26 בנובמבר 2010
גרורות הריאה ניסיוניים מודל CTL עכבר חיסוני לניתוח האינטראקציה תאים סרטניים תא-T In vivo.
המטרה הכללית של פרוצדורה זו היא לבחון את היעילות של אימונותרפיה באמצעות העברה אדופטיבית של תאי T ספציפיים לגידול in vivo. דבר זה מושג תחילה על ידי השתלת תאי גידול באמצעות הזרקה לווריד הזנב הצדי בעכברים, במטרה ליצור גרורות בריאות. השלב השני של הפרוצדורה הוא טיפול בעכברים הנושאי גידול באמצעות לימפוציטים T ציטוטוקסיים CTLs ספציפיים לגידול.
השלב הסופי הוא שימוש בדיו הודו (India ink) כאמצעי להדמיה וכמותית של קשרי גידול. בסופו של דבר, ניתן להוציא תוצאות המראות את ה-CIE של טיפולים שונים באמצעות מדידת גודל הגידול וכבידה כמותית של מספר קשרי הגידול. שלום, שמי מרי צימרמן ואני חברה במעבדתו של ד"ר קווין לו במכללה לרפואה של ג'ורג'יה.
שלום, שמי Shelene Hu. אני סטודנטית בשנה השנייה ואני עובדת גם במעבדתו של Dr.Lou. היתרון המרכזי של טכניקה זו על פני שיטות מסורתיות, כגון עקומות הישרדות, הוא שפרוצדורה זו היא איכותנית וכמותית כאחד. המשמעויות של הטכניקות הללו עשויות להתרחב לטיפול בסרטן, כיוון שהן מדמות אימונותרפיה אדופטיבית של תאי T בחולי סרטן בבני אדם.
בואו נתחיל. ביום שלפני הזרקות תאי הגידול, זרעו בבקבוק T 75 עד 1×10⁷ תאי CMS4 ב-10 milliliters של מצע RPMI המכיל 10% serum. כדי לקבל תאי גידול בעלי קצב צמיחה מהיר, הדגירו למשך לילה ב-37 °C ביום ההזרקה.
הסיר את המדיום ושטוף את התאים פעם אחת עם PBS, לאחר מכן קצור את תאי הגידול באמצעות 0.05%trypsin EDTA בטמפרטורה של 37 degrees Celsius למשך חמש דקות. עצור את התגובה באמצעות 10 milliliters של מדיום RPMI המכיל 10%serum. העבר את התאים למבחנה קונית.
סובב את התאים במהירות של 1300 RPM בצנטריפוגת val legend RT למשך שלוש דקות. בטמפרטורת החדר, הסר את העלייה, השהה מחדש את התאים ב-10 milliliters של one XHB Ss טרי לשטיפה. לאחר מכן, סובב שוב והשהה מחדש באותו אופן.
ספרו את תאי הגידול באמצעות hemo.Cytometer. דללו את התאים ב-HBSS כך שהתאים הדרושים לכל הזרקה יהיו תלויים שנית. בנפח כולל של 100 microliters חממו את עכברי B SEA בני שש עד שמונה שבועות בתוך כלי זכוכית טבול במים חמים.
כדי להרחיב את וריד הזנב, מקמו את העכבר במכשיר קיבוע לוריד הזנב על השולחן. השתמשו במזרק מיקרו כדי להזריק 100 µL של תאי גידול לתוך וריד הזנב הצדי. השתמשו בטכניקה סטרילית כדי למנוע זיהום לאחר ההזרקה.
הפעילו לחץ קל על נקודת ההזרקה עד להפסקת הדימום. החזירו את העכבר לכלוב ואפשרו לגידול לגדול עד לשלב הרצוי. ביום ההעברה, בצעו פיפוט למעלה ולמטה כדי לערבב מחדש לימפוציטים T ציטוטוקסיים מטוהרים או CTLs שהוכנו.
כפי שמתואר בטקסט, העבירו את כל התאים מלוח אחד לשפופרת קונית של 15 מיליליטר, מבלי שהנפח יעלה על שני שלישים מהשפופרת. הכניסו פיפט פסטור סטרילית לשפופרת הקונית והוסיפו בשכבה מתווך להפרדת לימפוציטים או LSM מתחת לתאים, עד שהנפח הכולל יתקרב ל-14 מיליליטר.
הקפידו לא להפריע לשכבות. צנטריפוגו במהירות של 2000 RPM למשך 20 דקות בטמפרטורת החדר. אין להשתמש בבלם להאטת הרוטור לאחר הסבב, והעבירו את ה-CTLs למבחנה קונית חדשה של 15 מיליליטר.
הוסיפו HBSS עד לנפח של כ-10 milliliters לצורך שטיפה. ספרו את התאים וסבבו במהירות של 1300 RPM למשך חמש דקות בטמפרטורת החדר, ולאחר מכן השהו שוב ב-HBSS עד לצפיפות התאים הנדרשת להזרקות.
שמרו על נפח כולל של 100 µL לכל הזרקה. השתמשו בטכניקת ההזרקה לזנב כפי שהודגמה קודם לכן בסרטון זה. כדי להזריק את ה-CTLs לעכברים עם גידול, החזירו את העכבר לכלוב ואפשרו ל-CTLs לבוא באינטראקציה עם הגידול.
עכברים מוקרבים בדרך כלל לצורך אנליזה 14 עד 21 ימים לאחר הטיפול ב-CTL. כדי להדגים גרורות בריאות, הניחו עכבר שהוקרב על גבו על לוח קלקר. הצמידו את הרגליים בעזרת סיכות כדי להבטיח גישה ללא הפרעה לקנה הנשימה.
רססו את הצד הגחוני ב-70% ethanol החל מאמצע הבטן. השתמשו במספריים כדי לגזור לאורך קו האמצע דרך כלוב הצלעות כלפי מעלה לכיוון בלוטות הרוק. חשפו את הטרכיאה.
השתמשו בפינצטה כדי להסיר רקמות המקיפות את הקנה. השהילו טיפ של פיפטה בנפח 200 microliter מתחת לקנה תוך החזקת הטיפ ביד אחת. הרימו בעדינות את הקנה כלפי מעלה והרחיקו אותו מהגוף.
סובב את הפלטפורמה ב-180 מעלות. השתמש במזרק של 50 milliliter כדי להזריק דיו הודו לתוך הריאות דרך הקנה. נפח את הריאות לחלוטין עם הדיו עד שתרגיש התנגדות חזקה.
השתמשו במספריים כדי לחתוך את הקנה. החליקו פינצטה מתחת לריאות והרימו אותן מתוך העכבר. שטפו את הריאות לזמן קצר בביקר של ליטר מים בתוך מנדף כימי.
העבירו את הריאות למתקן זכוכית המכיל חמישה מיליליטר של תמיסת FTI. רקמת הגידול תופיע כנגעיים לבנים על רקע הריאות השחורות. לאחר מספר דקות, ניתן לספור את הגידולים ולשמור אותם בתמיסת FTI לזמן בלתי מוגבל.
ריאות של עכברים שעברו טרנספקציה של קרצינומה של בלוטת החלב. בשורת התאים 4T1 נראים כתמים לבנים המעידים על גידולים. עכברים שעברו טרנספקציה של IRF8 דומיננטי-שלילי עם מוטציה K79E מראים פוטנציאל גרורתי מוגבר של תאי הגידול.
תמונות אלו מציגות ניתוח היסטולוגי של יעילות אימונותרפיה באמצעות העברה אדופטיבית של CTL. עכברים עם גידולים שהוזרק להם תמיס סליין הפגינו מספר גידולים שישה ימים לאחר מכן, כפי שמסומן בחצים. לעומת זאת, עכברים שהוזרקו להם תאי T ספציפיים לגידול הראו הפחתה במספר הגידולים באותו ניסוי.
טיפול בדיו הודו (India ink) מספק דרך פשוטה יותר למדידת היעילות של העברה מאומצת של CTL. כאן, קשרי הגידול הלבנים בריאות הנושאות גידול מבדילים אותן בבירור מריאות שעברו בהצלחה העברה מאומצת של CTL, וספירת הקשרי הגידול מאפשרת רמה של כימות שאינה אפשרית בבדיקה היסטולוגית. בעת ביצוע הליך זה, חשוב לזכור לחמם את העכברים כדי להקל ולהבטיח דיוק רב יותר בהזרקות לווריד הזנב.
לאחר צפייה בסרטון זה, אמורה להיות לכם הבנה טובה לגבי האופן שבו ניתן להעריך את יעילות הטיפול באמצעות הליך פשוט זה לכימות גודל ומספר הגידולים. תודה לצפייה ובהצלחה בניסוייכם.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מחקר זה מציג מודל ניסויי לניתוח אינטראקציות בין תאי גידול לתאי T in vivo, תוך התמקדות בגרורות ריאה ובאימונותרפיה. הפרוצדורה כוללת השתלה של תאי גידול לעכברים וטיפול בהם באמצעות לימפוציטים T ציטוטוקסיים (CTLs) כדי להעריך את יעילות הטיפול.
מודל זה מאפשר הערכה פרה-קלינית של אימונותרפיה באמצעות העברה אדופטיבית של תאי T, על ידי כימות עומס הגריעות בריאות in vivo. הוא תומך בתיקוף המטרה ובהפחתת סיכונים מכניסטיים על ידי קישור פעילות CTL להפחתה במספר קשרי הגומלין של הגידול. הבדיקה מספקת ביטחון חיזוי עבור מועמדים לאימונותרפיה לפני אופטימיזציה של המולקולות המובילות.
המודל משתלב ברצף הגילוי, החל מתיקוף המטרה ועד לזיהוי מוביל (lead identification), ומספק מערכת בעלת יכולת גרורות לסריקת אימונותרפיה.