Name: Comparative In vivo Etude de gp96 adjuvanticité de la grenouille Xenopus laevis /em (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-09-16T17:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 20 s
Description: Découvrez l'étude de la protéine gp96 pour activer les réponses des cellules T CD8 chez Xenopus laevis. Cette méthode permet d'évaluer la présentation croisée des antigènes tumoraux et cutanés.

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L&#39;élevage d&#39;experts fournis par Tina Martin et David Albright est grandement apprécié. Cette recherche a été financée par des subventions T32-AI-07285 (HN), NIH R25 2GM064133 (TCL), 1R03-HD061671-01, R24-AI-059830-06 du NIH.

1. Animaux X. laevis x X. Gilli hybrides LG-6 et LG-15 clones isogenetic 1 sont de notre colonie de reproduction à l'Université de Rochester (http://www.urmc.rochester.edu/smd/mbi/xenopus/index.htm). LG et LG-6-15 partagent le même haplotype CMH hétérozygote (A / C) mais diffèrent au mineur d'histocompatibilité (H) loci. La descendance de ces clones sont produits par gynogenèse, dans lequel les œufs diploïdes produites par la femelle sont activés par les UV-irradiés sperme (aucune contribution d'ADN pour la descendance). L'utilisation de gants est facultatif. Certaines personnes préfèrent ne pas les porter parce qu'il est plus difficile à manipuler les grenouilles (glissante) et en fait il semble rendre les grenouilles inconfortable. 2. Purification de gp96 du 15 / 0 tumorale (tumeur exprime à la fois et Minor H-Ags) Gp96 purification a été décrit précédemment 2, 3. En bref, gp96 est purifiée par fractionnement au sulfate d'ammonium à 50-70%, suivie par conA-sépharose et DEAE chromatographie. Environ 20-50 mg de protéine peut être obtenue par 1 ml de tissu tumoral. Pureté de la préparation est déterminé par SDS-PAGE et coloration ruban. 3. Élicitation et la récolte des leucocytes péritonéale (PL) de mineurs H-Ag-disparates LG-6 Grenouilles <ol><li> Cultiver une nuit de 25 ml E. La culture Coli dans un tube conique de 50 ml à 37 ° C avec agitation. </li><li> Le jour suivant, la chaleur tue les bactéries en la faisant bouillir pendant 1 heure. </li><li> Centrifuger la chaleur a tué E. Coli pendant 15 min à 2000 rpm (1500 g) à 4 ° C. </li><li> Retirer le surnageant et remettre le culot bactérien en 1 / 10 ème du volume de culture d'origine (2,5 ml) dans APBS. A ce point la culture bactérienne est prêt à être utilisé et doit être utilisé dans les 24 heures. </li><li> Injecter par voie intrapéritonéale (IP) 200 (pour une grenouille 2 pouces) ou 300 ul (pour une grenouille 3 pouces) de l'tuées par la chaleur préparation bactérienne par grenouille en utilisant une jauge de 25 5 / 8 aiguille. </li><li> Trois jours après l'injection PL sont récoltés par lavage intrapéritonéale. </li><li> Avant la récolte PL, les grenouilles adultes sont anesthésiés par immersion dans une solution aqueuse à 0,1% du méthane sulfonate tricaïne (TMS, MS-222) tamponnée avec du bicarbonate de sodium pour 5 min jusqu'à ce que tout mouvement cesse (la durée dépend de la taille et l'âge). Animaux réveille dans les 10-20 min après le traitement. </li><li> Désinfecter l'abdomen de la grenouille avec une petite quantité d'éthanol à 70%. </li><li> Injecter 5 ml (pour une grenouille 2 po) ou 10 ml (pour une grenouille 3 pouces) de APBS stériles pré-chauffé à température ambiante dans la cavité péritonéale à l'aide d'une jauge 18 1 ½ aiguille. Retirez l'aiguille et masser doucement la grenouille pendant une minute pour s'assurer que le tampon injecté s'équilibre avec le liquide dans la cavité du corps. </li><li> Utilisez un nouveau calibre 18 1 ½ aiguille sans seringue pour recueillir le liquide péritonéal qui va goutte à goutte de l'arrière de l'aiguille dans un récipient propre de 50 ml tube conique. Assurez-vous de récupérer autant du volume initial injecté que possible. Soyez prudent pour éviter les vaisseaux sanguins dans la zone centrale de la région abdominale. </li><li> Une fois que les MDD sont récoltées mettre la grenouille dans un récipient avec de l'eau peu profonde jusqu'à ce qu'il soit éveillé à quel point il peut être remis dans sa cage. </li></ol> 4. Transfert adoptif de pulsation et de Lg-6 Pls Into Naïve Lg-6 récipiendaires <ol><li> Lavez le PLS fois avec APBS froide et les centrifuger à 1000 rpm (750 g) pendant 10 min à 4 ° C. </li><li> Retirer le surnageant et remettre le PLS dans APBS. </li><li> Impulsion du PLS avec gp96 à une concentration de 1 ug gp96 par 5 x 10 5 MDD. </li><li> Une fois que la quantité appropriée de gp96 est ajouté à la PLS, les mélanger par pipetage et incuber sur de la glace pendant 1 heure. </li><li> Centrifuger les cellules soit à 1000 rpm pendant 10 min à 4 ° C ou à 14 000 rpm pendant 1 min pour éliminer toute Unbound gp96. </li><li> Lavez le PLS 3X avec APBS froide pour s'assurer qu'il n'ya pas résiduelle gp96 gauche. </li><li> Resuspendre le PLS pulsé à une concentration de 5 x 10 5 PL par 300 ul. </li><li> Adoptive transfert de PL par injection ip à l'aide de calibre 25 5 / 8 aiguille. Injecter 300 ul des MDD pulsé (5 x 10 5 cellules) par animal. </li><li> Les grenouilles ont besoin d'être amorcée au moins 3 jours avant de continuer avec greffe de peau ou des expériences défi tumeur. </li></ol> 5. Assay Skin Graft Rejet de greffe de peau est un test bien établi chez Xenopus 4, 5, 6. Chez le xénope, un destinataire rejette la peau des bailleurs de fonds affichant 1 ou 2 inadéquation haplotype CMH au sein de 18-22 jours à 21-22 ° C. En revanche, les greffes de peau entre LG et LG-6-15 clones qui ne diffèrent que par un mineur H-Ags sont rejetés plus lentement (plus que 30 jours). Toutefois, ce rejet est accéléré chez les receveurs de that ont été amorcées contre les donneurs mineurs H-Ags soit par une greffe de peau précédentes ou par immunisation avec gp96 purifiée à partir du donneur. Pas de rejet à tout produit lorsque le donneur et le receveur sont génétiquement identiques (par exemple, les animaux clonés ou totalement consanguins). Par conséquent, cette technique simple est très puissante pour caractériser in vivo les réponses immunitaires induites par gp96. <ol><li> Anesthetize grenouille donateurs comme décrit dans 3.7. Remarque: Seul un minimum de précautions doivent être prises depuis Xenopus produire de puissants peptides anti-microbiens (par exemple, magainine) dans la peau qui évite la nécessité d'asepsie totale. En fait, le traitement de la grenouille avec un désinfectant serait néfaste pour la peau. En outre, les Xenopus n'ont pas de pathogènes qui peuvent être transférées aux humains. Par conséquent, l'utilisation de gants est facultatif. Cependant, tous les instruments de dissection utilisés doivent être autoclavés et toutes les solutions doivent être stériles. </li><li> Couper et enlever une petite (20 mm x 5 mm) morceau de peau ventrale (peau de l'abdomen qui apparaît argenté dû à la présence de cellules pigmentées irridophore) d'une grenouille donateurs LG-15 à l'aide des ciseaux. </li><li> Placez la peau dans un APBS PetriDish contenant et le garder sur la glace. Manipuler les tissus de la peau très doucement, éviter le tenant entre les deux pinces. </li><li> En utilisant une lame de rasoir ou des ciseaux couper greffes individuelles en morceaux de 5 mm x 5 mm. Gardez les fragments dans APBS sur la glace. </li><li> À ce stade de la grenouille donneur est placée dans un récipient avec de l'eau peu profonde jusqu'à ce qu'il soit éveillé et il est alors placé dans de l'eau contenant des antibiotiques (Penstrep à une concentration de 5 mg / L). La grenouille est conservé dans de l'eau avec des antibiotiques pendant deux jours à quel point il est retourné dans l'eau normale. La petite plaie à l'endroit où la peau a été retirée n'a pas besoin d'être cousu et guérit en une semaine. </li><li> Anesthetize le destinataire LG-6 grenouille. </li><li> Faire une petite incision sur la dorsale (dos) la peau du destinataire et de l'insertion du greffon 5 mm x 5 mm sous la peau avec le côté argenté en place. Soyez prudent de ne pas introduire grosses bulles d'air sous la peau car cela peut conduire à des déplacements ou même la perte du greffon. </li><li> Assurez-vous noter les inscriptions à ciseaux et des pinces sur les greffons, car ceux qui ne sont pas comptés comme un rejet du greffon une fois que la notation commence. </li><li> 24 heures plus tard une partie de la peau de l'hôte superposant doit être retiré de la greffe. </li><li> Anesthetize le destinataire LG-6 grenouille. Manipuler l'animal tel que décrit en 5.1. </li><li> Avec des ciseaux autoclavé découper une fenêtre autour de la greffe de sorte que la greffe peut être librement visualisées. Soyez prudent de ne pas toucher la peau donateur ou à provoquer le saignement. Laissez la grenouille de récupérer comme décrit en 5.5. </li><li> Commencer à marquer la greffe d'emblée en prenant un croquis. Rejet de greffe de la peau est déterminée par le pour cent de la destruction de la irridophores sur la peau greffée. </li><li> Les greffons doivent être vérifiés tous les 2-3 jours, mais les animaux n'ont pas besoin d'être anesthésié pour cela. Pour visualiser les greffes, les grenouilles ont besoin d'être placé dans un PetriDish sous un microscope à dissection. </li></ol> 6. Whole-Mont Immunohistologie du peau transplantée Grenouille toute monture immunohistologie a été décrit précédemment 6. En bref, la grenouille est anesthésié et placé sous le microscope sur une serviette en papier stériles pré-mouillée avec de l'eau grenouille (la zone de travail est également de manière aseptique). La peau est ensuite transplanté récolté avec une petite quantité de peau environnante hôte et il est coloré avec des anticorps similaire à coloration des cellules pour l'analyse de cytométrie en flux 6. Instruments à l'autoclave et tampons stériles doivent être utilisés. Après coloration de la peau est placée sur une lame de microscope et délicatement pressé avec une lamelle. À ce stade de la peau peuvent être visualisées en utilisant un microscope à fluorescence pour les différentes populations de cellules qui ont infiltré la greffe. Après la procédure de la grenouille est conservé dans de l'eau avec des antibiotiques tels que décrits dans la section 5.5. et est retourné dans l'eau normale. La petite blessure à gauche où la peau a été enlevée guérit en une semaine. 7. Caractérisation des leucocytes du sang <ol><li> Avant de retirer le sang de la grenouille, on a besoin pour préparer des «aiguilles de verre" en tirant stériles Pipettes Pasteur au cours de la flamme. L'extrémité de la pipette fines est aiguisée sous la loupe binoculaire. La pipette est alors relié à un tube en plastique d'aspiration. Tous les instruments tels que les pinces et de ciseaux doivent être autoclavés avant usage. </li><li> Préparez aussi glacée 10 ml de solution d'héparine APBS et en ajoutant 50 unités d'héparine par 1 mL d'APBS. Conserver la solution sur la glace. Toutes les solutions utilisées doivent être stériles. </li><li> Anesthetize grenouille comme décrit dans 3.7, et suivez les mêmes procédures de manipulation des animaux tels que décrits au paragraphe 5.1. . </li><li> Coupez la peau au-dessus des pieds postérieurs à exposerla veine dorsale du tarse. </li><li> Remplir la pipette Pasteur avec 1-2 ml de solution d'héparine APBS +. </li><li> Insérez le «aiguille de verre" dans la veine et commencer à recueillir le sang par aspiration lentement avec la bouche. Il est important d'avoir APBS solution + héparine dans le «aiguille de verre" car cela éviter la coagulation du sang et de colmatage de la pointe de l'aiguille. </li><li> 1 à 2 mL de sang peuvent être obtenues d'une grenouille de taille moyenne. </li><li> La petite incision sur la jambe de la grenouille n'a pas besoin d'être cousu et la blessure guérit en une semaine. </li><li> Centrifuger le sang à 1000 rpm pendant 10 min à 4 ° C. </li><li> Enlever le surnageant et laver les cellules 1X avec 10 mL d'APBS froid. </li><li> Recouvrir avec 2 ml de sang (1-5 x 10 6 cellules) sur 1 ml de Ficoll Histopaque 1,077 (Sigma) préchauffé à la température ambiante afin de séparer les leucocytes du sang à partir des cellules rouges du sang. </li><li> Centrifuger 20 min à 1000 rpm à température ambiante, sans frein, et recueillir ensuite la bande des leucocytes. </li><li> Laver les cellules 2X avec APBS par centrifugation à 1400 rpm pendant 10 min à 4 ° C pour éliminer l'ficoll résiduelle. </li><li> À ce stade, les cellules sont prêtes à être colorées avec des anticorps pour l'analyse de cytométrie en flux, ou pour être utiliser pour des essais en culture in vitro. </li></ol> 8. Tumeur Assay transplantation <ol><li> Environ une semaine avant le dégel expérimentation sur un nouveau lot de cellules 15 / 0 de la tumeur et de s'assurer que les cellules commencent à se développer ainsi. Le milieu de culture est succinctement décrite dans la section suivante et de façon plus détaillée dans 3. </li><li> Développer les cellules 15 / 0 tumeur. </li><li> Le jour de l'expérience, un comptage des cellules et détermine la mort cellulaire par exclusion du bleu trypan. La mort cellulaire doit être inférieure à 5%. Laver les cellules 1X dans APBS froid, et centrifuger à 1000 rpm à 4 ° C pendant 10 min. </li><li> Resuspendre les cellules tumorales dans le milieu de culture à une densité de 5 x 10 5 15 / 0 300 cellules par mL. </li><li> Transplant 5 x 10 5 cellules dans 300 ul par volume de grenouille par injection sous-cutanée à l'aide d'une jauge 25 5 / 8 aiguille sur un côté de la dorsale (dos) côté de l'animal. </li><li> La croissance tumorale commencera dans les 2-3 semaines après l'épreuve tumeur. L'apparition de la tumeur primitive doit être noté et le volume de la tumeur a besoin d'être enregistrés tous les 2-3 jours. Le volume des tumeurs (hauteur x longueur x largeur) est mesurée à l'aide des étriers. </li><li> Une fois que la tumeur se développe à 3.500 mm 3 ou la grenouille commence à chercher léthargique, il doit être euthanasié pour éviter la gêne. </li></ol> 9. Réactifs nécessaires: <ul><li> Amphibian tampon phosphate salin (APBS): 6,6 g / L de NaCl, 1,15 g / L de Na 2 HPO 4, 0,2 g / L KH 2 PO. pH à 7,5 à l'aide de NaOH 10N et stérilisé par filtration à travers filtre de 0,2 um. </li><li> Méthanesulfonate de tricaïne (TMS, MS-222) (Croissant recherche CAS # 886-86-2 produits chimiques). </li><li> Le bicarbonate de sodium (Fisher Scientific S-233-500). </li><li> Histopaque-1077 (Sigma-Aldrich 10771-100 ml) </li><li> Sel de sodium d'héparine (Sigma-Aldrich H3149-50KU) </li><li> Milieu de culture pour Xenopus 15 / 0 tumeurs [voir 3 pour plus de détails]: 1 L de milieu DMEM Iscove basale (Gibco Invitrogen-11965) avec 10 mL d'insuline, 10 ml non acides aminés essentiels, 10 ml de pénicilline-streptomycine; 10 ug / ml de kanamycine; 3 mL de Primatone (Sheffield Products Division), 1 mL de β2-mercaptoéthanol et 3,02 g de NaHCO 3 dans l'eau (pH 7,0). Ce milieu est dilué à l'osmolarité des amphibiens en ajoutant 30% d'eau bidistillée, et supplémenté avec 5% de sérum de veau fœtal, superantant 20% d'une A6 reins Xenopus lignée cellulaire, et 0,25% de la normale Xenopus sérum. </li></ul> 10. Les résultats représentatifs <img src="/files/ftp_upload/2026/2026fig1.jpg" alt="Figure 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1"> Figure 1. Stéréomicroscopique analyse du rejet de greffe de peau 12 jours après la transplantation. LG-6 grenouille clonée a reçu une greffe de peau provenant soit (A) un MHC-identiques LG-6 (ne montre aucun rejet) ou (B) d'un donneur MHC-disparates consanguine (80% de rejet). Les flèches montrent des cellules pigmentées iridophore argentée marquage en bonne santé (non-rejet) greffé des tissus. (*) Marque de pince pas due à un rejet. <img src="/files/ftp_upload/2026/2026fig2.jpg" alt="Figure 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 2"> Figure 2. Gp96 facilite la présentation croisée d'antigènes tumoraux chez le Xénope. LG PL-15 (5 x 10 5) ont été puisées pendant 1 h sur la glace, soit avec APBS (contrôle négatif), 1 ug de recombinaison gp96 purifié à partir d'un E. G la culture Coli, ou 1 ou 0.5 de gp96 purifiée à partir de 15 / 0 tissu tumoral. Après 3 lavages, les cellules ont été transférées dans adoptive receveurs adultes LG-15 (1 x 10 6 / personne). Trois jours plus tard, en direct 15 / 0 cellules tumorales (5 x 10 5) ont ététransplantés par injection sous-cutanée. Chaque courbe représente la cinétique de croissance tumorale chez une grenouille. Défi jours après lorsque les tumeurs ont été suivis première apparition, et la taille des tumeurs a été déterminé périodiquement avec un (longueur x largeur x épaisseur) étrier.

<ol><li>Kobel, H. R., Pasquier, D. u, L, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hyperdiploid+species+hybrids+for+gene+mapping+in+Xenopus%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Hyperdiploid species hybrids for gene mapping in Xenopus.</a> Nature. 279, 157-158 (1979).</li>
<li>Robert, J., Menoret, A., Basu, S., Cohen, N., Srivastava, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phylogenetic+conservation+of+the+molecular+and+immunological+properties+of+the+chaperones+gp96+and+hsp70%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Phylogenetic conservation of the molecular and immunological properties of the chaperones gp96 and hsp70.</a> Eur J Immunol. 31, 186-195 (2001).</li>
<li>Robert, J., Gantress, J., Cohen, N., Maniero, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Xenopus+as+an+experimental+model+for+studying+evolution+of+hsp--immune+system+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Xenopus as an experimental model for studying evolution of hsp--immune system interactions.</a> Methods. 32, 42-53 (2004).</li>
<li>Chardonnens, X., Pasquier, D. u, L, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+skin+allograft+tolerance+during+metamorphosis+of+the+toad+Xenopus+laevis%3A+a+possible+model+for+studying+generation+of+self+tolerance+to+histocompatibility+antigens%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Induction of skin allograft tolerance during metamorphosis of the toad Xenopus laevis: a possible model for studying generation of self tolerance to histocompatibility antigens.</a> Eur J Immunol. 3, 569-573 (1973).</li>
<li>Du Pasquier, L., Bernard, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Active+suppression+of+the+allogeneic+histocompatibility+reactions+during+the+metamorphosis+of+the+clawed+toad+Xenopus%5BTitle%5D)+AND+%22Differentiation%22%5BJournal%5D)">Active suppression of the allogeneic histocompatibility reactions during the metamorphosis of the clawed toad Xenopus.</a> Differentiation. 16, 1-7 (1980).</li>
<li>Ramanayake, T., Simon, D. A., Frelinger, J. G., Lord, E. M., Robert, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+study+of+T-cell+responses+to+skin+alloantigens+in+Xenopus+using+a+novel+whole-mount+immunohistology+method%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">In vivo study of T-cell responses to skin alloantigens in Xenopus using a novel whole-mount immunohistology method.</a> Transplantation. 83, 159-166 (2007).</li>
<li>Robert, J., Ramanayake, T., Maniero, G. D., Morales, H., Chida, A. S., S, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phylogenetic+conservation+of+glycoprotein+96+ability+to+interact+with+CD91+and+facilitate+antigen+cross-presentation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Phylogenetic conservation of glycoprotein 96 ability to interact with CD91 and facilitate antigen cross-presentation.</a> J Immunol. 180, 3176-3182 (2008).</li>
<li>Robert, J., Gantress, J., Rau, L., Bell, A., Cohen, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minor+histocompatibility+antigen-specific+MHC-restricted+CD8+T+cell+responses+elicited+by+heat+shock+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Minor histocompatibility antigen-specific MHC-restricted CD8 T cell responses elicited by heat shock proteins.</a> J Immunol. 168, 1697-1703 (2002).</li>
<li>Morales, H., Robert, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+and+in+vitro+techniques+for+comparative+study+of+antiviral+T-cell+responses+in+the+amphibian+Xenopus%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Proced+Online%22%5BJournal%5D)">In vivo and in vitro techniques for comparative study of antiviral T-cell responses in the amphibian Xenopus.</a> Biol Proced Online. 10, 1-8 (2008).</li>
<li>Maniero, G. D., Robert, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phylogenetic+conservation+of+gp96-mediated+antigen-specific+cellular+immunity%3A+new+evidence+from+adoptive+cell+transfer+in+xenopus%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Phylogenetic conservation of gp96-mediated antigen-specific cellular immunity: new evidence from adoptive cell transfer in xenopus.</a> Transplantation. 78, 1415-1421 (2004).</li>
</ol>

Les amphibiens Xenopus est unique polyvalent non mammifères modèle pour étudier l&#39;immunité. Son utilisation intensive dans la recherche biomédicale et immunologiques a donné de nombreux outils de recherche importants tels que les clones CMH définies LG et LG-6-15 ainsi que différentes lignées de cellules et d&#39;anticorps monoclonaux. Grâce à ces outils, nous avons établi différentes in vitro et in vivo pour étudier la capacité des protéines de choc thermique tels que gp96 de médiation pu...

<table><tbody><tr><td>&lt;fort&gt;Réactifs nécessaires :&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solution saline tamponnée au phosphate pour amphibiens (APBS) : </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaCl, 1,15 g/L </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Na&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;HPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;, 0,2 g/L </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>KH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaOH 10 N </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tricaine méthanesulfonate (TMS, MS-222) </td><td>Crescent Research Chemicals</td><td>CAS n° 886-86-2</td><td></td></tr><tr><td>Bicarbonate de sodium </td><td>Fisher Scientific</td><td>S-233-500</td><td></td></tr><tr><td>Histopaque-1077</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>10771</td><td>100 ml</td></tr><tr><td>Héparine, sel sodique </td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3149-50KU</td><td></td></tr><tr><td>Milieu de culture pour les tumeurs Xenopus 15/0 [voir 3 pour plus de détails] :</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Milieu basal Iscove DMEM</td><td>GIBCO, par Life Technologies</td><td>11965</td><td></td></tr><tr><td>Insuline</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Acides aminés non essentiels</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pénicilline-streptomycine </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kanamycine</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Primatone</td><td>Division des produits Sheffield</td><td></td><td></td></tr><tr><td>&amp;#946;2-mercaptoéthanol&amp;#8211;éthanol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3 </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>30 % d'eau distillée doublement </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5 % de sérum de veau fœtal</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>20 % de surnageant provenant d'une lignée cellulaire de rein de Xenopus, A6 </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,25 % de sérum Xenopus normal</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&lt;fort&gt;Matériaux et équipement :&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubes coniques de centrifugation de 50 et 15 ml (stériles)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Aiguilles stériles Precision Glide, jauge 25, 5/8 pouce</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>18 gauge 1&amp;frac12; Aiguilles stériles Precision Glide</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Seringue stérile de 1 ml à embout lisse pour tuberculine</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Seringue stérile de 10 ml à embout lisse</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubes microcentrifuge de 1,5 ml (stériles)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plaques de Petri en polystyrène 60 x 15 mm, stériles</td><td>Falcon BD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lames de rasoir</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lames à microscope Premium 25 x 75 mm x 1 mm </td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plaques de Pétri en verre de 10 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>9&quot; Pipettes Pasteur en verre borosilicaté Durex, jetables, avec embout en coton</td><td>VWR international</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tuyau Tygon</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Deux bijoutiers suisses n° 5&amp;rsquo;S Forceps</td><td>Miltex Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microciseaux à ressort McPherson-Vannas, bord droit, 6 mm</td><td>Roboz Surgical Instruments Co.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pieds à coulisse Helios </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscope stéréoscopique</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Illuminateur à haute intensité</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hémacytomètre</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Un bec Bunsen</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>37&amp;#x00B0;incubateur agitateur</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Centrifuger</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

comparative in vivo etude de gp96 adjuvanticité de la grenouille xenopus laevis</em

Comparative in vivo Study of gp96 Adjuvanticity in the Frog Xenopus laevis

Nous avons développé dans le Xenopus laevis amphibiens unique non mammifères modèle pour étudier la capacité de certaines protéines de choc thermique (HSP), tels que gp96 pour faciliter la présentation croisée des antigènes chaperonné et susciter innée et adaptative réponses des lymphocytes T. Rejet de greffe de peau de Xenopus fournit une excellente plateforme pour étudier la capacité de gp96 à susciter classiques du CMH de classe Ia (classe Ia) restreint les réponses des cellules T. De plus, le système modèle Xénope fournit également une alternative intéressante à la souris pour explorer la capacité de gp96 à générer des réponses contre les tumeurs qui ont régulé à la baisse de leurs molécules de classe Ia échappant ainsi à la surveillance immunitaire. Récemment, nous avons développé une méthode de criblage cellulaire adoptive de transfert en utilisant des clones de Xenopus leucocytes péritonéale comme des cellules présentatrices d&#39;antigène (CPA), et montré que gp96 peut Premier réponses des lymphocytes T CD8 in vivo contre des antigènes mineurs d&#39;histocompatibilité de peau ainsi que contre la tumeur du thymus Xenopus 15 / 0 qui n&#39;exprime pas les molécules Ia classe. Nous décrivons ici la méthodologie utilisée pour effectuer ces tests, y compris le transfert d&#39;élicitation, pulsant et adoptive de leucocytes péritonéale, ainsi que la greffe de peau et des essais de transplantation de tumeurs. De plus nous sommes également décrit la récolte et la séparation des leucocytes du sang périphérique utilisé pour la cytométrie de flux et de tests de prolifération qui permettent une caractérisation plus poussée des populations effectrices impliquées dans le rejet de la peau et des réponses antitumorales.

La grenouille<em&gt; Xenopus laevis</em&gt; Fournit une intéressante alternative non-mammifère modèle pour explorer la capacité de la protéine de choc thermique tels que gp96 à promouvoir spécifiques de l&#39;antigène des cellules T CD8. Nous présentons des méthodes pour étudier<em&gt; In vivo</emFacilitation&gt; des présentation croisée d&#39;antigènes tumoraux par la peau et gp96.

Comparative In vivo Etude de gp96 adjuvanticité de la grenouille Xenopus laevis</em

Nous avons développé chez l'amphibien Xenopus laevis un modèle non mammalien unique pour étudier la capacité de certaines protéines de choc thermique (hsps), telles que la gp96, à...

L'objectif général de cette procédure est d'étudier la conservation évolutive de la protéine de choc thermique G 96 dans la promotion de réponses des lymphocytes T CD huit spécifiques aux antigènes chez la grenouille Xenopus laevis. Ceci est réalisé en premier lieu par la collecte de leucocytes péritonéaux par lavage péritonéal. La deuxième étape de la procédure consiste à pulser les leucocytes péritonéaux avec la GP 96 d'origine tumorale, qui accompagne les antigènes mineurs et tumoraux, après incubation et lavages.Les leucocytes péritonéaux sont transférés de façon adoptive par injection intrapéritonéale à des grenouilles naïves afin de sensibiliser ces dernières contre des antigènes tumoraux ou des antigènes mineurs d'histocompatibilité. La troisième étape de la procédure consiste à greffer une peau ou à administrer un défi tumoral aux grenouilles sensibilisées, puis à surveiller l'apparition de la greffe cutanée, le rejet ou l'apparition d'une tumeur. La dernière étape de la procédure consiste à prélever du sang périphérique afin de caractériser les lymphocytes T impliqués dans les réponses de rejet cutané et anti-tumorales.En fin de compte, on peut obtenir des résultats montrant une accélération significative du rejet de greffes cutanées, ainsi qu'un retard dans l'apparition de tumeurs chez les grenouilles préparées avec la GP 96, respectivement grâce aux tests de greffe cutanée et de provocation tumorale. Bonjour, je suis Christina Koska au laboratoire du Dr Jacque Robert, du département de microbiologie et d'immunologie du centre médical de l'Université de Rochester. Je suis Tanya Cruz, également du laboratoire du Dr River.Aujourd'hui, nous allons vous présenter une procédure de sensibilisation de grenouilles clonées par transfert adoptif de leucocytes péritonéaux, suivie d'essais de greffe cutanée et de transplantation de tumeurs. De plus, nous vous montrerons également comment prélever du sang périphérique chez ces animaux. Nous utilisons cette procédure dans notre laboratoire pour étudier la capacité de la protéine de choc thermique GP96 à favoriser les cellules CD8+ spécifiques des antigènes chez Salla, ainsi que pour analyser les types cellulaires impliqués.Très bien, commençons. Les grenouilles utilisées dans nos expériences sont des clones génétiques ISO provenant de notre colonie d'élevage à l'Université de Rochester. Pour induire la production de leucocytes péritonéaux, ou pls, en vue de leur prélèvement, utilisez une aiguille de calibre 25, cinq huitièmes de pouce, pour injecter par voie intrapéritonéale dans la grenouille anesthésiée une préparation d’e. coli tuée par la chaleur. Trois jours après l'injection, les pls sont récoltés par lavage intrapéritonéal.Pour commencer cette procédure, désinfectez l'abdomen de la grenouille anesthésiée avec une petite quantité d'éthanol à 70 %. Ensuite, utilisez une aiguille de calibre 18 de 1,5 pouce pour injecter cinq millilitres de solution saline tamponnée au phosphate stérile pour amphibiens, ou du PBS préalablement mis à température ambiante, dans la cavité péritonéale. Retirez l'aiguille et massez doucement la grenouille pendant une minute afin de s'assurer que le tampon injecté se mélange correctement au liquide présent dans la cavité corporelle.Ensuite, insérez une nouvelle aiguille de calibre 18 de 1,5 sans seringue dans l'abdomen de la grenouille. En évitant les vaisseaux sanguins, recueillez le liquide péritonéal qui s'écoulera par l'arrière de l'aiguille dans un tube conique propre de 50 millilitres. Veillez à récupérer autant que possible du volume injecté initialement après la récolte des pls.Mettre la grenouille dans un récipient contenant de l'eau peu profonde jusqu'à ce qu'elle se réveille, moment auquel elle peut être replacée dans sa cage. Une fois les PLS récoltés, centrifuger à 1000 tr/min pendant 10 minutes à quatre degrés Celsius, éliminer le surnageant et resuspendre. Suspendre les PLS dans du PBS A froid.Transférez le PLS REMISE EN SUSPENSION dans un tube microcentrifuge de 1,5 millilitre. Pour pulser le PLS avec GP 96, ajoutez la quantité appropriée de GP 96 au PLS et mélangez par pipetage. Incubez sur glace pendant une heure après une heure.Centrifuger les cellules à 14 000 tr/min pendant une minute. Pour éliminer toute GP 96 non liée, retirer le surnageant. Ajouter du PBS A froid et resuspendre.Effectuez une nouvelle centrifugation du PLS. Lavez le S avec du S-A-P-B-A froid un total de trois fois afin de vous assurer qu'aucun résidu de G 96 n'est présent après le dernier lavage. Resuspendez les PLS pulsés à une concentration de cinq fois 10 à la puissance cinq PLS par 300 microlitres de PBS afin de transférer adoptivement les PLS chez six receveurs naïfs LG.Injecter par voie intrapéritonéale 300 microlitres de pls activés par animal. Les grenouilles doivent être préparées au moins trois jours avant les expériences de greffe cutanée ou de challenge tumoral, qui seront présentées ensuite. La peau destinée à la greffe est prélevée sur une grenouille donneuse LG 15 anesthésiée.Utilisez des ciseaux pour découper et retirer un petit morceau de peau ventrale, c'est-à-dire la peau abdominale qui apparaît argentée. En raison de la présence de quatre cellules pigmentées ARI lors de la manipulation de la greffe. Il est essentiel de manipuler le tissu le moins possible, car cela pourrait endommager la greffe.Tenez la peau très délicatement avec la pince et placez-la dans une boîte de Pétri contenant du PBS A froid. Maintenez la boîte de Pétri en place. Déposez la peau sur une lame de verre propre et utilisez un rasoir pour découper des greffons individuels en morceaux de cinq millimètres sur cinq millimètres.Gardez les fragments dans du PBS sur de la glace pour greffer la peau sur six grenouilles réceptrices. Commencez par pratiquer une petite incision sur la peau dorsale de la grenouille réceptrice anesthésiée. Insérez ensuite le greffon de cinq millimètres sur cinq millimètres sous la peau, côté argenté vers le haut.Veillez à noter les marques de ciseaux et de forceps sur les greffons, car elles ne sont pas comptabilisées comme un rejet de greffon. Une fois le score commencé 24 heures plus tard, une partie de la peau hôte recouvrant le greffon doit être retirée. Utilisez des ciseaux pour découper une fenêtre autour du greffon afin que celui-ci puisse être visualisé librement.Veillez à ne pas toucher la peau du donneur ni provoquer de saignement. Commencez immédiatement à évaluer la greffe en réalisant un croquis. Greffe de peau.Le rejet est déterminé par le pourcentage de destruction de l'aridol sur la peau greffée. Le greffon doit être examiné tous les deux à trois jours au microscope stéréo. Préparez les cellules tumorales pour la transplantation en les resuspendant dans du milieu de culture tumoral à une densité de cinq fois 10 à la puissance cinq cellules par 300 microlitres.Transplanter les cellules par injection sous-cutanée sur un côté de la face dorsale de l'animal. Cinq fois 10 à la puissance cinq cellules dans un volume de 300 microlitres sont injectées par grenouille. La croissance tumorale commencera deux à trois semaines après l'inoculation de la tumeur.Noter l'aspect initial de la tumeur. Utiliser un pied à coulisse pour mesurer les dimensions de la tumeur et enregistrer son volume tous les deux ou trois jours avant la collecte des leucocytes sanguins chez la grenouille. Préparer des aiguilles en verre en tirant des pipettes Pasteur au-dessus d'une flamme.Après avoir affiné l'extrémité fine de la pipette sous le microscope stéréo, reliez la pipette à un tube en plastique d'aspiration. Pour commencer le prélèvement sanguin, incisez la peau au-dessus du pied postérieur de la grenouille anesthésiée afin d'exposer la veine du tarse dorsal. Remplissez l'aiguille en verre avec un à deux millilitres de solution de PBS A glacée additionnée d'héparine.Insérez ensuite l'aiguille en verre dans la veine et commencez à prélever le sang en aspirant lentement par la bouche. On peut obtenir un à deux millilitres de sang à partir d'une grenouille de taille moyenne. La petite incision effectuée sur la patte de la grenouille n'a pas besoin d'être suturée.La plaie guérira en une semaine. Les résultats d'une analyse au microscope stéréo du rejet de greffe cutanée 12 jours après la transplantation sont présentés ici. Une grenouille LG six clonée ayant reçu une greffe cutanée d'un donneur LG six identique au niveau du CMH n'a montré aucun rejet.L'astérisque indique la pince marquée comme n'étant pas due au rejet. En revanche, une grenouille clonée LG6 ayant reçu une greffe de peau provenant d'un donneur allogène présentant un désappariement au niveau du CMH montre 80 % de rejet. Sur les deux images, les flèches indiquent les cellules pigmentées iridescentes argentées marquant un tissu greffé sain non rejeté.Dans cette expérience suivante, des lymphocytes de greffe 15 (LG 15) ont été stimulés soit avec du PBS en tant que contrôle négatif, soit avec la GP 96 recombinante purifiée à partir d'une culture d'Escherichia coli, soit avec la GP 96 purifiée à partir de cellules de tissu tumoral 15 zéro. Ces cellules ont ensuite été transférées de façon adoptive à des receveurs adultes LG 15, puis trois jours plus tard, des cellules tumorales 15 zéro vivantes ont été transplantées par injection sous-cutanée. Les tumeurs apparues après le défi ont été surveillées, et leur taille mesurée périodiquement. Sur ces graphiques, chaque courbe représente la cinétique de croissance tumorale chez une grenouille. Les résultats montrent que les animaux préalablement exposés à 0,5 ou 1 microgramme de GP 96 présentaient un retard significatif dans l'apparition de la tumeur par rapport aux groupes témoins. Par conséquent, la GP 96 facilite la présentation croisée des antigènes tumoraux chez Xenopus.Nous venons donc de vous montrer comment explorer la capacité de la GP96 à présenter à la fois des antigènes mineurs et des antigènes tumoraux chez la grenouille Xenopus laevis par des tests de greffe cutanée et de transplantation de tumeur. Lors de cette procédure, il est important de ne pas effectuer de lavage péritonéal si un vaisseau sanguin a été endommagé, car la majorité des cellules recueillies seraient alors des érythrocytes et non des macrophages. Il est également essentiel d'éviter de serrer le tissu avec la pince lors de la manipulation de la greffe cutanée afin de prévenir tout dommage.Voilà, c'est terminé. Merci d'avoir suivi cette procédure de lavage et bonne chance pour vos expériences.

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