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Article de méthode

Génération des cellules de knock-out primaire et élargi NK humaine à l’aide de Cas9 ribonucléoprotéines

11.3K vues

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DOI :

10.3791/58237

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14 juin 2018

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Dans cet article

Résumé

Nous présentons ici un protocole visant à modifier génétiquement les cellules primaires ou agrandis humaines tueuses naturelles (NK) à l’aide de Cas9 ribonucléoprotéines (Cas9/RNP). En utilisant ce protocole, nous avons généré des cellules NK humaines déficients pour transformer le récepteur du facteur de croissance – b 2 (TGFBR2) et de l’hypoxanthine phosphoribosyltransferase 1 (HPRT1).

Résumé

CRISPR/Cas9 technologie s’accélère génie de génome dans plusieurs types de cellules, mais jusqu'à présent, livraison de gène et gène stable modification ont été difficiles dans les cellules NK primaires. Par exemple, livraison de transgene en utilisant des gènes ou retroviral transduction a entraîné un rendement limité de cellules NK par génie génétique en raison de l’apoptose des cellules NK associée à procédure substantiel. Nous décrivons ici une méthode sans ADN pour l’édition de génome de cellules NK primaires et élargis humaines utilisant des complexes ribonucléoprotéiques Cas9 (Cas9/RNP). Cette méthode a permis knockout efficace des TGFBR2 et HPRT1 de gènes dans les cellules NK. Les données de RT-PCR ont montré une diminution significative du niveau d’expression de gène, et un essai de cytotoxicité d’un produit de cellules représentant a suggéré que les cellules NK RNP modifiés sont devenus moins sensibles aux TGFβ. Des cellules génétiquement modifiées pourraient être élargi post-électroporation de stimulation avec irradiés mbIL21 exprimant des cellules nourricières.

Introduction

Immunothérapie contre le cancer a progressé ces dernières années. Les cellules de T de récepteurs (voiture) antigène chimérique génétiquement modifiés sont un excellent exemple de cellules immunitaires machinés, déployé en immunothérapie contre le cancer. Ces cellules ont été récemment approuvés par la FDA pour le traitement contre CD19 + B des cellules malignes, mais succès a été jusqu'à présent limitée aux maladies portant quelques antigènes targetable et ciblant ces répertoires antigéniques limitées est sujette à l’échec par évasion immunitaire. En outre, les cellules T de voiture ont surtout portés sur l’utilisation de cellules autologues de T en raison du risque ....

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Protocole

Manteaux de buffy donneur sain ont été obtenues comme matériel de base de la Central Ohio région Croix Rouge américaine. Cette recherche a été jugée recherche exonéré par l’institutionnel Review Board de dans tout le pays hôpital pour enfants.

1. expansion et Purification de cellules NK humaines

  1. Isoler les PBMC du12de la couche leuco-plaquettaire.
    1. 35 mL d’échantillon de la couche leuco-plaquettaire sur 15 mL de Ficoll-Paque de couche.
    2. Centrifuger à 400 x g pendant 20 minutes sans frein et recueillir le PBMC de l’interface.
    3. Laver les PBMC récupérés trois fois en ajoutant au moin....

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Résultats

Efficacité d’électroporation

Pour optimiser l’électroporation de Cas9/RNP, nous avons testé 16 programmes différents avec transduction de GFP ne pointeraient siRNA et plasmides d’ADN dans les cellules NK. Dosage de cytométrie en flux ont montré que le fr-138 le plus fort pourcentage de viabilité et transduction efficacité des cellules (35 % GFP positive des cellules vivantes) pour les deux particules (

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Discussion

Modification de l’ADN-dépendante des cellules NK a été difficile de4,9. Nous, donc, introduit directement un complexe synthétique préformé ribonucléoprotéines (RNP) et Cas9 protéine comme la protéine purifiée dans primaire et élargi de cellules NK8. Cette méthode nous a permis d’éliminer le plafonnement, équeutage, et autres processus de transcriptionnelles et translationnelles a commencé par l’ARN polymérase II, ce qui peut provoquer l’ap.......

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Déclarations de divulgation

DAL sert/a servi comme consultant pour Courier Therapeutics, Obsidian Therapeutics, Intellia Therapeutics, Merck Research Laboratories et Miltenyi Biotec et a équité/Leadership en CytoSen thérapeutique.

Remerciements

Nous reconnaissons Brian Tullius pour son aide dans l’édition du manuscrit.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
RosetteSep&commerce ; Cocktail d’enrichissement des cellules NK humainesSTEMCELL Technologies15065La RosetteSep&trade ; Le cocktail d’enrichissement en cellules NK humaines est conçu pour isoler les cellules NK du sang total par sélection négative.
Ficoll-Paque® ; PLUSGE Healthcare - Sciences de la vie17-1440-02
Alt-R® ; Lestechnologies intégrées d’ADN1072532TracrRNA qui contient des modifications chimiques exclusives conférant une résistance accrue aux nucléases. S’hybride en ARNcr pour activer l’enzyme Cas9
Alt-R® ; CRISPR-Cas9 crRNA IntegratedDNA TechnologiesProduit synthétiquement sous forme de Alt-R® ; L’ARNcr CRISPR-Cas9, basé sur la séquence de l’ARNg conçu ciblant le gène de l’intérêt
Alt-R® ; Technologiesd’ADN intégrées1075931Chaque kit contient des commandes d’endonucléase T7EI, de tampon de réaction T7EI et de contrôle de test T7EI.
Platine® ; Taq ADN polymérase haute fidélitéInvitrogen11304-011
4D-Nucleofector&commerce ; SystèmeLonzaAAF-1002B
Protéine IL-2 recombinante humaineNovartis65483-0116-07
P3 Cellule primaire 4D-Nucleofector&trade ; X KitLonzaV4XP-3032Contient pmaxGFP&trade ; Vecteur, Nucleofector&Trade ; Solution, Supplément, Nucléocuvette 16 puits&Trade ; Bandelettes
non ciblées : siRNA personnalisé, Standard 0.05 2mol ON-TARGETplusDharmaconCTM-360019
Alt-R® ; S.p. Cas9 Nucléase 3NLSIntegrated DNA Technologies1074181Cas9 Nucléase
DNeasy® ; Sang & Manuel des tissusQiagen69504
RNeasy Mini KitQiagen74104
Calcein AMThermoFisherC3099
TGF&beta ;Biolegend580706
Alt-R® ; Kit de contrôle CRISPR-Cas9,technologies d’ADN humain intégrées1072554Comprend l’ARNtracr, l’ARNcr à contrôle positif HPRT, l’ARNcr#1 à contrôle négatif, le mélange d’amorces HPRT et le tampon duplex sans nucléase.
IDTE pH 7.5 (solution 1X TE)Technologies d’ADN intégrées11-01-02-02
Alt-R® ; Amplificateur d’électroporationCas9 Technologies d’ADN intégrées1075915Amplificateur d’électroporation Cas9
CRISPR-Cas9 tracrRNA

Références

  1. Guven, H., et al. Efficient gene transfer into primary human natural killer cells by retroviral transduction. Experimental Hematology. 33 (11), 1320-1328 (2005).
  2. Alici, E., Sutlu, T., Sirac Dilber, M. Retroviral gene transfer i....

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Réimpressions et autorisations

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