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Article de méthode

Analyser la taille, la forme et la directionnalité des réseaux des Astrocytes induits

8.7K vues

DOI :

10.3791/58116

4 octobre 2018

Dans cet article

Résumé

Nous présentons ici un protocole afin d’évaluer l’organisation de réseaux astrocytaires. La méthode décrite minimise la partialité de fournir des mesures descriptives de ces réseaux tels que le nombre d’éléments, taille, zone et la position dans un noyau. Anisotropie est évaluée par une analyse vectorielle.

Résumé

Il est devenu de plus en plus évident que les astrocytes modulent la fonction neuronale non seulement au niveau synaptique et unicellulaires, mais aussi au niveau du réseau. Les astrocytes sont fortement reliés entre eux par l’intermédiaire de jonctions lacunaires et couplage par ces carrefours est dynamique et très réglementé. Un nouveau concept est que les fonctions astrocytaires sont spécialisées et adaptées aux fonctions du circuit neuronal auxquels ils sont associés. Par conséquent, méthodes pour mesurer les différents paramètres des réseaux astrocytaires sont nécessaires pour mieux décrire les règles relatives à leur communication et de couplage et de mieux comprendre leurs fonctions.

Ici, en utilisant le logiciel d’analyse de l’image (par exemple., ImageJFIJI), les auteurs décrivent une méthode pour analyser les images confocales de réseaux astrocytaires révélées par couplage colorant. Ces méthodes permettent 1) une détection automatisée et non biaisée des cellules marquées, 2) calcul de la taille du réseau, 3) le calcul de l’orientation préférentielle de colorant réparties au sein du réseau et 4) repositionnement du réseau dans la zone d’intérêt .

Cette analyse peut être utilisée pour caractériser les réseaux astrocytaires d’un secteur particulier, comparer les réseaux des différents domaines liés aux différentes fonctions ou comparer les réseaux obtenus dans des conditions différentes qui ont des effets différents sur le couplage. Ces observations peuvent conduire à des considérations fonctionnelles importantes. Par exemple, nous analysons les astrocytes réseaux du noyau trigéminal, où nous avons déjà montré que le couplage astrocytaires est essentiel pour la capacité des neurones à changer leurs habitudes de tir de tonique à la rupture rythmique1. En mesurant la taille, le confinement et l’orientation préférentielle des réseaux astrocytaires dans ce noyau, nous pouvons bâtir des hypothèses sur des domaines fonctionnels qu’elles circonscrivent. Plusieurs études suggèrent que plusieurs autres régions du cerveau, y compris le cortex de baril latérale supérieure et d’olive, glomérules olfactifs, noyaux sensoriels dans le thalamus et le cortex visuel, pour n’en nommer que quelques-uns, peuvent bénéficier d’une analyse similaire.

Introduction

De nombreuses études ont décrit comment le dialogue neuron-astrocyte à un niveau subcellulaire ou synaptic peut avoir des implications dans les fonctions neuronales et la transmission synaptique. Il est bien établi que les astrocytes sont sensibles aux entourant l’activité neuronale ; en fait, ils ont des récepteurs de nombreux neurotransmetteurs dont glutamate, GABA, acétylcholine et ATP (voir commentaires déjà publiés,2,3,4). En retour, astrocytaires traite les deux éléments synaptiques forte et influence l’activité neuronale là que sur les sites extrasynaptic par régulatio....

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Protocole

Toutes les procédures demeure par les règles d’instituts de recherche en santé du Canada et ont été approuvés par le Comité de l’utilisation et de soins aux animaux de l’Université de Montréal.

1. préparation des coupes de cerveau de Rat

  1. Préparer 1 L d’une solution de saccharose (tableau 1) et 1 L de liquide standard de cérébral-moelle artificiel (FSCA) (tableau 2).
  2. Bulle la solution saccharose avec un mélange de 95 % d’O2 et 5 % CO2 (carbogen) pendant 30 min avant de le placer à-80 ° C pendant environ 30 min, jusqu'à ce que la solution est froid mais pas entièremen....

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Résultats

Couplage entre les cellules du cerveau n’est pas statique mais plutôt dynamiquement réglementé par de nombreux facteurs. Les méthodes décrites ont été mis au point pour analyser les réseaux astrocytaires révélés dans des conditions différentes et à comprendre leur organisation en NVsnpr. Ces résultats ont déjà été publiés1. Nous avons effectué la biocytine remplissage des astrocytes unique dans la partie dorsale de la NVsnpr dans trois conditions différentes : au r.......

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Discussion

Un certain nombre de méthodes électrophysiologiques existe pour évaluer fonctionnelle de couplage entre astrocytes23,24. Cependant, ces méthodes ne fournissent pas d’informations sur la disposition anatomique des réseaux astrocytaires. Un certain nombre d’études ont déjà montré que « colorant ou traceur-couplage », comme le cas ici, se produit seulement en une fraction de couplé des cellules qui sont détectés par des méthodes électrophysiologiques

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail est financé par les instituts de recherche en santé, nombre de subvention : 14392.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
NaClFisher ChemicalsS671-3
KClFisher ChemicalsP217-500
KH2PO4Fisher ChemicalsP285-500
MgSO4Fisher ChemicalsM65-500
NaHCO3Fisher ChemicalsS233-500
C6H12O6 Dextrose anhydreFisher ChemicalsD16-500
CaCl2 dihydratéSigmaC70-500
SaccharoseSigmaS9378
Acide d-gluconique sel de potassiumSigmaG45001
MgCl2 anhydreSigmaM8266
HEPESSigmaH3375
EGTASigmaE4378
ATPTris SaltSigmaA9062
GTPTris SaltSigmaG9002
BiocytineSigmaB4261
Carbenoxolone disodium saltSigmaC4790
complexe avidine-biotine : kit ABCVestor laboratoriesPK-4000
Streptavidine-alexa 594Sondes moléculairesS11227
TritonFisher ChemicalsBP151-500
XyleneFisher ChemicalsX5-1
Milieu d’enrobage aqueux 1 : Fluoromount-GSouthernBiotech0100-01
Support de montage en résine synthétique à base de Toluen : PermountFisher ChemicalsSP15-100
Banc de séchagede lames Fisherbrand11-474-470
VibratomeLeicaVT 1000S
Lame de microscope ColorFrostFisherbrand12-550-413
PFAFisherchemicals04042-500
Olympus FluoView FV 1000 Microscope confocalOlympus
LUMPLFLN40XW
20XOlympusXLUMPLFL20XW
4XXLFLUOR4X
Micropipette extracteurSutter InstrumentP97
MicromanipulateurSutter InstrumentMP 225
Caméra CCDSonyCX-ST50
Moniteur noir et blancSonySSM-125
DigidataMolecular devices1322A
Patch ClampAxon instrumentMulitclamp 700A
Logiciel d’acquisition d’électrophysiologieDispositifs moléculairespClamp 8
Logiciel d’analyse électrophysiologiqueDispositifs moléculairesClampfit 8
Logiciel d’analyse d’imagerieImageJFIJILogiciel open source. Version FIJI avec pack enfichable.
Éditeur d’images vectoriellesAdobeIllustrator CS4
Application de feuille de calculMicrosoft OfficeExcel 2010
Verre de protection de microscope Fisherbrand 12-544A 40X Lentille immergée dans l’eau Olympus amplificateur

Références

  1. Condamine, S., Lavoie, R., Verdier, D., Kolta, A. Functional rhythmogenic domains defined by astrocytic networks in the trigeminal main sensory nucleus. Glia. 66 (2), 311-326 (2018).
  2. Verkhratsky, A., Orkand, R. K., Kettenmann, H. Glial calcium: homeostasis and sign....

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