Boehm, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enterococcus+species+distribution+among+human+and+animal+hosts+using+multiplex+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Enterococcus species distribution among human and animal hosts using multiplex PCR.</a> J. Appl. Microbiol. 109, 539-547 (2010).</li>
<li>de Motes, M. aluquer, Clemente-Casares, C., Hundesa, P., Martín, M., Girones, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+bovine+and+porcine+adenoviruses+for+tracing+the+source+of+fecal+contamination%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Detection of bovine and porcine adenoviruses for tracing the source of fecal contamination.</a> Appl. Environ. Microbiol. 70 (3), 1448-1454 (2004).</li>
<li>Pal, A., Sirota, L., Maudru, T., Peden, K., Lewis, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+PCR+assays+for+the+detection+of+virus-specific+DNA+in+simples+with+mixed+populations+of+polyomaviruses%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Real-time PCR assays for the detection of virus-specific DNA in simples with mixed populations of polyomaviruses.</a> J. Virol. Methods. 135 (1), 32-42 (2006).</li>
<li>Stapleton, C. M., Kay, D., Wyer, D. avies, Watkins, C., Kay, J., McDonald, C., Porter, A. T., J,, Gawler, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluating+the+operational+utility+of+a+Bacteroidales+quantitative+PCR-based+MST+approach+in+determining+the+source+of+faecal+indicator+organisms+at+a+UK+bathing+water%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Res%22%5BJournal%5D)">Evaluating the operational utility of a Bacteroidales quantitative PCR-based MST approach in determining the source of faecal indicator organisms at a UK bathing water.</a> Water Res. 43, 4888-4899 (2010).</li>
<li>Wang, J., Horner, G. W., Keef, O., S, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+and+molecular+characterization+of+bovine+polyomavirus+in+bovine+sera+in+New+Zealand%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Z.+Vet.+J%22%5BJournal%5D)">Detection and molecular characterization of bovine polyomavirus in bovine sera in New Zealand.</a> N. Z. Vet. J. 53, 26-30 (2005).</li>
</ol>

Dos solicitudes de patente presentadas en 2009 para proteger la propiedad intelectual de los protocolos para la cuantificación de PADV y BPYV.

<html> El procedimiento descrito se cumplen las condiciones para un método de ajuste de rutina de los laboratorios de salud ambiental y pública: reproducible, fiable, sencillo y rentable. El protocolo es sencillo, sin embargo, deben seguirse estrictamente. Baja conductividad en las muestras sin necesidad de añadir la concentración de sales pidió agua de mar artificial reduciría dramáticamente la recuperación de los virus, como sería el caso si el tiempo de agitación para la floculación es significativamente reducida (men...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios </td></tr><tr><td> Centrífuga de alta velocidad (8.000 xg) </td><td> Berckman Coulter </td><td> Avanti J-20XP </td><td></td></tr><tr><td> pH-metro, termómetro y conductímetro </td><td> Afora </td><td> LPPC3003 </td><td></td></tr><tr><td> Tubos de plástico 100-200 cm de longitud </td><td> Deltalab </td><td> 350059 </td><td></td></tr><tr><td> Se graduó pipetas desechables estériles </td><td> Labclinics </td><td> PN10E1 </td><td></td></tr><tr><td> Tubos estériles de plástico de 1,5 y 10-15 ml (Eppendorf, halcones, etc) </td><td> Afora </td><td> KA298/00 </td><td></td></tr><tr><td> Ollas centrifugadora (500 mL) </td><td> Fisher Scientific </td><td> SE5753512 </td><td></td></tr><tr><td> Agitadores magnéticos e imanes (uno porde la muestra) </td><td> Fisher Scientific </td><td> 10510 </td><td></td></tr><tr><td> De vidrio o recipientes de plástico con fondo plano para permitir el uso de agitadores magnéticos </td><td> Deltalab </td><td> 191642 </td><td></td></tr><tr><td> Una bomba peristáltica para retirar el sobrenadante (o una bomba de vacío por chorro de agua) </td><td> Watson-Marlow </td><td> 323E / D </td><td></td></tr><tr><td> Temporizador para apagar la agitación después de 8-10 horas </td><td> Deltalab </td><td> 900400 </td><td></td></tr><tr><td> El ácido clorhídrico (1 N y 0,1 N) </td><td> Panreac </td><td> 141020.1611 </td><td></td></tr><tr><td> Hidróxido de sodio (1N) </td><td> Panreac </td><td> 131687.1211 </td><td></td></tr><tr><td> Sales del agua de mar artificial mar </td><td> Sigma </td><td> S9883 </td><td></td></tr><tr><td> La leche desnatada (SM) </td><td> Difco </td><td> 232100 </td><td></td></tr><tr><td> Fosfato de pH 7, 5 </td><td></td><td></td><td> 1:2 v / v de estériles Na 2 HPO 4 0,2 M y NaH 2 PO 4 0,2 M a pH 7,5 </td></tr><tr><td> Tiosulfato </td><td> Panreac </td><td> 121879.1209 </td><td> Prepare una solución de 10% en agua </td></tr><tr><td> QIAamp Viral RNA Mini Kit </td><td> Qiagen </td><td> 52904 </td><td></td></tr><tr><td> De 96 pocillos placa de reacción óptica (500 unidades) </td><td> Applied Biosystems </td><td> 43426659 </td><td></td></tr><tr><td> Óptica cubre adhesivo (100 unidades) </td><td> Applied Biosystems </td><td> 4311971 </td><td></td></tr><tr><td> TaqMan PCR Master Mix Ambiental 2x </td><td> Applied Biosystems </td><td> 4396838 </td><td></td></tr></tbody></table>

método rentable para el rastreo de uso microbiana específica virus humanos y animales

Cost-effective Method for Microbial Source Tracking Using Specific Human and Animal Viruses

La contaminación microbiana del medio ambiente representa un riesgo significativo para la salud. Clásicos indicadores fecales bacterianos han demostrado que tienen limitaciones significativas, los virus son más resistentes a procesos de inactivación y muchos indicadores estándar fecal no informan sobre la fuente de contaminación. El desarrollo de métodos eficientes para la concentración de virus a partir de agua y ensayos moleculares facilita la aplicación de los virus como indicadores de contaminación fecal y herramientas de software como el seguimiento microbiano (MST). Adenovirus y poliomavirus son virus ADN infectar a especies específicas de vertebrados incluyendo a los humanos y son persistentemente excreta en las heces y / o de orina en todas las áreas geográficas estudiadas. En estudios anteriores, hemos sugerido la cuantificación de los adenovirus humanos (HAdV) y poliomavirus JC (JCPyV) por PCR cuantitativa (qPCR) como un índice de contaminación fecal humana. Recientemente, se han desarrollado ensayos de PCR cuantitativa para la cuantificación específica del porcine adenovirus (PADV) y poliomavirus bovina (BPYV) como animales marcadores de contaminación fecal con la sensibilidad de copias del genoma 1.10 por tubo de ensayo. En este estudio, se presenta el procedimiento a seguir para identificar la fuente de contaminación en muestras de agua usando estas herramientas. Como ejemplo de resultados representativos, el análisis de virus en el agua subterránea presenta altos niveles de nitratos se muestra. Detección de virus en las aguas contaminadas de baja o moderada requiere la concentración de los virus por lo menos de varios litros de agua en un volumen mucho menor, un procedimiento que generalmente consta de dos etapas de concentración en serie. Este procedimiento un tanto engorroso y la variabilidad observada en la recuperación viral significativamente interferir con el procesamiento simultáneo de un gran número de muestras de agua. Con el fin de eliminar los cuellos de botella causados ​​por los procedimientos de dos pasos que hemos aplicado un protocolo de un solo paso desarrollado en Studie anteriors, y aplicable a una diversidad de matrices de agua. El procedimiento incluye: la acidificación de las muestras de agua de diez litros, floculación de la leche desnatada en polvo, sedimentación por gravedad de los materiales floculada, la recogida del precipitado y centrifugación, resuspensión del precipitado en tampón fosfato 10 ml. El concentrado viral se utiliza para la extracción de ácidos nucleicos virales y los adenovirus y poliomavirus específicos de interés se han cuantificado mediante qPCR. Alto número de muestras se podrá analizar simultáneamente con este método de concentración de bajo costo. El procedimiento se ha aplicado al análisis de las aguas de baño, agua de mar y agua de los ríos y en este estudio, se presentan los resultados de analizar muestras de agua subterránea. Este método cuantitativo de alto rendimiento es fiable, sencilla y rentable.

El estudio describe un método costo-efectivo para la identificación de la fuente de contaminación fecal / orina o la contaminación por nitratos en el agua utilizando qPCR para la cuantificación específica de los virus de ADN humano / porcino / bovino, adenovirus y poliomavirus, propuesto como herramientas de MST.

Método rentable para el Rastreo de uso microbiana específica virus humanos y animales

La contaminación microbiana del medio ambiente representa un riesgo sanitario significativo. Se ha demostrado que los indicadores fecales bacterianos clásicos presentan...

Método rentable para el rastreo de fuentes microbianas mediante virus específicos de humanos y animales. El estudio describe un método rentable para la identificación del origen de la contaminación fecal, urinaria o por nitratos en el agua, utilizando PCR cuantitativa para la cuantificación específica de virus de ADN porcinos, bovinos y humanos, adenovirus y poliomavirus propuestos como herramientas para el rastreo de fuentes microbianas. Hemos desarrollado un protocolo para la concentración de virus a partir de muestras de agua de 10 litros mediante floculación orgánica, extracción de ácidos nucleicos virales del sedimento utilizando leche descremada y cuantificación de virus de ADN humanos, bovinos o porcinos mediante PCR cuantitativa.Es bien sabido que la contaminación microbiana de la vitamina representa un riesgo sanitario significativo y necesitamos conocer las fuentes de dicha contaminación. Hemos propuesto el uso de virus de ADN altamente prevalentes como herramientas para el rastreo de fuentes microbianas. Los virus seleccionados son adenovirus y poliomavirus.Esos virus se excretan de forma persistente durante todo el año y en todas las áreas geográficas. Estudiados en inv

cost-effective-method-for-microbial-source-tracking-using-specific

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

El Virochip es un microarray de pan-viral diseñada para detectar de forma simultánea todos los virus conocidos, así como nuevos virus sobre la base de la homología de secuencia conservada. Aquí se demuestra cómo ejecutar un ensayo de Virochip para analizar las muestras clínicas para determinar la presencia de virus conocidos y desconocidos.

El uso de un ensayo de microarrays Pan-viral (Virochip) a la pantalla de muestras clínicas de los patógenos virales

Este estudio describe el diagnóstico de la gripe aviar en aves silvestres con un portátil de RT-PCR sistema. El método tiene la ventaja de liofilizado reactivos para detectar las aves silvestres en un entorno ajeno al laboratorio, propio de un escenario de brote. Uso de herramientas moleculares ofrece alternativas precisas y sensibles para el diagnóstico rápido.

El diagnóstico rápido del virus de la influenza aviar en aves silvestres: El uso de un portátil de RT-PCR y reactivos liofilizados en el campo

Un método para preservar, detectar y secuencia de ARN del virus de la gripe aviar fue confirmada y ampliada usando colorantes naturales como muestras de heces de las aves. Esta técnica elimina la necesidad de mantener una cadena de frío y la manipulación de virus infecciosos y puede ser aplicado en un 96-así de alto rendimiento de la instalación.

Vigilancia de la Gripe Aviar, con tarjetas FTA: Métodos de Campo, la bioseguridad y los problemas de transporte resueltos

Un método de rastreo de neuronas conectadas sinápticamente se describe. Usamos especificidad TVA de una célula de aguas arriba para probar si una población celular de interés recibe la entrada sináptica de tipos de células genéticamente definidos.

Trazado de Circuitos Viral genéticamente definidos Neural

pruebas de alto rendimiento de ADN y ARN patógenos basados ​​por nanoescala PCR se describe el uso de un canino sindrómica y el panel de PCR respiratoria equina.

La detección de alto rendimiento de los patógenos respiratorios de especímenes animales por PCR nanoescala

Un anión intercambio método basado en la resina, adaptado para muestreo de bioaerosol basado en el choque de los virus se demuestra el líquido. Cuando se combina con detección molecular aguas abajo, el método permite la detección fácil y sensible de virus de bioaerosoles.

Detección de virus de bioaerosoles utilizando resina de intercambio aniónico

Aquí presentamos VirWaTest, que es un método simple, asequible y portátil para la concentración y detección de virus de muestras de agua en el punto de uso.

VirWaTest, un método de punto de uso para la detección de virus en muestras de agua

Se han encontrado numerosas secuencias nuevas similares a virus en mosquitos debido al uso extensivo de tecnologías de secuenciación. Proporcionamos un procedimiento eficaz para aislar y amplificar virus utilizando líneas celulares de vertebrados y mosquitos, que podría servir como base para futuros estudios sobre virus asociados a mosquitos, incluidos los virus transmitidos por mosquitos y específicos de mosquitos.

Aislamiento de virus asociados a mosquitos de mosquitos recolectados en el campo

Presentamos un protocolo que combina la amplificación de la polimerasa recombinasa con un sistema CRISPR/Cas12a para la detección de trazas de virus de ADN y construye una microscopía portátil para teléfonos inteligentes con una clasificación asistida por inteligencia artificial para la detección de virus de ADN en el punto de atención.

Sistema de detección de virus de ADN basado en RPA-CRISPR/Cas12A-SPM y Deep Learning

Aquí, presentamos un flujo de trabajo rápido y rentable para caracterizar los genomas del virus de la rabia (RABV) utilizando tecnología de nanoporos. El flujo de trabajo está destinado a apoyar la vigilancia genómica a nivel local, proporcionando información sobre los linajes circulantes del RABV y su ubicación dentro de las filogenias regionales para guiar las medidas de control de la rabia.

Secuenciación del genoma completo para la caracterización rápida del virus de la rabia mediante tecnología de nanoporos

Aquí, describimos un inmunoensayo fluorescente multiplex recientemente desarrollado que utiliza un sistema citométrico de flujo de doble reportero para detectar simultáneamente dos epítopos únicos de proteína de pico en partículas virales intactas del coronavirus 2 del síndrome respiratorio agudo severo (SARS-CoV-2) que habían sido capturadas por microesferas magnéticas acopladas a la enzima convertidora de angiotensina-2.

Perfil de epítopos de proteínas de superficie en partículas virales mediante la estrategia Multiplex Dual-Reporter

Aprenda un método rentable para el rastreo de fuentes microbianas en agua mediante PCR cuantitativa de adenovirus y poliomavirus humanos, porcinos y bovinos. Esta técnica permite identificar contaminación fecal y mejorar la vigilancia de la calidad del agua.

Método rentable para el Rastreo de uso microbiana específica virus humanos y animales

Explorar más videos