June 13th, 2025
Describimos un protocolo para un método de clonación de alto rendimiento, la clonación de lanzadera basada en CRISPR (clonación CRISPRshuttle), que permite la transferencia de fragmentos de ADN de interés entre vectores sin necesidad de amplificación por PCR de los fragmentos de ADN.
Describimos nuestro protocolo para un método de clonación de alto rendimiento, CRISPRshuttle. Lo que implica la transferencia de fragmentos de ADN diana entre vectores sin necesidad de amplificación por PCR de los fragmentos de ADN. Técnicas existentes como la infusión de puerta de enlace y la clonación de univectores, la amplificación por PCR. Este enfoque requiere procedimientos específicos de fragmentos, incluido el diseño primario y la validación de secreciones. Estas etiquetas requieren mucha mano de obra y mucho tiempo. La lanzadera CRISPR elimina la PCR mientras transfiere fragmentos de ADN objetivo entre vectores a reacciones secuenciales de tubo de ensayo. Este método supera la necesidad de manipulación específica de fragmentos y, por lo tanto, acelera la construcción de muestras.
[Narrador] Para comenzar, prepare una mezcla maestra para un número determinado de reacciones de digestión combinando los reactivos que se muestran en la pantalla. Coloque los tubos de 0,2 mililitros debidamente etiquetados en un bloque de enfriamiento de aluminio sobre hielo. Prepare la mezcla maestra para un número N de reacciones mezclando cantidades adecuadas de CAS9, sgRNA 10, tampón CAS9 y agua tratada con DECC. Mezcle bien la mezcla maestra y gírela. Alícuota de 3,75 microlitros de la mezcla maestra en cada tubo de reacción. Agregue 0,75 microlitros de plásmido PLX 304 ORF micromolar 0,03 a cada tubo mezclado bien e incube los tubos a 37 grados centígrados durante una hora. Prepare una mezcla maestra combinando 0,14 microlitros de pBIDC-UASC-pLXvect linealizado micromolar y 1,8 microlitros de mezcla maestra de ensamblaje Gibson. Mezcle bien la mezcla maestra y gírela. Ahora alícuota 1,94 microlitros de la mezcla maestra en cada tubo. Agregue 1,66 microlitros de plásmido escindido CAS9 en cada tubo. Mezclar bien e incubar a 50 grados centígrados durante una hora. Descongele las células bacterianas competentes en hielo. Alícuotas de 10 microlitros de las células descongeladas en cada tubo de 1,5 mililitros preenfriado. Mezcle suavemente 10 microlitros de las células competentes con un microlitro de producto de ensamblaje Gibson. Coloque los tubos en hielo durante 30 minutos. Aplique un choque térmico a los tubos a 42 grados centígrados durante un minuto y luego enfríe con hielo durante dos minutos. Agregue 100 microlitros de medio SOC precalentado en cada tubo y agite a 250 RPM durante una hora a 37 grados centígrados. Finalmente, coloque las células en placas de agar LB que contengan 15 microgramos por mililitro de cloranfenicol e incube durante la noche a 37 grados centígrados. Esta figura muestra los resultados representativos del análisis de restricción de plásmidos UAS-cDNA/ORF generados utilizando el sistema CRISPRshuttle. En este análisis, la digestión de restricción de 15 construcciones de UAS-ADNc / ORF con PVU2 reveló que todas las muestras exhibieron los patrones de fragmentos esperados en aproximadamente 1072 pares de bases y 1.820 pares de bases.
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Este artículo presenta un protocolo para un método de clonación de alto rendimiento conocido como clonación de lanzadera basada en CRISPR (clonación CRISPRshuttle). Esta técnica innovadora facilita la transferencia de fragmentos de ADN entre vectores sin la necesidad de amplificación por PCR.