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Inmunología
0 vistas • 3:35 min • July 8th, 2025
Comience con una suspensión de células tumorales fijada químicamente.
Agregue una concentración óptima de inmunoglobulina G de unión tumoral que se une a los antígenos de la superficie de las células tumorales, formando complejos inmunes o IC.
Transfiera los CI a una placa de cultivo que contenga células dendríticas adheridas. Incubar.
La célula dendrítica reconoce el CI, lo internaliza y lo procesa en fragmentos peptídicos.
Los fragmentos se cargan en moléculas principales del complejo de histocompatibilidad de clase II o MHC-II y se presentan en la superficie celular, junto con la molécula coestimuladora CD86.
Retire los medios. Agregue un tampón de disociación celular y pipetee vigorosamente para separar las células.
Transfiera las células a un tubo.
Centrifugar y resuspender las células en una solución de bloqueo para bloquear interacciones no específicas.
Superposición con un cóctel de anticuerpos marcado con fluoróforo dirigido a MHC-II y CD86.
Agregue un tinte de unión al ADN e incube brevemente para teñir los núcleos de células muertas.
Mediante citometría de flujo, identifique las células vivas que coexpresan MHC-II y CD86, confirmando la activación de células dendríticas mediada por IC.
Primero, fije las células en paraformaldehído tamponado al 1,8% durante 10 minutos a temperatura ambiente. Siembre la suspensión celular en cada pocillo de una placa de 96 pocillos en forma de U. A continuación, agregue diluciones variables de anticuerpos de unión tumoral en cada pocillo. A continuación, incube las células en hielo durante 15 a 20 minutos.
Después de la incubación, lave las células con 150 microlitros de solución salina tamponada con fosfato, luego centrifugue a 400 veces g durante 5 a 10 minutos a 4 grados centígrados. Después de la centrifugación, expulse el sobrenadante y lave las células dos veces. Disuelva las células en 100 microlitros de tampón FACS, que contiene anticuerpos secundarios conjugados con fluoróforo. Luego, incube el plato en hielo durante 15 a 20 minutos.
Después de 15 a 20 minutos, agregue 200 microlitros de tampón FACS para lavar las células. Centrifugar la placa a 400 veces g durante 5 a 10 minutos. Decantar el sobrenadante. Realizar citometría de flujo para analizar la unión tumoral y determinar la concentración mínima de inmunoglobulina G necesaria para recubrir las células.
Una vez que las células estén recubiertas con una concentración mínima de inmunoglobulina G, agregue el complejo inmune tumoral marcado con CFSE a las células dendríticas derivadas de monocitos en una proporción de 1: 5. Luego, incube la mezcla durante 12 a 16 horas durante la noche en medio completo. Realizar análisis FACS de la activación de células dendríticas derivadas de monocitos.
Este artículo describe un método para activar células dendríticas utilizando inmunoglobulina G de unión a tumores y complejos inmunes. El proceso consiste en incubar las células dendríticas con estos complejos, seguido de un análisis mediante citometría de flujo para confirmar la activación.
Este protocolo permite la validación funcional de la activación de células dendríticas mediante la captación de antígenos mediada por complejos inmunes, proporcionando una lectura mecanicista para la evaluación de candidatos inmunomoduladores. Al vincular el procesamiento de antígenos con la expresión superficial de MHC-II y CD86, este método apoya la reducción de riesgos en objetivos dentro de programas de inmuno-oncología. La lectura basada en citometría de flujo ofrece datos cuantitativos y reproducibles para tomar decisiones de avance o descarte en las fases iniciales del descubrimiento.
El método se integra en el continuo de descubrimiento en inmuno-oncología, desde la validación de dianas hasta la optimización de compuestos iniciales, donde la activación de las células dendríticas predice el potencial inmunoterapéutico.
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Última actualización: 22 agosto 2026