$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Prenez des neurones fixes et perméabilisés dans un tube.
Ajoutez un tampon de blocage pour empêcher la liaison d’anticorps non spécifiques.
Centrifuger la suspension et retirer le surnageant. Ensuite, résuspendez les neurones dans le tampon.
Transférez la suspension également dans des tubes contenant des anticorps primaires non marqués et marqués au fluorophore.
Incuber, permettant aux anticorps de se lier spécifiquement à la chaîne respiratoire mitochondriale ou aux sous-unités du complexe MRC, à une protéine associée à l’ADN mitochondrial et à une protéine de la membrane externe mitochondriale dans les neurones.
Retirez tous les anticorps non liés.
Incuber avec des anticorps secondaires marqués au fluorophore qui se lient aux anticorps primaires non marqués.
Centrifugez le mélange et jetez le surnageant.
Remettez les neurones en suspension dans le tampon et transférez-les dans des tubes de microcentrifugation.
Effectuer une cytométrie en flux pour détecter les signaux fluorescents sur les neurones marqués, correspondant aux niveaux d’expression des sous-unités du complexe MRC et à la mesure des niveaux relatifs d’ADN mitochondrial.
Bloquer les échantillons dans 1 millilitre de tampon de blocage, et laver les cellules par centrifugation avec du PBS comme démontré. Pour détecter différents complexes et sous-unités mitochondriaux, incubez les cellules pendant 30 minutes avec les anticorps primaires respectifs décrits dans le manuscrit. Après avoir lavé les cellules une fois avec du PBS, incubez les cellules avec l’anticorps secondaire pendant 30 minutes.
À la fin de l’incubation, laver et remettre en suspension les cellules dans le PBS comme démontré. Transférez la suspension cellulaire dans un tube de microcentrifugation de 1,5 millilitre, conservé dans l’obscurité, sur de la glace. Ensuite, analysez les cellules sur le cytomètre en flux, détectez les signaux et filtrez-en un à l’aide d’un filtre passe-bande 530/30.