2 juin 2023
Dans cet article, un protocole d’immunofluorescence multiplex (mIF) manuelle d’amplification du signal tyramide (TSA) combiné à l’analyse d’images et à l’analyse spatiale est décrit. Ce protocole peut être utilisé avec des coupes de paraffine fixées au formol (FFPE) pour la coloration de deux à six antigènes par lame selon le scanner de lames disponible en laboratoire.
Dans notre laboratoire, nous étudions le cancer colorectal humain. Sa progression vers la maladie métastatique et sa réponse au traitement, y compris l’immunothérapie. Nous essayons de trouver de nouveaux biomarqueurs prédictifs et pronostiques en étudiant le microenvironnement immunitaire tumoral et le microbiome intratumoral dans les maladies primaires et métastatiques.
Dans notre projet, nous mettons actuellement en œuvre plusieurs technologies telles que le séquençage de l’ARN, le séquençage de l’exome entier, l’analyse de l’ADN acellulaire circulant par séquençage, l’immunofluorescence et l’hybridation de l’institut de fluorescence. À l’heure actuelle, notre défi majeur est de combiner la coloration par hybridation de l’institut de fluorescence avec l’immunofluorescence multiplex d’amplification du signal tyramide pour étudier l’interaction entre le microbiome et les cellules immunitaires. Notre méthode est robuste, reproductible, facile à utiliser et rentable.
Il peut être installé dans n’importe quel laboratoire possédant un scanner à lumière fluorescente et la méthode peut être utilisée avec n’importe quel anticorps IHC disponible dans le commerce par opposition aux kits disponibles dans le commerce qui sont généralement optimisés pour un panel restreint d’antigènes.
Cet article décrit un protocole pour l'amplification manuelle du signal par tyramide (TSA) en immunofluorescence (mIF) multiplexe combinée à l'analyse d'image et spatiale. La méthode est applicable aux sections enrobées et fixées au formalin (FFPE) pour la coloration de plusieurs antigènes par lame.
Multiplex immunofluorescence (mIF) with spatial image analysis enables high-content, quantitative mapping of the tumor microenvironment (TME), supporting biomarker discovery and mechanistic de-risking in oncology pipelines. This workflow provides actionable insights into immune and stromal cell interactions, informing predictive biomarker strategies and translational research. Its reproducibility and compatibility with diverse antibodies position it as a scalable capability for enterprise-level oncology R&D.
This mIF and spatial analysis workflow bridges early discovery, biomarker validation, and translational research in oncology portfolios.