Name: Visualisation de la fonction respiratoire mitochondriale utilisant Cytochrome C Oxydase / succinate déshydrogénase (COX / SDH) Double-histochimie étiquetage (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-23T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 53 s
Description: Apprenez la double marquage COX/SDH pour visualiser les déficits enzymatiques respiratoires mitochondriaux sur des coupes de tissus frais congelés. Cette technique histochimique aide à diagnostiquer les maladies mitochondriales et les troubles liés au vieillissement.

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Ce travail a été soutenu par le National Institute of Aging (AG04418), le National Institute on Drug Abuse, Institut national de santé-Karolinska Institutet Graduate Programme de partenariats, Karolinska Institutet, Conseil de recherche suédois, Brain Power suédois, et la Fondation du cerveau suédois. Un grand merci à Mattias Karlen et le Dr Giuseppe Coppotelli pour le soutien créatif avec la figure 1 et 2, respectivement; Karin Pernold d&#39;assistance technique, et les Drs. Barry J. Hoffer, Lars Olson, et Nils-Göran Larsson pour des conseils utiles et bien des discussions.

1. Préparation des tissus pour les cryosectioning <ol><li> Sacrifice de l'animal par dislocation cervicale ou décapitation, conformément au permis éthiques disponibles. </li><li> Recueillir rapidement les tissus d'intérêt (par ex. Cerveau), et rapidement geler sur la glace sèche (tissus peut exiger la congélation dans l'isopentane ou propane réfrigéré à l'azote liquide pour obtenir la morphologie optimale). Tissus magasin dans du papier aluminium à -80 ° C jusqu'au moment de la section. </li><li> Intégrer les tissus congelés en préparation pour cryosectioning. </li><li> Recueillir des sections cryostat de 14 um à -21 ° C (peut-être besoin d'ajuster la température de ± 1-2 ° C). Dégel des sections sur des lames à l'aide de bloc de chauffage, et les diapositives magasin sans lamelles à -20 ° C jusqu'au moment de servir. </li></ol> 2. Histochimie COX <ol><li> Autoriser lames sécher à température ambiante pendant 1 heure. Mettez lames dans une chambre glisser-coloration avec du papier filtre humide, coupé en lanières. Pour obtenir consistenrésultats de t dans chaque expérience, il est recommandé de traiter un maximum de dix diapositives par expérience pour minimiser les retards. </li><li> Préparer dans un DAB chimiques capuche 1X, 100 uM cytochrome c en 0,1 M de pH = 7,0. Vortex rapidement. </li><li> Ajouter 2 ug bovins catalase (2 pg ml -1, soit environ 4 UI ml -1). Mélangez bien au vortex pour briser tous les grains de la catalase. </li><li> Appliquer 150 à 200 pi de milieu d'incubation à chaque diapositive, utilisez la pointe de pipette pour répandre uniformément sur toutes les sections. </li><li> Incuber les lames pendant 40 minutes à 37 ° C. </li><li> Retirez l'excès de solution de la glisse. Laver les lames 4 fois, 10 minutes à chaque fois, dans 0,1 M de pH = 7,0. </li><li> Retour diapositives de glisser-coloration de chambre avec des bandes de papier mouillé. </li></ol> 3. Histochimie SDH <ol><li> Préparer sous une hotte chimique 1,5 mM NBT, 130 mM de succinate de sodium, 0,2 mM PMS, et 1,0 mM d'azoture de sodium à 0,1 M de pH = 7,0. Prenez garde pour protéger lePMS de la lumière. Vortex rapidement. </li><li> Appliquer 150 à 200 pi de milieu d'incubation à chaque diapositive, utilisez la pointe de pipette pour répandre uniformément sur toutes les sections. </li><li> Incuber les lames pendant 40 minutes à 37 ° C. </li><li> Retirez l'excès de solution de la glisse. Laver les lames 4 fois, 10 minutes à chaque fois, dans 0,1 M de pH = 7,0. </li><li> Déshydrater les lames pendant 2 minutes dans les concentrations suivantes d'éthanol: 70%, 70%, 95%, 95%, à 99,5%. Puis laissez 10 minutes dans une étape supplémentaire de 99,5%. </li><li> Placer les lames dans le xylène pendant 10 minutes. Monter avec Entellan et la lamelle. Laisser les lames sécher heures, la nuit, ou au moins 1-2 dans un endroit aéré. </li></ol> 4. Détermination de la dysfonction mitochondriale <ol><li> Le montant de la dysfonction mitochondriale est indiquée par la quantité de coloration au bleu cellulaire. À semi-quantifier ces montants, les lames doivent être codées et visualisés sous champ lumineux microscopie. Semi-quantification devrait être effectuée sur un store base en utilisant une échelle, par exemple de 0-4 (0, pas de coloration bleue; 4, seulement une coloration bleue). Il est préférable d'effectuer ce type de semi-quantification sur plusieurs sections à partir d'un sujet donné / animal pour calculer une valeur moyenne pour chaque sujet / animal. </li><li> Les statistiques doivent être effectuées en utilisant un test non-paramétrique, tels que Mann-Whitney ou de Kruskal-Wallis. </li></ol> 5. Contrôles de spécificité appropriée <ol><li> Pour les contrôles de spécificité pour l'activité de COX, répéter «COX histochimie" étapes, et ajouter 2,5 mM d'azoture de sodium, un inhibiteur de la chaîne terminale des voies respiratoires. </li><li> Pour les contrôles de spécificité pour l'activité SDH, répéter «SDH histochimie" étapes avec le retrait de succinate de sodium et l'addition de 50 mM malonate, un inhibiteur compétitif de la SDH. </li><li> Lavez et déshydrater sections dans une série d'éthanol, puis monter et lamelle les diapositives que décrit dans les étapes 3.4 à 3.6. </li></ol> 6. Les résultats représentatifs: tente »&gt; Le régime global de la COX exemples représentatifs / SDH double étiquetage test histochimique est illustrée dans la Figure 2. appropriée des inhibiteurs de la COX / SDH double marquage histochimique de coupes de cerveau de type sauvage et vieillissement prématuré des souris mutantes ADNmt sont présentés dans la figure 3. La coloration brun foncé souris de type sauvage (figure 3, panneau de gauche) a montré une activité normale de COX. Cellules avec des déficiences de la chaîne respiratoire, indiquée par la coloration au bleu, ont été révélés dans 12 semaines chez des souris âgées mutator ADNmt, et ces carences est devenu plus répandue que les souris mutantes ADNmt âgés de 46 semaines (figure 3, centre et droite). Exemples de inappropriés COX / SDH double étiquetage dans les sections du cerveau à partir souris de type sauvage à cause de la COX étiquetage insuffisant sont présentés dans la figure 4. Temps d'incubation inadéquate pour la démonstration de l'activité de COX, ou en réduisant la disponibilité de l'oxygène moléculaire par la lame de lamelles pendant l'incubation, a entraîné une réduction des dépôts de la réaction DABproduit ionique, et donc permis la formation du produit formazan bleu pendant la fin de l'incubation SDH. Activités COX et SDH peut aussi être étudiée séparément (Figure 5, gauche et centre), mais l'étiquetage séquentiel est utile pour identifier les cellules avec des déficiences COX, en raison de la formation du précipité bleu lors de l'incubation SDH (figure 3, le centre et droite). Spécificité de contrôle pour les activités de la COX et SDH peut également être effectué (figure 5, à droite). <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/3266/3266fig1.jpg"> Figure 1. Respiratoire mitochondriale Complexes IV. La chaîne respiratoire mitochondriale est située dans la membrane interne et comprend cinq complexes. Le but de la chaîne respiratoire est de transporter des électrons à partir complexe I à IV et, ce faisant, il crée un gradient de protons à travers la membrane interne utilisé par le complexe V (ATPase) pour produire de l'ATP. Rouge represe hexagonessous-unités codées par l'ADN mitochondrial NT. Hexagones blancs représentent les sous-unités codées par l'ADN nucléaire (à noter que complexe II est entièrement codée par le génome nucléaire). Ainsi, des mutations dans le génome mitochondrial pourrait provoquer un dysfonctionnement de la chaîne respiratoire due à des mutations dans les sous-unités des complexes de la chaîne respiratoire. <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/3266/3266fig2.jpg"> Figure 2. Organigramme du dosage de la COX / SDH double marquage histochimique. Disséquer les organes d'intérêt, rapidement geler les tissus sur la glace sèche, et les stocker à - 80 ° C. Recueillir des sections de cryostat et de garder à - 20 ° C jusqu'à utilisation. Autoriser les sections à l'air sec à température ambiante pendant 1 heure. Préparer le milieu d'incubation de la COX histochimie, l'appliquer à la glisse, et incuber pendant 40 minutes à 37 ° C. Laver les coupes dans le PBS 4 fois pendant 10 minutes à chaque lavage. Préparer le milieu d'incubation pour histochimie SDH, l'appliquer à la SLIdes, et à nouveau incuber pendant 40 minutes à 37 ° C. Laver les coupes à nouveau dans du PBS, déshydrater dans une série d'éthanol, puis monter et lamelle les diapositives. La COX / SDH doublement marquée sections sont prêtes à vue sous la microscopie à champ lumineux en 1-2 heures. <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/3266/3266fig3.jpg"> Figure 3. Des exemples représentatifs de la COX / SDH double étiquetage. Coupes de cerveau de type sauvage et vieillissement prématuré des souris mutantes ont été ADNmt séquentielle étiquetés pour les activités de la COX et SDH. (Barre d'échelle: 200. Um) L'activité normale de COX (indiqué par une couleur brun foncé) a été montré dans l'hippocampe de souris de type sauvage (à gauche). Déficiences COX (indiqué par la couleur bleue) ont été révélés dans l'hippocampe de souris mutantes ADNmt (centre et droite). Il y avait une nouvelle baisse de l'activité COX de 46 semaines d'âge chez les souris mutantes ADNmt, suggérant l'exacerbation généralisée de la dysfonction de la chaîne respiratoire. Le observés mitoun dysfonctionnement de l'ADNmt chondrial mutator souris 12 est causé par des niveaux élevés de mutations ponctuelles ADNmt ainsi que des niveaux accrus de suppressions linéaire 5. <img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/3266/3266fig4.jpg"> Figure 4. Exemples de inappropriés COX / SDH double étiquetage. Coupes de cerveau de souris de type sauvage ont été étiquetés de manière séquentielle pour les activités de la COX et SDH. (Barre d'échelle: 200. Um) temps d'incubation insuffisant (10 et 25 minutes) pour la démonstration de l'activité de COX a entraîné une réduction des dépôts de produit de réaction marron DAB, par rapport à la période d'incubation de 40 minutes (à gauche et au centre). Le temps d'incubation a permis de raccourcir la formation du produit formazan bleu pendant la fin de l'incubation SDH, trompeusement suggérant la présence de cellules présentant des déficiences COX. Lamelles les diapositives pendant l'incubation Cox a également abouti à la formation inexacte et le dépôt de la réaction DABions produits (à droite). <img alt="Figure 5" src="/files/ftp_upload/3266/3266fig5.jpg"> Figure 5. Je ertaines COX et de l'étiquetage et le contrôle SDH spécificité. Coupes de cerveau de souris de type sauvage ont été séparément étiquetés pour les activités de la COX et SDH, indiqué par la couleur brun foncé et la couleur bleue, respectivement (gauche et centre). Bien que les activités COX et SDH peuvent être étiquetées individuellement, l'étiquetage séquentielle s'est révélée être avantageuse appréciée en localisant les cellules présentant un dysfonctionnement mitochondrial. Un exemple d'un contrôle de spécificité pour les activités de la COX et SDH dans le cerveau d'une souris de type sauvage a montré l'absence d'étiquetage (à droite). (Barre d'échelle: 200. Um)

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Pas de conflits d&#39;intérêt déclarés.

Le combiné COX / SDH méthode histochimique permet la visualisation des cellules présentant un dysfonctionnement mitochondrial. Cette technique, avec les premières études remontent à 1968, reste populaire, avec beaucoup estiment qu&#39;il s&#39;agit de «gold standard» pour identifier les maladies mitochondriales chez les patients 14,19,26,27. Il est maintenant fréquemment utilisée pour étudier l&#39;ADNmt mutation conduit le vieillissement et le vieillissement des troubles liés 12,13,18,20,21,24. La...

<table border="1"><tr><td> Nom du réactif </td><td> Société </td><td> Numéro de catalogue </td><td> Commentaires (optionnel) </td></tr><tr><td> Dry Ice </td><td> AGA Gas AB </td><td> sous forme de bloc </td><td></td></tr><tr><td> L&#39;isopentane (2-méthylbutane) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 277258 CAS: 78-78-4 </td><td></td></tr><tr><td> Solution intégrant Cyrostat </td><td> Sakura Finetek </td><td> Tissue Tek 4583 </td><td></td></tr><tr><td> Cryostat </td><td> Microm </td><td> Microm Modèle HM 500M </td><td></td></tr><tr><td> Diapositives </td><td> Thermo Scientific </td><td> Super gel plus Menzel Gläser J1800AMWZ </td><td></td></tr><tr><td> Lunettes de couverture Verre borosilicate </td><td> VWR International </td><td> 16004-098 </td><td> 24 x 50 mm </td></tr><tr><td> Papier filtre </td><td> Munktell Filtre AB </td><td> Qualité: 1350 L&#39;articleNombre: 242 001 </td><td> 430 x 430 mm </td></tr><tr><td> 3,3 &#39;-diaminobenzidine tétrachlorhydrate (DAB) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> Système Sigma substrat liquide, D7304 </td><td></td></tr><tr><td> Cytochrome C (type III, à partir du cœur équin) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C2506 CAS: 9007-43-6 </td><td></td></tr><tr><td> Bovine catalase (de foie) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C9322 CAS: 9001-05-2 </td><td></td></tr><tr><td> Nitrobleu de tétrazolium (NBT) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> N6876 CAS: 298-83-9 </td><td></td></tr><tr><td> Succinate de sodium </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> S2378 CAS: 6106-21-4 </td><td></td></tr><tr><td> Méthosulfate de phénazine (PMS) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P9625 CAS: 299-11-6 </td><td> PMS est sensible à la lumière. Bouclier de la lumière. </td></tr><tr><td> L&#39;azoture de sodium </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> S8032 CAS: 26628-22-8 </td><td></td></tr><tr&gt; <td> Xylène </td><td> VWR International </td><td> EM-XX0060-4 </td><td></td></tr><tr><td> Entellan </td><td> VWR International </td><td> 100503-870 </td><td></td></tr><tr><td> Malonate (Acide malonique) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> M1296 CAS: 141-82-2 </td><td></td></tr></table>

visualisation de la fonction respiratoire mitochondriale utilisant cytochrome c oxydase / succinate déshydrogénase (cox / sdh) double-histochimie étiquetage

Visualization of Mitochondrial Respiratory Function using Cytochrome C Oxidase / Succinate Dehydrogenase (COX/SDH) Double-labeling Histochemistry

ADN mitochondrial (ADNmt) des défauts sont une cause importante de maladie et peut expliquer le vieillissement et liées au vieillissement 1,2 altérations. La théorie mitochondriale du vieillissement suggère un rôle pour les mutations de l&#39;ADNmt, ce qui peut altérer l&#39;homéostasie bioénergétique et la fonction cellulaire, dans le processus de vieillissement 3. Une abondance de preuves ont été rassemblées à l&#39;appui de cette théorie de 1,4, un exemple étant l&#39;ADNmt mutator souris 5, mais le rôle précis des dégâts ADNmt dans le vieillissement n&#39;est pas entièrement comprise 6,7. Observer l&#39;activité des enzymes respiratoires est une approche simple pour enquêter sur un dysfonctionnement mitochondrial. Complexe IV ou cytochrome c oxydase (COX), est essentielle pour la fonction mitochondriale. Les sous-unités catalytiques de la COX sont codées par l&#39;ADNmt et sont essentiels pour l&#39;assemblage du complexe (figure 1). Ainsi, la synthèse et la fonction sont largement basées sur l&#39;ADN mitochondrial de l&#39;intégrité 2.Bien que d&#39;autres complexes respiratoires pourraient être étudiés, Complexes IV et II sont les mieux adaptés à l&#39;examen histochimique 8,9. Complexe II ou succinate déshydrogénase (SDH), est entièrement codée par l&#39;ADN nucléaire (figure 1), et son activité n&#39;est généralement pas affecté par l&#39;ADNmt altérée, bien qu&#39;une augmentation pourrait indiquer la biogenèse mitochondriale 10-12. L&#39;ADNmt déficience observée dans les maladies mitochondriales, le vieillissement et maladies liées au vieillissement amène souvent à la présence de cellules ayant une activité COX faible ou absente 2,12-14. Bien que les activités COX et SDH peuvent être étudiées individuellement, le double étiquetage séquentielle méthode de 15,16 s&#39;est avéré être avantageux de localiser les cellules présentant un dysfonctionnement mitochondrial 12,17-21. Beaucoup de constitutions optimale de l&#39;essai ont été déterminés, tels que la concentration du substrat, les accepteurs d&#39;électrons / donateurs, intermédiaire des transporteurs d&#39;électrons, l&#39;influence du pH, et la réaction tIME 9,22,23. 3,3 &#39;-diaminobenzidine (DAB) est un donneur d&#39;électrons efficace et fiable 22. Dans les cellules avec des inhibiteurs de la COX fonctionnement, la brune indamine polymère produit localiser dans crêtes mitochondriales et saturer les cellules 22. Ces cellules avec des inhibiteurs de la COX dysfonctionnel ne seront donc pas être saturé par le produit DAB, permettant la visualisation de l&#39;activité SDH par réduction de nitrobleu de tétrazolium (NBT), un accepteur d&#39;électrons, d&#39;un produit formazan extrémité bleue 9,24. Cytochrome c et substrats de succinate de sodium sont ajoutés à normaliser les niveaux endogènes entre le contrôle et malades / mutant tissus 9. La catalase est ajoutée à titre de précaution pour éviter de possibles réactions du contaminant 9,22 activité peroxydase. Méthosulfate de phénazine (PMS), un transporteur d&#39;électrons intermédiaire, est utilisé en conjonction avec l&#39;azoture de sodium, un inhibiteur de la chaîne respiratoire, d&#39;augmenter la formation des produits de réaction final 9,25. En dépit de cette informationtion, certains détails critiques qui affectent le résultat de ce dosage convenable simple, en plus des contrôles de spécificité et les progrès de la technique, n&#39;ont pas encore été présenté.

Le cytochrome c oxydase / sodium déshydrogénase (COX / SDH) double étiquetage méthode permet la visualisation directe de l&#39;ADN mitochondrial des déficits enzymatiques respiratoires dans des coupes de tissus congelés frais. C&#39;est une technique simple histochimiques et est utile dans les enquêtes sur les maladies mitochondriales, le vieillissement et les troubles liés au vieillissement.

Visualisation de la fonction respiratoire mitochondriale utilisant Cytochrome C Oxydase / succinate déshydrogénase (COX / SDH) Double-histochimie étiquetage

Les anomalies de l'ADN mitochondrial (ADNmt) constituent une cause importante de pathologies et pourraient être à l'origine du vieillissement ainsi que des altérations liées à celui-ci 1,2. La théorie mitochondriale du...

L'objectif général de cette procédure est de permettre la visualisation directe des déficiences des enzymes respiratoires mitochondriales dans des coupes de tissu fraîchement congelé. Cela est réalisé en prélevant d'abord des sections au cryostat à partir de l'organe d'intérêt. La deuxième étape de la procédure consiste à réaliser l'histochimie de la COX, suivie de l'histochimie de la SDH.Enfin, les coupes de tissu sont déshydratées, montées et recouvertes d'une lamelle. En définitive, les résultats peuvent montrer le degré de dysfonction mitochondriale par l'intensité de la coloration bleue cellulaire. Bonjour. Aujourd'hui, nous allons parler de la technique histochimique de double marquage COX-SCH.Et bien que cette méthode puisse être appliquée à l'étude des maladies mitochondriales, elle peut également fournir des informations sur le vieillissement et les troubles liés à l'âge. Après avoir prélevé le cerveau d'un animal sacrifié conformément à une autorisation éthique, le congeler rapidement sur de la glace sèche. Le tissu congelé peut être conservé à moins 80 degrés Celsius, enveloppé dans du papier d'aluminium, jusqu'au moment de la sectionnement.Préparez le tissu pour la cryocoupe en plaçant le cerveau sur un porte-échantillon de cryostat et en l'entourant de composé d'inclusion. Placez rapidement le porte-échantillon dans le cryostat et récupérez des sections de 14 micromètres à moins 21 degrés Celsius. Faites fondre les sections sur des lames à l’aide d’un bloc chauffant, puis laissez les lames sécher à température ambiante pendant une heure.Placer les lames dans une chambre de coloration pour lames avec des bandes de papier humide. Étant donné que les durées de réaction sont importantes dans ce dosage, il est recommandé de traiter au maximum 10 lames par expérience sous une hotte chimique. Préparer l'incubation, le milieu contenant du DAB et du cytochrome C dans du PBS, puis vortexer.Ajoutez rapidement deux microgrammes de CDE de bovin au milieu et mélangez soigneusement par vortex. Pour disperser tous les grains de CDE encore présents sous la hotte, appliquez de 150 à 200 microlitres de milieu d'incubation sur chaque lame à l’aide de la pointe de pipette afin de répartir uniformément sur toutes les sections. Incubez les lames pendant 40 minutes à 37 degrés Celsius.Après 40 minutes, retirez le milieu d'incubation des lames. Lavez les lames quatre fois dans du PBS pendant 10 minutes à chaque fois. Après le lavage des lames, remettez-les dans la chambre de coloration avec des bandes de papier humide, en travaillant sous une hotte chimique.Préparez la solution de NBT dans le PBS en prenant soin de protéger le PMS de la lumière ; vortexez rapidement la solution, puis appliquez 150 à 200 microlitres de la solution de NBT sur chaque lame en utilisant la pointe de pipette pour répartir uniformément sur toutes les sections. Incubez les lames pendant 40 minutes à 37 degrés Celsius ; au bout de 40 minutes, retirez l'excès de solution des lames. Lavez les lames quatre fois dans le PBS pendant 10 minutes à chaque fois.Hydrater les lames pendant deux minutes chacune dans les concentrations d'éthanol suivantes, en ordre séquentiel : 70 %, 70 %, 95 %, 95 % et 99,5 %. Enfin, laisser 10 minutes dans une étape supplémentaire à 99,5 %. Placer les lames dans le xylène pendant 10 minutes, monter avec LAN et appliquer les lamelles.Laissez sécher les lames toute la nuit ou au moins de une à deux heures dans un endroit ventilé ici. Des sections cérébrales provenant de souris de type sauvage et de souris Mutator de l'ADNmt vieillissant prématurément ont été marquées successivement pour les activités de la COX et de la SDH.L'activité normale de la Cox indiquée par la coloration brun foncé est observée dans l'hippocampe de souris de type sauvage. Des déficiences en Cox, indiquées par la coloration bleue, ont été mises en évidence dans l'hippocampe de souris mutatrices de l'ADN mitochondrial à 12 et 46 semaines. Une diminution supplémentaire de l'activité de la Cox a été observée à 46 semaines chez les souris mutatrices de l'ADN mitochondrial, suggérant une aggravation généralisée du dysfonctionnement de la chaîne respiratoire.Des durées d'incubation insuffisantes de 10 et 25 minutes ont entraîné une réduction du dépôt du produit de réaction brun de la DAB. Les durées d'incubation raccourcies ont permis la formation du produit final bleu de Foran pendant l'incubation de la SDH, suggérant à tort la présence de cellules présentant des carences en COX lors de la pose du coverslip. Les lames pendant l'incubation de la COX ont également conduit à une formation et un dépôt inexactes du produit de réaction de la DAB.Bien que les activités de la Cox et de la SDH puissent être marquées individuellement comme indiqué ici, le marquage séquentiel s'est révélé avantageux pour localiser les cellules présentant un dysfonctionnement mitochondrial. Un exemple de contrôle de spécificité pour les activités de la COX et de la SDH dans le cerveau d'une souris de type sauvage montre une absence de marquage. N'oubliez donc pas que manipuler les produits chimiques utilisés dans le double marquage Cox-SCH, selon ce protocole chimique, présente des risques extrêmement élevés, et que des précautions telles que le port d'une tenue de laboratoire appropriée et d'un masque, le travail sous hotte chimique, ainsi que l'élimination du milieu d'incubation, doivent être prises à chaque réalisation de ce dosage.

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Microscopie confocale à balayage est appliqué pour l'imagerie des événements mitochondriaux simples dans le cœur perfusé ou les muscles squelettiques dans les animaux vivants. Surveillance en temps réel des processus mitochondriaux simples tels que les bouffées de superoxydes et les fluctuations potentielles membrane permet l'évaluation de la fonction mitochondriale dans un contexte physiologiquement pertinente et pendant perturbations pathologiques.

Imagerie confocale de simples mitochondriales superoxyde Flashs à coeur Intact ou In Vivo

Nous présentons un protocole sur la façon de recueillir et électronique de processus cryo-tomographie de mitochondries entières. La technique donne un aperçu détaillé de la structure, la fonction et l'organisation de grands complexes de protéines membranaires en membranes biologiques indigènes.

Visualisation de l&#39;ATP synthase dimères dans les mitochondries par cryo-tomographie

Décrit ici est un procédé pour détecter et quantifier les protéines de la membrane externe des mitochondries par immunomarquage des mitochondries isolées à partir de tissus et l'analyse par cytométrie en flux rongeur. Cette méthode peut être étendue à évaluer les aspects fonctionnels des sous-populations mitochondriales.

Immunodétection de la membrane externe de protéines par cytométrie en flux de mitochondries isolées

Méthodes pour la biopsie du vaste externe, préparation de mitochondries purifiées, et le profilage respirométrique sont décrits. L'utilisation de petit volume musculaire rend cette technique convient pour des applications de recherche clinique.

Préparation et respirométrique évaluation des mitochondries isolées de tissu musculaire squelettique Obtenu par biopsie percutanée aiguille

Haute résolution de respirométrie est utilisé pour déterminer la consommation d'oxygène des mitochondries. Cette technique est simple de déterminer les complexes de la chaîne respiratoire mitochondriale »(I-IV) de la fréquence respiratoire, la capacité maximale du système de transport d'électrons mitochondriale, et l'intégrité de la membrane externe mitochondriale.

Haute résolution Respirométrie pour évaluer la fonction mitochondriale dans perméabilisées et des cellules intactes

Nous présentons un protocole pour étudier la distribution des mitochondries et du réticulum endoplasmique dans les cellules entières après modification génétique utilisant la lumière corrélative et la microscopie électronique de volume comprenant la peroxidase d'ascorbate 2 et la coloration de peroxidase de raifort, sectionnement en série des cellules avec et sans le gène cible dans la même section, et imagerie en série par microscopie électronique.

Imagerie des mitochondries et du réticulum endoplasmique par microscopie corrélative de lumière et d'électron de volume

Nous avons développé un protocole pratique et une approche analytique pour évaluer la phosphorylation oxydative mitochondriale et la capacité de transfert d’électrons dans les homogénats tumoraux frais. Ce protocole peut être facilement adapté pour étudier diverses fonctions mitochondriales qui contribuent à l’initiation, à la progression et à la réponse au traitement du cancer.

Détermination analytique de la fonction mitochondriale des homogénats tumoraux solides excisés

La respirométrie à haute résolution couplée à des capteurs de fluorescence détermine la consommation mitochondriale d’oxygène et la génération d’espèces réactives de l’oxygène (ROS). Le présent protocole décrit une technique pour évaluer la fréquence respiratoire mitochondriale et la production de ROS dans le nerf sciatique perméabilisé.

Évaluation de la fonction mitochondriale dans le nerf sciatique par respirométrie à haute résolution

Ce protocole décrit un test comparatif, utilisant des activités complexes mitochondriales CI+CIII et CII+CIII en présence ou en l’absence de Na+, pour étudier l’existence de pools de CoQ fonctionnels partiellement segmentés.

La sensibilité de la membrane mitochondriale interne au Na+ révèle des pools de CoQ fonctionnels partiellement segmentés

Ici, nous présentons une compilation de tests pour mesurer directement la fonction mitochondriale dans les cellules de mammifères indépendamment de leur capacité à consommer de l’oxygène moléculaire.

Tests indépendants de l’oxygène pour mesurer la fonction mitochondriale chez les mammifères

Ici, nous décrivons une méthode complète pour mesurer la phosphorylation oxydative mitochondriale dans les fibres musculaires squelettiques perméabilisées fraîches à partir de muscles humains ou de souris. Cette méthode permet de quantifier en temps réel la respiration mitochondriale et d’évaluer la préférence pour le carburant et la flexibilité métabolique tout en préservant les réseaux mitochondriaux existants et l’intégrité de la membrane.

Mesure de la respiration mitochondriale dans les fibres musculaires squelettiques humaines et murines par respirométrie à haute résolution

Apprenez la double marquage COX/SDH pour visualiser les déficits enzymatiques respiratoires mitochondriaux sur des coupes de tissus frais congelés. Cette technique histochimique aide à diagnostiquer les maladies mitochondriales et les troubles liés au vieillissement.

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Visualisation de la fonction respiratoire mitochondriale utilisant Cytochrome C Oxydase / succinate déshydrogénase (COX / SDH) Double-histochimie étiquetage

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