Name: El aislamiento, la identificación y purificación de células epiteliales del timo murino (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-08T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 20 s
Description: Aprenda a aislar, identificar y purificar células epiteliales del timo murino mediante digestión enzimática, citometría de flujo y clasificación celular. Este método permite estudiar el desarrollo de células T y la función tímica.

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Esta labor fue apoyada por los Institutos Nacionales de Salud de subvención R01 AI088209 (a KAH). También agradecemos a la Universidad de Minnesota Flujo de Recursos Citometría.

En este estudio, los adultos - se utilizaron (6 8 semanas) hembra C57BL / 6 ratones. Los ratones se adquirieron en el Instituto Nacional del Cáncer y mantuvieron en condiciones libres de patógenos específicos. La Universidad de Comité de Cuidado y Uso de Animales institucional Minnesota (IACUC) aprobó toda la experimentación animal. 1 Preparación de Instrumentos y búferes <ol><li> Preparar la solución de enzima (medio RPMI 1640 con 0,05% [w / v] de Liberase TH y 100 U / ml de DNasa I), tampón rico en albúmina (1X PBS [Ca 2 + / Mg 2 + libre] con 0,5% de suero bovino mM de ácido etilendiaminotetraacético albúmina y 2 [EDTA]), tampón FACS (PBS 1X [Ca 2 + / Mg 2 + libre] que contiene suero bovino fetal al 1% [FBS] y 0,02% NaN 3), FACS clasificación tampón (PBS 1X [Ca 2 + / Mg 2 + libre] que contiene 2% de FBS), y medio RP10 (medio RPMI-1640 suministrado con FBS al 10%). </li><li> Preparar 10 placas paneo. Preparar la solución de recubrimiento 40 ml (0,01 mg / ml de Gavena anti-IgG de rata en 0,1 M NaHCO3 Buffer), y añadir 4 ml de solución de revestimiento en cada placa de 100 mm x 15, remolino e incubar a 4 ° CO / N. Vierta la solución de anticuerpo y enjuagar la placa con 5 ml de 1x PBS durante 2 horas, agite vigorosamente entre enjuagues. Guarde las placas preparadas a 4 ° C. </li></ol> 2. Cosecha de Timo Tejido <ol><li> La eutanasia de ratón en una cámara de CO 2. Coloque el animal sobre su espalda sobre una estera de disección, fijar los pies en el felpudo y humedecer la piel mediante pulverización con etanol al 70%. </li><li> Hacer una incisión en la línea media a través de la piel, a partir de por encima de la abertura de la uretra hacia arriba a la mandíbula inferior con una tijera y extender la incisión hacia abajo para las rodillas en ambos lados. La incisión se ve como un revés de &quot;Y&quot;. Tire de la piel suelta de nuevo en los lados, y el pin a la lona disección. </li><li> Perforar el diafragma del xifoides, cortar las costillas en cada lado hasta alrededor de la clavícula, luego levante las costillas confórceps y el pin a la lona disección. El timo es justo debajo de las costillas, y se ve como dos lóbulos blancas finas que recubren el corazón (Figura 1). Tejido conectivo que rodea Desconecte el timo, tirar y eliminar el par de lóbulos del timo con pinzas dentadas curvadas suavemente. Lóbulos del timo lugar en una placa de 6 pocillos que contenía 5 ml de medio RPMI-1640. </li></ol> 3. Preparación de las células del estroma tímico <ol><li> Recortar cualquier tejido graso y conectivo circundante y transferir los lóbulos del timo a un nuevo pocillo de la placa de 6 pocillos que contiene 5 ml de solución de enzima recién preparan. Hacer pequeñas incisiones en los lóbulos del timo con tijeras finas, y se incuba la placa a 37 ° C durante 20 min. </li><li> Pipetear suavemente digerir tejido del timo arriba y abajo 2-3 veces usando la pipeta 5 ml para la disociación del tejido. Recoger la fracción de sobrenadante en un tubo de 50 ml que contiene 10 ml de tampón de albúmina rica en frío para neutralizar enzimas. Mantener el tubo de recogida en hielo. Añadir 2,5solución de enzima ml para el tejido restante y se incuba la placa a 37 ° C durante 15 min. </li><li> Realizar agitación mecánica suave con una jeringa de 3 ml y 18 g de aguja para romper los agregados. Piscina sobrenadante en el tubo de recogida. Añadir 2,5 ml de solución de enzima para el tejido restante y se incuba la placa a 37 ° C durante 15 min. </li><li> Repita la agitación mecánica suave con una jeringa de 3 ml y una aguja de 25 G, y se incuba la placa adicional de 5 - 10 min. </li><li> Después de la digestión completa, piscina el sobrenadante en el tubo de recogida. Centrifugar el tubo de recogida a 400 xg, 4 ° C durante 8 min para recoger las células. Aspirar el líquido y suspender las células sedimentadas en 10 ml de tampón de albúmina-rica y filtrar la muestra a través de malla de 100 mm. Contar las células utilizando un hemocitómetro. A continuación, realice el análisis de flujo cytometic (Sección 4) o el enriquecimiento TEC (Sección 5). </li></ol> 4. Identificación del TEC por Citometría de Flujo </p&gt; <ol><li> Preparar las células para una concentración final de 4 x 10 6 células por 100 l en tampón de FACS para la tinción en una placa de ensayo de pocillos de fondo redondo 96 y mantener la placa en hielo. Añadir 20 l solución de bloqueo Fc (-anticuerpo anti CD16 / CD32 a 10 mg / ml en tampón FACS) a las células e incubar las células durante 10 min en hielo. Haga girar la placa a 400 xg, 4 ° C durante 3 min. Deseche el líquido de los pozos con un movimiento rápido de la cara de la placa hacia abajo en un fregadero. </li><li> Suspender las células sedimentadas en 100 l cóctel de anticuerpos (anti-CD45, -EpCAM, clase MHC II, y -Ly51 anticuerpos, y la lectina UEA-1 marcado con diferentes fluorocromos en fabricante recomienda o probado concentraciones óptimas de cada anticuerpo en tampón FACS ), y se incuban las células en hielo durante 20 min en la oscuridad. Para la compensación, manchar 1 x 10 6 células con cada fluorocromo individual. </li><li> Añadir 100 l de tampón de FACS a cada pocillo y girar la placa a 400 xg, 4 ° C durante 3 min. Repita el paso de lavado setiempo y, a continuación, volver a suspender las células en tampón de FACS 100 l. Transferir las células a un tubo de FACS de fondo redondo de 12 x 15 mm lleno de 300 l de tampón FACS. Adquirir las muestras en el citómetro de flujo y análisis de datos utilizando el software de análisis FACS. Estrategia gating TEC se muestra en la Figura 2. </li></ol> 5. Enriquecimiento del TEC por Toma panorámica <ol><li> Centrifugar las células del timo (que se formulan en la sección 3) a 400 xg, 4 ° C durante 5 min. Aspirar el líquido y suspender las células sedimentadas en tampón de clasificación de FACS en una concentración de 2 x 10 8 células por ml en un tubo cónico de 15 ml o 50 ml. Añadir anticuerpo anti-CD90.2 (Clon 30-H12) (o anti-CD45) a una concentración final de 2,5 mg / ml de suspensión celular y se incuban las células suavemente en un mezclador que gira a 4 ° C durante 30 min. Después de la incubación, lavar con un 5 - 10 veces el volumen de medio RP10 y se centrifuga el tubo a 400 xg, 4 ° C durante 5 min. </li><li> Aspirar el líquido y resuspender las células sedimentadas enRP10 medio a una concentración de 1 x 10 7 por ml. Añadir 5 ml de suspensión celular a cada placa recubierta panning (preparado en la Etapa 1.3), remolino y se incuba durante 30 min a TA. Agitar vigorosamente; transferir los sobrenadantes en un tubo cónico. Enjuague la placa dos veces con medio RP10 y agrupar los sobrenadantes en el tubo de recogida. </li><li> Centrifugar el tubo de recogida a 400 xg, 4 ° C durante 5 min. Aspirar el líquido y resuspender las células sedimentadas en medio RP10 5 ml. Añadir la suspensión celular a una nueva placa de paneo, agitar e incubar durante 30 minutos a temperatura ambiente. Recoger las células enjuagar la placa y piscina para ellos en un tubo cónico. Una vez TEC se enriquecen, de girar las células a 400 xg, 4 ° C durante 5 min y la suspensión de células en 5 ml de tampón FACS clasificación. </li></ol> 6. Purificación del TEC por la clasificación de células <ol><li> Contar las células usando un hemocitómetro y preparar la suspensión de células a una concentración de 4 x 10 7 células en tampón de clasificación FACS. Añadir anticuerpos described en la Sección 4.4 en solución de células e incubar las células suavemente en un mezclador que gira a 4 ° C durante 30 min. Después de la tinción, lavar y suspender las células a una concentración de 10 x 10 6 células por ml de tampón de clasificación FACS. </li><li> Ordenar subconjuntos TEC través de una boquilla 100 mM usando la clasificación de células activadas por fluorescencia. Ordenado de células se recogen en 30% (v / v) de FBS en medio RPMI-1640). Una vez que la clasificación de células se realiza, centrifugar las células a 400 xg, 4 ° C durante 5 min y se preparan para análisis de aguas abajo. </li></ol>

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Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

En el protocolo, los pasos críticos son la preparación de las células del estroma del timo (Sección 3) y el enriquecimiento de los TEC (Sección 4). Se recomienda firmemente que la solución de enzima fresca se prepara cada vez y el tejido se trata tan pronto como sea posible. Para timos agrupado, se requiere optimizar el volumen de solución de enzima en función del número de timos. Si cualquier residuo de tejido que queda después de la transformación, la adición de más solución de enzima y la extensión del tiempo de incu...

Temprano en el desarrollo de células T, la médula ósea madre hematopoyéticas progenitoras multipotentes derivadas de células son reclutados a la corteza del timo, someterse compromiso de linaje T y se convierten en precursores de células T 1. En la corteza, precursores de células T CD4 y CD8 doble negativos (DN) timocitos se expanden y se diferencian en células CD8 doble positiva (DP) timocitos inmaduros CD4 y, formando un gran grupo de progenitores con receptores de células T altamente variable 1. Sólo un selecto subconjunto restringido por MHC de las células DP se convertirá en único positivos (SP) timocitos CD4 o CD8, migran a la médula del timo, y se diferencian en células T maduras funcionalmente competentes, un evento que se conoce como selección positiva 2 6. En contraste, los clones de los timocitos autorreactivos se someten a selección negativa y se eliminan a través de la apoptosis, convertido a las células T reguladoras para la auto-tolerancia, o desviado a los linfocitos intraepiteliales para los propósitos que aún no están claras 3,7-10. En el timo, las células estromales tímicas forman un microambiente único que proporciona señales para estos diversos destinos de desarrollo de células T 5,11,12. Células del estroma tímico se componen de células epiteliales del timo (TEC) - incluyendo TEC corticales (CTEC) y TEC medulares (mTECs), células dendríticas, macrófagos, fibroblastos, células endoteliales, pericitos derivadas de la cresta neural y otras células mesenquimales 13-15. Entre estos, TEC son cruciales en las diversas etapas de desarrollo de células T 1,2,16,17. Sin embargo, la falta de una manera robusta para aislar TEC ha obstaculizado una comprensión global de sus funciones 16. En particular, CTEC, que forman una red tridimensional que rodea a los progenitores en la corteza, son esenciales para la selección positiva 13,18,19 por razones que aún no están claras. Estudios anteriores proporcionaron pistas sobre la heterogeneidad y el papel de los TEC, sobre todo contando con herramientas morfológicas e histológicas 13 </sup&gt;. Recientemente las funciones únicas de subconjuntos TEC fueron abordados por enfoques genéticos en modelos de ratón 12,20. Una manera robusta y reproducible para aislar TEC es fundamental para lograr la caracterización objetiva de subconjuntos TEC, la evaluación cuantitativa y cualitativa de las funciones TEC, y la aclaración de los mecanismos de cómo CTEC apoyan la selección positiva. Debido a la rareza de TEC en el timo y las interacciones apretados forman en el órgano intacto, el aislamiento de TEC ha sido desafiante. El protocolo descrito aquí se basa en descubrimientos anteriores, actualmente reactivos disponibles, las técnicas y el conocimiento de la estructura y composición del estroma del timo. Hace casi dos décadas, se reportaron varios procedimientos para desagregar los tejidos del timo 21-27, en el que se utilizaron diferentes enzimas durante la digestión, incluyendo tripsina, colagenasa y dispasa. Gray et al. comparado esas enzimas en su precedure 28, e informó de una mejora de la metanfetaminaod con la digestión de múltiples pasos de cócteles enzimáticos 29 que se hicieron ampliamente utilizado 20,30. Sin embargo, este método implica un largo tiempo de preparación y los pasos y los resultados de digestión complejos en el número de células y proporciones de TEC última variable, incluso en la misma cohorte murino 29,30. Hace varios años, Liberase enzima grado de investigación, con adición altamente purificada de colagenasa y proteasa neutra se empezó a utilizar en la disociación del tejido del timo 30. A continuación, describimos un protocolo basado en la digestión-Liberase, con procedimientos de separación mecánica optimizados, que produce un alto número de TEC viables a partir de tejidos de timo de ratón. . Para enriquecer las células del estroma disociadas, estudios previos han utilizado tanto los gradientes de densidad o la separación de cuentas magnéticas 21,29. Sin embargo, ambos métodos causan severa perdida de ciertas poblaciones de células del estroma del timo, en particular la población de CTEC 29. Eliminación citotóxica y técnicas de paneo <shasta&gt; 31,32 han sido ampliamente utilizados para el agotamiento o la separación de los linfocitos en el campo inmunológico 12,31. Después de la comparación de estas técnicas, hemos establecido el protocolo actual de panoramización para el enriquecimiento de TEC. La condición suave durante el procedimiento de enriquecimiento conduce a una menor muerte celular e imparcial y una mayor recuperación de TEC. La suspensión de células aisladas del timo se describe en la Sección 3 se puede aplicar directamente a análisis citométrico de flujo para la identificación y caracterización de subconjuntos TEC y células dendríticas. Sección 4 describe una forma sencilla y útil para identificar subconjuntos TEC utilizando citómetro de flujo multiparamétrica. Para los experimentos que buscan obtener CTEC purificados o mTECs, enriquecimiento TEC y clasificación de células procedimientos se pueden encontrar en la sección 5 y 6.

<table><tbody><tr><td>Anti-ratón EpCAM</td><td>eBioscience</td><td>XX-5791-YY*</td><td>Clon G8.8</td></tr><tr><td>Anti-ratón MHC II</td><td>eBioscience</td><td>XX-5321-YY*</td><td>Clon M5/114.15.2</td></tr><tr><td>Anti-ratón Ly51</td><td>eBioscience</td><td>XX-5891-YY*</td><td>Clon 6C3</td></tr><tr><td>UEA-1</td><td>Vector Laboratory</td><td>FL-1061</td><td></td></tr><tr><td>Citómetro de flujo</td><td>BD Biosciences&nbsp;</td><td>LSRFortessa</td> Clasificador de <td></td></tr><tr><td>celdas de flujo</td><td>BD Biosciences&nbsp;</td><td>FACSAria</td><td></td></tr><tr><td>Tubos FACS</td><td>BD Biosciences</td><td>352052</td><td></td></tr><tr><td>Software de análisis de citometría de flujo</td><td>TreeStar - Flowjo</td><td>FlowJo v7/9</td><td></td></tr><tr><td>*XX varía según el fluorocromo y YY varía según el tamaño del vial.</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

el aislamiento, la identificación y purificación de células epiteliales del timo murino

Isolation, Identification, and Purification of Murine Thymic Epithelial Cells

El timo es un órgano vital para el desarrollo de linfocitos T. De las células del estroma tímico, células epiteliales del timo (TEC) son particularmente cruciales en múltiples etapas de desarrollo de células T: compromiso de las células T, la selección positiva y selección negativa. Sin embargo, la función de TEC en el timo sigue siendo incompleta entendido. En el artículo, se proporciona un método para aislar los subconjuntos TEC de timo de ratón fresco con una combinación de alteración mecánica y digestión enzimática. El método permite que las células del estroma tímico y timocitos a ser liberados de manera eficiente de célula-célula y célula-matriz conexiones extracelular y para formar una suspensión de una sola célula. Uso de las células aisladas, citometría de flujo multiparamétrica se puede aplicar a la identificación y caracterización de TEC y las células dendríticas. Debido TEC son una rara población de células en el timo, también se describe una forma eficaz para enriquecer y purificar TEC por el agotamiento de los timocitos, el tipo de célula más abundante en el timo. Folloala el enriquecimiento, el tiempo de clasificación de células se puede disminuir de modo que la pérdida de viabilidad celular puede reducirse al mínimo durante la purificación de TEC. Las células purificadas son adecuados para diversos análisis aguas abajo como el Real Time-PCR, Western blot y perfiles de expresión génica. El protocolo promoverá la investigación de la función de TEC y así como el desarrollo de la reconstitución in vitro de células T.

Usando este protocolo, un órgano timo fue retirado de un ratón adulto (Sección 2) y una suspensión de células del timo se preparó como se describe en la Sección 3. La suspensión celular obtenida constaba de timocitos, células estromales hematopoyéticas derivadas de las células del estroma y no hematopoyéticas. CD45 es un marcador pan-hematopoyético expresó en ambos timocitos y células estromales hematopoyéticas tales como macrófagos y células dendríticas. En contraste, los TEC no son de origen hematopoyético y no expres...

Aquí se describe un método eficiente para el aislamiento, identificación y purificación de ratón las células epiteliales del timo (TEC). El protocolo puede ser utilizado para estudios de la función del timo para el desarrollo normal de células T, la disfunción del timo, y la reconstitución de células T.

El aislamiento, la identificación y purificación de células epiteliales del timo murino

The thymus is a vital organ for T lymphocyte development. Of thymic stromal cells, thymic epithelial cells (TECs) are particularly crucial at multiple ...

El objetivo general de este procedimiento es aislar, identificar y purificar las células epiteliales tímicas o la tecnología. Esto se logra primero enzimáticamente, digiriendo y alterando mecánicamente el timo para disociar la tecnología en una suspensión de una sola célula. A continuación, la tecnología puede analizarse mediante citometría de flujo o enriquecerse mediante una estrategia de paneo.En última instancia, los subconjuntos epiteliales tímicos se pueden purificar mediante la clasificación de células activadas por fluorescencia. Este método puede ayudar a responder muchas preguntas clave en el campo del desarrollo de células T, como por ejemplo, ¿cómo promueven las células epiteliales tímicas la selección tímica? ¿Qué causa la disfunción tímica en animales envejecidos y cómo podemos lograr la reconstitución de las células T in vitro?Las principales ventajas de esta técnica son la alta recuperación de células germinales emmicas variables, el enriquecimiento imparcial de las células epiteliales emmicas y la alta pureza que se puede lograr en última instancia mediante la clasificación de células. Para aislar las células del estroma tímico, primero identifique el timo, que se encuentra justo debajo de las costillas y se ve como dos lóbulos blancos delgados que recubren el corazón. Luego, desconecte el tejido conectivo que rodea el timo y use pinzas dentadas curvas para tirar y quitar suavemente los lóbulos tímicos.Coloque los lóbulos en una placa de seis pocillos que contenga cinco mililitros de medio y recorte la grasa y el tejido conectivo circundantes. A continuación, transfiera los lóbulos recortados a un nuevo pocillo que contenga cinco mililitros de solución enzimática recién preparada y utilice unas tijeras finas para hacer pequeñas incisiones en el tejido. Coloque la placa en una incubadora a 37 grados centígrados.Después de 20 minutos, pipetee suavemente el tejido hacia arriba y hacia abajo varias veces con una pipeta de cinco mililitros para disociar la suspensión en una sola celda. Recoja la fracción sobrenadante en un tubo de 50 mililitros que contenga 10 mililitros de tampón rico en albúmina fría en hielo para neutralizar las enzimas. A continuación, añada 2,5 mililitros de solución enzimática al tejido restante.Incuba la placa durante 15 minutos. Después de eso, agite suavemente el tejido con una jeringa de tres mililitros equipada con una aguja de 18 genes para romper los agregados. A continuación, transfiera el al tubo de recolección.A continuación, añada 2,5 mililitros de solución enzimática al tejido restante. Incuba la placa durante 15 minutos. Después de la tercera incubación, repita la agitación mecánica con una aguja 20 5G.Después de incubar el tejido durante los últimos cinco a 10 minutos, transfiera el sobrenadante al tubo de recolección para la centrifugación y el fin de identificar la tecnología recuperada mediante citometría de flujo. Siguiendo los procedimientos estándar de tinción de anticuerpos, ejecute las muestras en un citómetro de flujo multiparamétrico y analice los datos utilizando el software de análisis de fax adecuado para enriquecer aún más la tecnología mediante el método de paneo. En primer lugar, incubar las células con el anticuerpo adecuado para el enriquecimiento. A continuación, agregue la suspensión de celdas a una placa de paneo precodificada y luego agite la placa e incube a temperatura ambiente.Después de 30 minutos, agite la placa vigorosamente y luego transfiera el sobrenadante a un tubo cónico. Enjuague la placa dos veces con agua fresca, media, acumulando los lavados en el tubo de recolección. Luego, después de girar las células, vuelva a suspender el pellet en cinco mililitros de medio fresco y transfiera la suspensión celular a una nueva placa de paneo, recogiendo las células después de girar e incubar como se acaba de demostrar para purificar aún más la tecnología enriquecida en sus subconjuntos de células tímicas.Después de marcar con los anticuerpos apropiados, clasifique la tecnología a través de una boquilla de 100 micrómetros mediante clasificación celular activada por fluorescencia, recolectando las células en un 30% de volumen por volumen FBS en medio. En esta estrategia representativa de compuerta para la identificación de la tecnología por citometría de flujo, se puede observar la expresión de epca, pero no de CD 45 por parte de la técnica. Por lo tanto, la tecnología se puede controlar de acuerdo con su expresión ep, camm y CD 45 la tecnología se compone de subconjuntos epiteliales corticales o CEC y medulares o mtech thymic.Estos subconjuntos se pueden distinguir por el anticuerpo vivo 51, que reconoce la G glutamil aminopeptidasa expresada por ctec y la lectina UEA uno, que se une a mtech tanto ctech como Mtech expresan MHC Clase dos en sus superficies. Aunque mtech se puede clasificar en poblaciones mtech baja y mtech alta, dependiendo de su nivel de expresión de MHC dos, se puede recuperar aproximadamente ocho veces más tech utilizando el protocolo basado en la enzima liasa recién demostrado en comparación con un protocolo con colagenasa y espacio de disco con aproximadamente nueve veces 10 a la quinta, capaz de recuperarse de un solo timo de ratón para disminuir el tiempo de clasificación y aumentar la viabilidad de la células estromales recuperadas. El paneo se puede utilizar, como se acaba de demostrar, para agotar los sitios de los timocitos en comparación con las células de timo preparadas completas.La proporción de tecnología aumenta de menos del 0,5% a más del 15% en la población de células postenriquecidas. Después del panoramizado, las proporciones de los subconjuntos tecnológicos no se alteran, lo que sugiere que ninguno de los subconjuntos se pierde selectivamente durante el panoramizado. En comparación con la muestra de enriquecimiento de acicalamiento, la tasa de recuperación de la tecnología es de aproximadamente el 85%Después de ver este video, debe tener una buena comprensión de cómo enriquecer las células germinales temáticas de más de por pánico, así como cómo identificar y purificar más subyentes epiteliales temicos mediante citometría de flujo.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Aislamiento de linfocitos utilizando el kit de Miltenyi MAC es una manera confiable para purificar las células de todo homogeneizados de tejido linfoide. Células purificadas utilizando el sistema de Miltenyi suelen ser ≥ 96% de pureza. Este sentido, demuestran las medidas adoptadas para aislar las células CD4 + T, uno de los kits que se ofrecen por Miltenyi.

Aislamiento de células T CD4 + de los ganglios linfáticos del ratón utilizando Miltenyi Purificación MACS

Este protocolo detalla un método para aislar células presentadoras de antígeno de timo humano a través de diferentes etapas de la digestión enzimática del tejido seguido por centrifugación de densidad de la suspensión de células individuales y la clasificación finalmente magnético y / o FACS de las poblaciones de células de interés.

Aislamiento de células dendríticas mieloides y células epiteliales de timo humano

El estudio de las células epiteliales tímicas medulares in vitro ha sido en gran medida infructuoso, ya que los sistemas de cultivo 2D actuales no imitan el escenario in vivo. El sistema de cultivo 3D descrito en este documento, un modelo de cultivo organotípico de piel modificada, ha demostrado ser superior en la recapitulación de la proliferación de mTEC, la diferenciación y el mantenimiento de la expresión génica promiscua.

3D organotípicos Co-cultura de apoyo medular tímica epitelial proliferación celular, la diferenciación y la Expresión Génica Promiscuo Modelo

Este informe proporciona una descripción detallada del trasplante de thymi murino de diferentes ratones donantes envejecidos bajo la cápsula renal de receptores de ratones inmunodeficientes. El objetivo de este enfoque es modelar el desarrollo de células T y los eventos de selección tímica in vivo.

Aislamiento y Trasplante de diferentes Aged murinos tímicos injertos.

Este artículo describe la metodología in vivo e in vitro para caracterizar los progenitores de sedimentación tímica mediante el análisis de la cinética de generación, fenotipo y número de su progenie de células T.

Caracterización de tímico Instalarse Progenitores en el embrión de ratón Uso<em&gt; En Vivo</em&gt; Y<em&gt; In Vitro</em&gt; Ensayos

Los linfocitos son los principales actores en las respuestas inmunitarias adaptativas. En este trabajo se presenta un protocolo de purificación de linfocitos para determinar las funciones fisiológicas de las moléculas deseadas en la activación de linfocitos in vitro e in vivo. Los procedimientos experimentales descritos son adecuados para comparar las capacidades funcionales entre linfocitos control y modificados genéticamente.

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Aislamiento del mesénquima intestinal murino que resulta en un alto rendimiento de telocitos

Este artículo describe un método para el aislamiento basado en perlas magnéticas de células endoteliales murinas de capilares linfáticos dérmicos. Las células endoteliales linfáticas aisladas se pueden utilizar para experimentos in vitro posteriores y análisis de expresión de proteínas.

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Aquí presentamos protocolos que permiten el aislamiento de células estromales de hueso murino, médula ósea, timo y tejido tímico humano compatible con multiómicas unicelulares.

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Describimos protocolos para la preparación de suspensión unicelular de células epiteliales tímicas de ratón y la tinción de moléculas intracelulares para el análisis de citometría de flujo.

Preparación de suspensión unicelular de células epiteliales tímicas de ratón y tinción de moléculas intracelulares para análisis citométrico de flujo

Aprenda a aislar, identificar y purificar células epiteliales del timo murino mediante digestión enzimática, citometría de flujo y clasificación celular. Este método permite estudiar el desarrollo de células T y la función tímica.

El aislamiento, la identificación y purificación de células epiteliales del timo murino

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