Name: Visualisation par rayons X d’une perfusion ablative intracanalaire à base d’éthanol pour la prévention du cancer du sein dans des modèles de lapin (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-09-12T14:40:00.000+00:00
Duration: 8 min 16 s
Description: Découvrez une technique d'infusion intracanalaire guidée par fluoroscopie pour ablater les cellules épithéliales mammaires chez le lapin. Cette méthode offre une alternative moins invasive à la mastectomie pour la prévention du cancer du sein.

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<ol><li>Siegel, R. L., Kratzer, T. B., Giaquinto, A. N., Sung, H., Jemal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+statistics%2C+2025%5BTitle%5D)+AND+%22CA+Cancer+J+Clin%22%5BJournal%5D)">Cancer statistics, 2025.</a> CA Cancer J Clin. 75 (1), 10-45 (2025).</li>
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</ol>

<table><tbody><tr><td>Loupe 10X avec lumière et pince, grand col de cygne</td><td>Amazone</td><td>B0D982JCZ2</td><td>Pour la visualisation des trayons</td></tr><tr><td>Seringues à insuline Exel International</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-841-31</td><td>Pour l’injection péricanalaire de solution saline</td></tr><tr><td>Aiguilles émoussées en vrac calibre 27 longueur 0,5</td><td>Technologies d’infusion SAI</td><td>B27-50 100 En vrac</td><td>Pour la canulation intracanalaire</td></tr><tr><td>Bleu Evans</td><td>Sigma</td><td>E2129-50G</td><td>Pour la visualisation de la glande mammaire</td></tr><tr><td>Système d’imagerie par rayons X fluoroscopique</td><td>GE Soins de santé</td><td>DT-C31-01&nbsp ; &nbsp ;</td><td>Pour l’acquisition d’images fluroscopie</td></tr><tr><td>Couverture chauffante vétérinaire HotDog</td><td>Hot-dog</td><td>WC71V</td><td>Pour l’intervention intracanalaire/la préparation préopératoire</td></tr><tr><td>Lignes d’extension mâle-femelle, longueur 12 pouces</td><td>Technologies d’infusion SAI</td><td>POSTE 12</td><td>Pour les procédures intracanalaires</td></tr><tr><td>Omnipaque 500 mL (350 mg d’iode/mL)</td><td>GE Soins de santé</td><td>0407-1414-72</td><td>Produit de contraste pour la visualisation par rayons X (fluoroscopie)</td></tr><tr><td>Colorant alimentaire bleu stérile</td><td>Mccormick</td><td>930641</td><td>Pour la visualisation de la glande mammaire</td></tr><tr><td>Solution saline tamponnée au phosphate stérile (PBS)</td><td>ThermoFisher</td><td>14190250</td><td>Pour la préparation de la solution</td></tr><tr><td>Seringues</td><td>BD</td><td>309659</td><td>Pour perfusion intracanalaire</td></tr><tr><td>V-gel</td><td>Docsinnovent</td><td>D30001 à 30006</td><td>Pour l’intubation (le numéro de catalogue dépend de la taille du V-gel)</td></tr><tr><td>Kétoprofène</td><td>Convoitise</td><td>#005488</td><td>Pour l’analgésie</td></tr><tr><td>kétamine</td><td>Convoitise</td><td>71069</td><td>Pour l’analgésie</td></tr><tr><td>Lidocaïne topique</td><td>Covertus</td><td>70859</td><td>Pour l’analgésie</td></tr><tr><td>xylazine</td><td>Convoitise</td><td>80907</td><td>Pour l’anesthésie</td></tr><tr><td>Euthasol</td><td>Convoitise</td><td>#009444</td><td>Pour l’euthanasie</td></tr><tr><td>Lubrifiant pour les yeux</td><td>Convoitise</td><td>75848</td><td>Pour l’anesthésie</td></tr><tr><td>l’atipamézole</td><td>Convoitise</td><td>82124</td><td>Pour l’anesthésie</td></tr><tr><td>Croustilles de banane</td><td>Bio-Serv</td><td>#F7161</td><td>Pour l’acclimatation</td></tr><tr><td>Gemmes de furité</td><td>Bio-Serv</td><td>#F5136-1</td><td>Pour l’acclimatation</td></tr><tr><td>Gouttes de yogourt</td><td>Bio-Serv</td><td>#F7200-1</td><td>Pour l’acclimatation</td></tr></tbody></table>

visualisation par rayons x d’une perfusion ablative intracanalaire à base d’éthanol pour la prévention du cancer du sein dans des modèles de lapin

X-ray Visualization of Intraductal Ethanol-based Ablative Infusion for Prevention of Breast Cancer in Rabbit Models

Chacune des 8 glandes mammaires d’une lapine contient 4 arbres ductaires qui s’ouvrent au niveau d’orifices indépendants des trayons (Figure 2). En raison de la différence de taille et de nombre d’arbres canalaires par glande mammaire entre les rongeurs (seulement 1 conduit par glande mammaire), les lapins sont un bon modèle intermédiaire pour la traduction humaine. Nous pouvons infuser jusqu’à 400 μL de solution d’EtOH à 10-70 % pour remplir tout l’arbre canalaire de n’importe quelle glande mammaire de lapins blancs de Nouvelle-Zélande âgés de 4 mois (Figure 1, Figure 2, Figure 3, Figure 4, 4, 8, 9). Nous pouvons infuser jusqu’à 4 arbres ductaires dans jusqu’à 8 glandes mammaires avec la solution ablative en une seule séance. Un plan expérimental typique consiste à infuser 2 à 3 arbres ductaires dans une seule glande mammaire dans un maximum de 4 glandes mammaires avec une solution ablative particulière contenant un agent de contraste à rayons X à base d’iode (Figure 2,  Figure 3). Pour la solution ablative contenant de l’iohexol (90-300 mg d’iode/mL), une fluoroscopie est effectuée pendant et/ou après chaque perfusion afin de déterminer le succès individuel de la perfusion de chaque arbre canalaire avec une quantité partielle ou totale de solution perfusée (Figure 2, Figure 3). Le prélèvement du tissu de la glande mammaire permet d’évaluer comment les changements de formulation affectent la destruction des cellules épithéliales mammaires (Figure 4). Ces analyses d’imagerie fournissent des informations permettant de comprendre la solution la plus appropriée pour obtenir une ablation maximale tout en minimisant les dommages aux tissus environnants. Nous avons déterminé qu’une solution d’EtOH à 10 % offre un taux d’ablation comparable aux solutions ablatives contenant un pourcentage plus élevé d’EtOH (Figure 4).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68334/68334fig1.jpg"> 
Figure 1 : Déroulement de la procédure intracanalaire. Les étapes clés de la procédure d’identification sont mises en évidence. Veuillez consulter la vidéo pour plus de détails. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68334/68334fig1large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68334/68334fig2.jpg"> 
Figure 2 : Étapes clés de la canulation et de la perfusion intracanalaires. (A) Injection de solution saline perpendiculaire au trayon pour dilater les ouvertures canalaires pour la canulation (vue du plan médian). (B) La canulation et le remplissage d’un arbre canalaire (D1) peuvent être suivis avec un colorant bleu dans la solution ablative (vue du plan médian). (C) L’imagerie par fluoroscopie en temps réel offre un suivi précis et à haute résolution du remplissage de l’arbre canalaire (D1) avec de l’iohexol dans la solution ablative (vue du plan dorsal). Les ouvertures de l’arbre ductal sont numérotées de gauche à droite, en commençant par le quadrant supérieur (D1, quadrant supérieur gauche) et en terminant par le quadrant inférieur (D4, quadrant inférieur droit). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68334/68334fig2large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68334/68334fig3.jpg"> 
Figure 3 : Taille de la tétine et administration réussie de la solution ablative à plusieurs conduits. Présentation typique de la taille des trayons chez les lapins blancs de Nouvelle-Zélande. La taille des trayons varie en fonction du poids et de l’âge du lapin. Les glandes mammaires sont numérotées du haut à gauche (L1, cervicale gauche) au bas à droite (R8, inguinal droit). Toutes les images sont affichées dans le plan dorsal. (A) Lapin vierge de 2,8 kg (en haut) avec des trayons plus petits, difficiles à canuler, lapin vierge de 3,5 kg (au milieu) avec des trayons adaptés à la canulation, et lapin multipare de 4,1 kg (en bas) avec des trayons plus grands, beaucoup plus faciles à canuler. (B) Un colorant alimentaire bleu dans la solution infusée peut être utilisé comme preuve in vivo d’administration intracanalaire et de remplissage de l’arbre canalaire. L’infusion infructueuse est indiquée par un contour rouge (administration du coussinet adieux, en haut) et les perfusions réussies par un contour bleu (administration intracanalale, milieu et bas). Une solution d’EtOH à 70 % cause plus de dommages à la peau (érythème) quelques minutes après la perfusion (bleu foncé, panneau du milieu) qu’une solution à 10 % (bleu clair, panneau inférieur). (C) La fluoroscopie fournit des preuves in vivo d’administration intracanalaire. Infusion infructueuse (administration du coussinet adieux, panneau supérieur). Perfusion séquentielle réussie de D1 ductal d’abord et de D2 d’arbre ductal ensuite (panneau en bas à gauche). La fluoroscopie en direct fournit un guidage d’image pour le remplissage (flèches blanches) de l’arbre canalaire D3 (panneau en bas à droite) ; La ligne d’extension remplie d’une solution ablative contenant de l’iohexol et la pince pour tenir la tétine sont également visibles. Les barres d’échelle correspondent à 1 cm dans les images à différents grossissements. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68334/68334fig3large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/68334/68334fig4.jpg"> 
Figure 4 : Analyse tissulaire des glandes mammaires chez des lapins blancs de Nouvelle-Zélande après procédure intracanalaire avec une solution ablative à base d’éthanol. (A-B) Coloration H&amp;E représentative d’une glande mammaire inguinale droite d’un animal de 4 mois sans traitement ablatif par rapport à une glande mammaire inguinale droite d’un autre animal avec un traitement ablatif à 10 % d’EtOH. Les tranches de tissu sont coupées le long du plan médian, de sorte que D1 et D3 (arbres ductaires gauches) sont représentés sur les mêmes coupes de tissus. La vue du tissu entier (A) et la vue à fort grossissement (B) montrent les effets morphologiques et chromatiques de l’ablation par l’EtOH sur la coloration H&amp;E (panneaux supérieurs) et les classes de cellules épithéliales et stromales déduites sur la base d’un classificateur entraîné par ordinateur (panneaux inférieurs). La barre d’échelle noire correspond à 1 mm en A et la barre d’échelle blanche à 100 μm en B. (C) La barre graphique montre la distribution des classes de cellules dans les arbres ductaires (n &gt; 4 par groupe) traités avec différentes concentrations d’EtOH ou non traités. Les astérisques indiquent la valeur p du test t de Welch non apparié de chaque classe de cellules par groupe par rapport à sa classe de cellules correspondantes dans le groupe traité à 10 % par EtOH (* &lt;0,05, ** &lt; 0,01, **** &lt;0,0001). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/68334/68334fig4large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>

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