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JoVE Journal Biochemistry
An Efficient Protocol to Assess ERK Activity Modulation in Early Zebrafish Noonan Syndrome Models via Live FRET Microscopy and Immunofluorescence

Un protocole efficace pour évaluer la modulation de l’activité ERK dans des modèles précoces de poisson zèbre du syndrome de Noonan via la microscopie FRET en direct et l’immunofluorescence

Full Text
748 Views
09:58 min
May 2, 2025

DOI: 10.3791/67831-v

Giulia Fasano1, Valeria Bonavolontà2, Catia Pedalino2, Martina Venditti2, Graziamaria Paradisi2, Stefania Petrini3, Marco Tartaglia2, Antonella Lauri2

1Research laboratories,Ospedale Pediatrico Bambino Gesù, IRCCS, 2Molecular Genetics and Functional Genomics,Ospedale Pediatrico Bambino Gesù, IRCCS, 3Microscopy facility, Research laboratories,Ospedale Pediatrico Bambino Gesù, IRCCS

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Les RASopathies sont des syndromes génétiques multisystémiques causés par l’hyperactivation de la voie RAS-MAPK. Des variants potentiellement pathogènes en attente de validation émergent en permanence alors que de mauvaises preuves précliniques limitent le traitement. Ici, nous décrivons notre protocole in vivo pour tester et valider les niveaux d’activation ERK associés à RASopathy et sa modulation pharmacologique au cours de l’embryogenèse par imagerie FRET en direct chez le poisson-zèbre Teen-reporter.

Nous générons un modèle de poisson-zèbre pour des maladies complexes du développement, en reliant le séquençage des patients à la génomique fonctionnelle, afin de soutenir l’interprétation des variants ainsi que les tests précliniques de médicaments. Malgré l’amélioration des capteurs FRET, un test robuste in vivo détectant des changements pathogènes subtils de la signalisation Ras-MAPK avec une sensibilité spatiotemporale suffisante reste insuffisant. Pour commencer, placez la plaque d’injection personnalisée contenant du 2 % d’agarose moulé dans un milieu E3 sur une plateforme de travail.

Disposez et alignez les œufs fécondés des poissons-zèbres adolescents dans la plaque sur les voies appropriées afin de restreindre le mouvement des œufs lors de la microinjection. Rechargez l’aiguille avec deux microlitres de matériau injectable à l’aide d’une pipette micro-chargeuse. Ajustez les réglages de pression et de temps pour calibrer chaque injection en fonction de l’aiguille et de la qualité de l’embryon sur le dispositif de microinjection.

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