Name: Modèle murin d’embolie microvasculaire pour microscopie à deux photons in vivo utilisant des microspheres en polystyrène fluorescent (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-11-21T12:40:00.000+00:00
Duration: 8 min 29 s
Description: Découvrez un modèle d'embolie microvasculaire chez la souris pour imagerie in vivo par microscopie à deux photons utilisant des microsphères fluorescentes. Cette méthode permet d'étudier les effets de l'obstruction capillaire sur le flux sanguin cérébral.

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<table><tbody><tr><td>Aiguille de calibre 27 (0,1x16 mm)</td><td>Terumo</td><td>-</td><td>Aiguille calibre 27 (Étape 2.1.2.)</td></tr><tr><td>Logiciel Articulus</td><td>-</td><td>-</td><td>Logiciels d’analyse 3D (Étapes 4.2.2 & 4.3.3)</td></tr><tr><td>Bétadine 30 ml (100 mg/ml)</td><td>Mylan</td><td>8712207037612</td><td>Bétadine/iode (Étape 1.1.8. & 2.2.10.)</td></tr><tr><td>C& Monomère B</td><td>Sun Medical</td><td>7111</td><td>Composant de la super glue (Étape 1.3.1.)</td></tr><tr><td>Lames chirurgicales en acier au carbone (n°15)</td><td>Swann-Morton</td><td>205</td><td>Lame pour griffer le crâne (Étape 1.2.4.)</td></tr><tr><td>Carprofène (50 mg/ml)</td><td>Zoetis</td><td>-</td><td>Médicaments antidouleur (étapes 1.1, 1.6, 2.2 & 2.8)</td></tr><tr><td>Catalyseur</td><td>Sun Medical</td><td>7110</td><td>Composant de la super glue (Étape 1.3.1.)</td></tr><tr><td>Cathéter (DI 0,31 DO 0,64 mm)</td><td>Freudenberg</td><td>228-0661</td><td>Cathéter transparent (Étape 2.1.1.)</td></tr><tr><td>Crochet de mouchoir fabriqué par Costom</td><td>-</td><td>-</td><td>Crochet de mouchoir (Étape 2.3.4)</td></tr><tr><td>Pointes en coton</td><td>-</td><td>-</td><td>Embout de coton (Étapes 1.1.8, 1.2.4 & 1.5.1.)</td></tr><tr><td>Verre de couverture</td><td>Instruments Warner</td><td>64-0724</td><td>Verre de couvercle crânien (Étape 1.4.2.)</td></tr><tr><td>Barre de tête de souris sur mesure</td><td>-</td><td>-</td><td>Barre de tête pour le support d’imagerie (Étape 1.3.2.)&nbsp ;</td></tr><tr><td>Support d’imagerie souris personnalisé & nbsp ;</td><td>-</td><td>-</td><td>Support de souris d’imagerie (Étape 1.4.1. & 3.1.1.)</td></tr><tr><td>Cadre stéréotaxique sur mesure</td><td>-</td><td>-</td><td>Cadre stéréotaxique (Étape 1.1.7.)</td></tr><tr><td>Fluide de cament dentaire</td><td>Kulzer</td><td>64707937</td><td>Composant du ciment dentaire (Étape 1.3.3.)</td></tr><tr><td>Poudre de ciment dentaire</td><td>Kulzer</td><td>64707945</td><td>Composant du ciment dentaire (Étape 1.3.3.)</td></tr><tr><td>Perceuse dentaire & nbsp ;</td><td>Saeshin</td><td>&nbsp ; L-206</td><td>Exercice (Étape 1.4.3.)</td></tr><tr><td>Dexaméthasone (4 mg/ml)</td><td>Centrafarm</td><td>-</td><td>Médication préopératoire (Étape 1.1.4.)</td></tr><tr><td>Pinces de dissection</td><td>Braun-Aesculap</td><td>BD023R</td><td>Pinces (Étape 1.2.2. & 2.3.2.)</td></tr><tr><td>mèche à meule de forage PK/100,5 (0,5 mm)</td><td>Sciences fines</td><td>19007-05</td><td>Mèche de forage (Étape 1.4.3.)</td></tr><tr><td>Duratears (3,5 g)</td><td>Alcon</td><td>-</td><td>Pommade oculaire (Étape 1.1.8 & 2.2.7.)</td></tr><tr><td>Colle époxy (1g)</td><td>Pattex</td><td>9H PSMG3X</td><td>Colle époxy (Étape 1.5.2. & 2.1.1.)</td></tr><tr><td>Micropinces fines droites</td><td>Outils scientifiques de qualité</td><td>Dumont #5</td><td>Micro-pinces fines (Étape 2.6.6.)</td></tr><tr><td>FITC-Dextrane (70 KDa)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>FD70S</td><td>Solution FITC-Dextran (Étape 2.5.2.)</td></tr><tr><td>Isoflurane (1000 mg/g)</td><td>Laboratorios Karizoo S.A.</td><td>118938</td><td>Anesthésie (Étape 1.1.6. & 2.2.5.)</td></tr><tr><td>grand cryomicrotome d’imagerie fluorescente 3D &nbsp ;</td><td>Sur mesure</td><td>-</td><td>grands-3D-FICS (Étape 4.3.3)</td></tr><tr><td>Lidocaïne (100 mg/ml)</td><td>Aspen</td><td>-</td><td>Anesthésie locale (Étapes 1.2.3 & 2.2.10)</td></tr><tr><td>Microciseaux Vannas 3-3/8 Pouce</td><td>Braun-Aesculap</td><td>OC498R</td><td>Microciseaux (Étape 2.6.2)</td></tr><tr><td>Micro suture de serrage des pinces avec poignée ronde</td><td>Braun-Aesculap</td><td>FD280R</td><td>Microforéceptiques (Étape 2.3.3.)</td></tr><tr><td>Micro suture pour attacher des pinces avec poignée ronde courbée</td><td>Braun-Aesculap</td><td>FD281R</td><td>Microforécepts pliés (Étape 1.5.1. & 2.3.3.)</td></tr><tr><td>Micro clip vasculaire</td><td>Braun-Aesculap</td><td>FD562R</td><td>Clip de vaisseau (Étape 2.6.1.)</td></tr><tr><td>Micro-cathéter (PE 0,23114 mm diamètre 0,27432 mm)</td><td>Microlumen</td><td></td><td>Micro-cathéter (Étape 2.1.1.)</td></tr><tr><td>Tapis chauffant de souris et sonde rectale</td><td>Stoelting</td><td>53800R</td><td>Bouillotte (Étape 1.1.2 & 2.2.2.)</td></tr><tr><td>Souris NG2-DsRed</td><td>Jackson Laboratory, Bar Harbor, États-Unis, stock n° 008241</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Monolaurate de sorbitan de polyéthylène glycol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>9005-64-5</td><td>Tween20 (Étape 2.5.2.)</td></tr><tr><td>Polystyrène FluorSpheres Blue (365/415)</td><td>Invitrogen</td><td>F8829</td><td>Microsphères bleues (Étape 2.5.1.)</td></tr><tr><td>Polystyrène FluorSpheres rouge (580/605)</td><td>Invitrogen</td><td>F8834</td><td>Microsphère rouge (Étape 2.5.1.)</td></tr><tr><td>Cage de récupération</td><td>-</td><td>-</td><td>Cage de récupération (Étapes 1.6.2 & Étapes 2.8.2.)</td></tr><tr><td>Découpe inversée de l’aiguille courbe 3/8 (12 mm) avec suture</td><td>Bbraun</td><td>0762067</td><td>Suture (Étape 2.7.5)</td></tr><tr><td>Ropivaca & iuml ; Ne (2 mg/ml)</td><td>-</td><td>-</td><td>Médicaments&nbsp ; (Étape 1.1.5.)</td></tr><tr><td>petit Cryomicrotome d’imagerie fluorescente 3D ; &nbsp ;</td><td>Sur mesure</td><td></td><td>Petites-3D-FICS (Étape 4.2.2)</td></tr><tr><td>Spongostan</td><td>Ethicon</td><td>MS0005</td><td>Spongostan (Étape 1.4.6.)</td></tr><tr><td>Microscope chirurgical</td><td>Euromex Microscopen B.V.</td><td>NZ.1903-B</td><td>Microscope pour la chirurgie (Étape 1.2. 2.1.1.)</td></tr><tr><td>Ciseaux chirurgicaux</td><td>Braun-Aesculap</td><td>BC303R</td><td>Ciseaux chirurgicaux (Étape 1.2.2. & 2.3.2.)</td></tr><tr><td>Pompe à seringue (pour seringues de 1 ml)</td><td>Appareil Havard</td><td>70-2208</td><td>Pompe à seringue de 1 ml (Étape 2.5.6.)</td></tr><tr><td>Fil, 100 m, et nbsp ; 4/0 1,5&nbsp ; &nbsp ;</td><td>Bbraun</td><td>F1134035</td><td>Fils de discussion 4/0.15 (Étape 2.4.3)</td></tr><tr><td>Souris TIE2-GFP</td><td>Jackson Laboratory, Bar Harbor, États-Unis, stock n° 003658</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plumer ultra pur</td><td>Thorlabs</td><td>CA6-EU</td><td>Air comprimé (Étape 1.2.5.)</td></tr><tr><td>Transparent polymère universel</td><td>Sun Medical</td><td>T058E</td><td>Composant de la super glue (Étape 1.3.1.)</td></tr></tbody></table>

modèle murin d’embolie microvasculaire pour microscopie à deux photons in vivo utilisant des microspheres en polystyrène fluorescent

Microvascular Embolism Mouse Model for In Vivo Two-photon Microscopy Using Fluorescent Polystyrene Microspheres

Modèle murin d’embolie microvasculaire pour microscopie à deux photons in vivo utilisant des microspheres en polystyrène fluorescent

Microvascular occlusions in the brain are relatively common but remain largely understudied. The event rate, long-term consequences, and potential ...

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Combiné proche infrarouge imagerie fluorescente et la tomographie par Micro-calculé pour Directement Visualizing cérébrale thromboembolies

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Découvrez un modèle d'embolie microvasculaire chez la souris pour imagerie in vivo par microscopie à deux photons utilisant des microsphères fluorescentes. Cette méthode permet d'étudier les effets de l'obstruction capillaire sur le flux sanguin cérébral.

Modèle murin d’embolie microvasculaire pour microscopie à deux photons in vivo utilisant des microspheres en polystyrène fluorescent (Vidéo) | JoVE Journal

Modèle murin d’embolie microvasculaire pour microscopie à deux photons in vivo utilisant des microspheres en polystyrène fluorescent

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