-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Genetics
מעקב ברמת הגנום של שגיאות תיעתוק היצורים האיקריוטים
מעקב ברמת הגנום של שגיאות תיעתוק היצורים האיקריוטים
JoVE Journal
Genetics
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Genetics
Genome-wide Surveillance of Transcription Errors in Eukaryotic Organisms

מעקב ברמת הגנום של שגיאות תיעתוק היצורים האיקריוטים

Full Text
9,829 Views
09:30 min
September 13, 2018

DOI: 10.3791/57731-v

Clark Fritsch1,2, Jean-Francois Pierre Gout3,4, Marc Vermulst1

1Center for Mitochondrial and Epigenomic Medicine,Children's Hospital of Philadelphia, 2Department of Cellular and Molecular Biology,University of Pennsylvania, 3Department of Biological Sciences,Mississippi State University, 4Center for Mechanisms of Evolution, Biodesign Institute,Arizona State University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

פרוטוקול זה מספק חוקרים עם כלי חדש כדי לפקח על הנאמנות של שעתוק אורגניזמים דגם מרובים.

שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בתחום מוטגנזה שעתוק כגון אילו יחידות משנה של RNA פולימראז או תהליכים ביולוגיים שולטים בנאמנות השעתוק. היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא בכך שהיא מאפשרת מדידה של שגיאות שעתוק אנדוגניות בתעתיקים של אורגניזמים אוקריוטיים. בדרך כלל, אנשים חדשים בפרוטוקול זה יתקשו בגלל האורך והמורכבות של הבדיקה והצורך בביואינפורמטיקה מתקדמת על מנת לפרש את הנתונים.

כדי להתחיל בפרוטוקול, הקיפו את שברי ה-RNA על ידי דנטורציה בחום של 20 מיקרוליטר מהדגימה שהוכנה קודם לכן ב-65 מעלות צלזיוס למשך דקה אחת. לאחר דקה אחת, הניחו מיד את הדגימה על קרח למשך שתי דקות. לאחר מכן, הוסף ארבעה מיקרוליטר של 10x T4 RNA ligase buffer, ארבעה מיקרוליטר של 10 מילי-מולר ATP, מיקרוליטר אחד של מעכב RNase, מיקרוליטר אחד של מים ללא נוקלאז ושמונה מיקרוליטר של 50% פוליאתילן גליקול, או PEG.

לאחר מכן מערבבים היטב את הדגימה על ידי מערבולת. לאחר מכן הוסף שני מיקרוליטר של 10 יחידות למיקרוליטר של T4 RNA ligase אחד. מערבבים שוב את הדגימה על ידי פיפטינג ומדגרים אותה בחום של 25 מעלות צלזיוס למשך שעתיים בתרמוסייקלר כאשר טמפרטורת המכסה מוגדרת על 30 מעלות צלזיוס.

לאחר הדגירה של שעתיים, הוסף לדגימה 10 מיקרוליטר מים נטולי נוקלאז ונקה את הדגימה עם ערכת ניקוי וריכוז אוליגו. יש להוציא את הדגימה ב-20 מיקרוליטר של מים נטולי נוקלאז. כדי לתמלל לאחור את מולקולות ה-RNA המעגליות, הוסף ארבעה מיקרוליטרים של 10 מילי-מולר dNTPs, ארבעה מיקרוליטרים של 50 ננוגרם לכל מיקרוליטר הקסמרים אקראיים, ותשעה מיקרוליטרים של מים נטולי נוקלאז לתשעה מיקרוליטרים של RNA.

מערבבים היטב על ידי פיפטינג ומנטרלים את הדגימה ב-65 מעלות צלזיוס למשך דקה אחת. לאחר דנטורציה של הדגימה, הניחו אותה על קרח למשך שתי דקות. הוסף לדגימה שמונה מיקרוליטר של מאגר סינתזת גדיל ראשון פי 5, שני מיקרוליטר של 0.1 מילי-מולר DTT, וארבעה מיקרוליטר של 200 יחידות למיקרוליטר טרנסקריפטאז הפוך וערבב על ידי פיפטינג.

דגרו את הדגימה בטמפרטורה של 25 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות כשהמכסה מוגדר בחמש מעלות צלזיוס גבוה מטמפרטורת הדגירה. לאחר מכן דגרו את הדגימה למשך 20 דקות בחום של 42 מעלות צלזיוס כשהמכסה מוגדר על 47 מעלות צלזיוס. יש להוציא את הדגימה ב-42 מיקרוליטר של תמיסת פליטה לאחר הניקוי עם ערכת הניקוי והריכוז.

השתמש בערכת סינתזת הגדיל השני כדי ליצור ספריית cDNA דו-גדילית. הניחו את הדגימות על קרח והוסיפו 30 מיקרוליטר של מי NF ל-38 מיקרוליטר מהדגימה שלכם. לאחר מכן, הוסיפו שמונה מיקרוליטרים של מאגר גדיל שני פי 10 וארבעה מיקרוליטרים של אנזים גדיל שני וערבבו את הדגימה על ידי פיפטינג עדין לפני הדגירה ב-16 מעלות צלזיוס למשך שעתיים וחצי.

נקו את הדגימות עם ערכת הניקוי והריכוז של האוליגו לתגובות של 100 מיקרוליטר והשליכו את הדגימות ב-38 מיקרוליטר של מים נטולי נוקלאז. מערבבים את תגובת תיקון הקצה על ידי פיפטינג ודוגרים אותה בחום של 20 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות. עקוב אחר הדגירה של 20 מעלות צלזיוס עם דגירה של 30 דקות ב-65 מעלות צלזיוס.

ראשית, יש לדלל את המתאמים לריצוף הדור הבא פי עשרה ב-10 מילי-מולר טריס HCl לריכוז סופי של 1.5 מיקרו-מולר. לאחר מכן הוסף 2.5 מיקרוליטר של מתאם מדולל ומיקרוליטר אחד של משפר קשירה לכל דגימה וערבב אותם על ידי מערבולת. לאחר מכן, הוסף 15 מיקרוליטר של תערובת מאסטר TA ליגאז בוטה.

פיפטו את הדגימה למעלה ולמטה כדי לערבב ולדגור אותה בחום של 20 מעלות צלזיוס למשך 15 דקות. לאחר מכן, הוסף שלושה מיקרוליטרים של אנזים ריאגנט כריתה ספציפי לאורציל ודגר את הדגימה ב-37 מעלות צלזיוס למשך 15 דקות. לאחר השלמת הקשירה, הוסף לדגימה 13.5 מיקרוליטר מים נטולי נוקלאז לנפח כולל של 100 מיקרוליטר והמשך לבחירת הגודל.

אקלום חרוזים מגנטיים לטמפרטורת החדר. הוסף 30 מיקרוליטר של חרוזים מגנטיים מתואמים ותלויים לכל דגימה וערבב על ידי פיפטינג. העבירו את הדגימה לצינור של 1.5 מיליליטר ודגרו אותה בטמפרטורת החדר למשך חמש דקות.

הניחו את הדגימה על מעמד מגנטי למשך חמש דקות כדי להפריד את החרוזים מהסופרנטנט. העבירו את הסופרנטנט לצינור חדש של 1.5 מיליליטר והשליכו את החרוזים המגנטיים. הוסף אליקוט טרי של 15 מיקרוליטר חרוזים מגנטיים לכל דגימה.

מערבבים היטב על ידי פיפטינג ודוגרים במשך חמש דקות בטמפרטורת החדר. הניחו את הדגימות על מתלה מגנטי ודגרו אותן במשך חמש דקות בטמפרטורת החדר. לאחר מכן הסר בזהירות והשליך את הסופרנטנטים, והקפד לא להפריע לחרוזים.

הוסף 200 מיקרוליטר של 80% אתנול טרי שהוכן לכל אחת מהדגימות מבלי להפריע לחרוזים המגנטיים הגלולים ודגירה למשך 30 שניות. לאחר מכן, הסר לחלוטין כל זכר לאתנול מהדגימות וייבש את החרוזים באוויר למשך חמש דקות, אך היזהר לא לייבש יתר על המידה את החרוזים. כדי להוציא את הדגימות מהחרוזים, הסר את הצינורות מהמעמד המגנטי.

הוסף 19 מיקרוליטר של 10 מילי-מולר טריס HCl. פיפט את התערובת למעלה ולמטה מספר פעמים כדי להשהות מחדש את החרוזים ולדגור את הדגימות למשך חמש דקות בטמפרטורת החדר. הניחו את הדגימות בחזרה על המעמד המגנטי ודגרו אותן למשך חמש דקות כדי להפריד את החרוזים מהסופרנטנט.

הסר בזהירות 15 מיקרוליטר של הסופרנטנט המכיל את ספריות ה-cDNA המטוהרות שנבחרו בגודל מהצינורות והעביר אותו לצינור טרי של 1.5 מיליליטר. הוסף חמישה מיקרוליטר של פריימר אוניברסלי וחמישה מיקרוליטר של פריימר אינדקס ייחודי לכל ספריית cDNA מטוהרת וערבב אותם היטב על ידי פיפטינג. בדוק בזהירות את תערובת המאסטר פולימראז לאיתור גבישים ומשקעים אחרים וחמם את תערובת המאסטר ביד עד שהמשקעים נמסים.

הוסף לדגימה 25 מיקרוליטר מתערובת המאסטר פולימראז. מערבבים את הדגימה על ידי פיפטינג ופועלים לפי תנאי הרכיבה המפורטים בפרוטוקול הטקסט הנלווה להגברת ה-PCR. נקה את הספריות הסופיות על ידי הוספת 45 מיקרוליטר של חרוזים מגנטיים תלויים ישירות לתגובת ה-PCR.

מערבבים אותם על ידי פיפטינג ודוגרים אותם בטמפרטורת החדר למשך חמש דקות. העבירו את הדגימה לצינור של 1.5 מיליליטר והניחו אותה במעמד מגנטי למשך חמש דקות. לאחר הדגירה, יש להשליך את הסופרנטנט ולשטוף אותו פעמיים עם אתנול 80% טרי שהוכן למשך 30 שניות.

לאחר הכביסה השנייה, הסר לחלוטין את האתנול מהדגימה וייבש באוויר את כדור החרוזים למשך חמש דקות. לאחר מכן יש לשטוף אותו ב-35 מיקרוליטר של 0.1x TE. השעו מחדש את החרוזים על ידי פיפטינג שלהם ודגרו אותם בטמפרטורת החדר למשך חמש דקות. לאחר שהשפופרת הייתה על המעמד המגנטי במשך חמש דקות, העבירו 30 מיקרוליטר של הסופרנטנט לצינור טרי של 1.5 מיליליטר.

אחסן את הספריות במינוס 80 מעלות צלזיוס. לאחר בידוד ה-RNA, שני שיאי rRNA נפרדים נראים באלקטרופורטוגרמה. פיצול של ה-RNA יביא ל-50 עד 70 מקטעי RNA של זוגות בסיסים.

שעתוק הפוך של מעגל מתגלגל שימש ליצירת מולקולות cDNA המורכבות מלפחות שלוש חזרות טנדם של תבניות ה-RNA המעגליות. בחירת גודל עם חרוזים מגנטיים מאפשרת לטהר ספריות בגודל המתאים. מידע רצף של ספריית C-seq בודדת מראה שרוב החזרות נוטות להיות באורך של 45 עד 80 בסיסים.

כ-50% מהבסיסים שרוצפו הם חלק מהחזרות הללו. מכיוון שרוב הבסיסים הללו קיימים בקצבים המכילים שלוש חזרות או יותר, מספר הבסיסים הייחודיים המרוצפים הוא כשליש מהמספר הכולל של הבסיסים המרוצפים. לאחר ששולטים בה, ניתן לבצע טכניקה זו תוך יומיים-שלושה אם היא מבוצעת כראוי.

בעת ניסיון הליך זה, חשוב לשמור תמיד על סביבת עבודה סטרילית, נקייה מ-RNAs שעלולים להפריע לעבודה שלך. כמו כן, חשוב לעקוב בקפידה אחר כל שלב כדי להבטיח שלא נעשות טעויות במהלך ההליך. לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד למדוד שגיאות תמלול באיקריוטים באמצעות מבחן C-seq.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

גנטיקה גיליון 139 תהליכים גנטיים ביטוי גנים שעתוק גנטית שעתוק לאחור Transcriptome מוטגנזה מכוונת החלפת חומצת אמינו תופעות ותהליכים תופעות גנטיות מוטגנזה מכוונת שעתוק RNA-Seq ס cerevisiae C. elegans ד melanogaster רצף RNA פולימראז שגיאות

Related Videos

הקרנה עבור וריאנטים גנטיים ללא קידוד תפקודיים באמצעות ניידות Electrophoretic Shift Assay (Emsa) ו Assay משקע זיקת DNA (DAPA)

11:35

הקרנה עבור וריאנטים גנטיים ללא קידוד תפקודיים באמצעות ניידות Electrophoretic Shift Assay (Emsa) ו Assay משקע זיקת DNA (DAPA)

Related Videos

13.3K Views

שיטת שבב exo: זיהוי אינטראקציות חלבון-דנ"א עם Precision סמוך לבסיס זוג

09:27

שיטת שבב exo: זיהוי אינטראקציות חלבון-דנ"א עם Precision סמוך לבסיס זוג

Related Videos

17.1K Views

ניתוח של הפסקת תמלול שימוש BrUTP גדיל ספציפי התמלול Run-על (TRO) גישה

12:12

ניתוח של הפסקת תמלול שימוש BrUTP גדיל ספציפי התמלול Run-על (TRO) גישה

Related Videos

10.1K Views

מיפוי רחב של הגנום של אינטראקציות DNA-חלבון עם CHEC-Seq ב Saccharomyces cerevisiae

10:43

מיפוי רחב של הגנום של אינטראקציות DNA-חלבון עם CHEC-Seq ב Saccharomyces cerevisiae

Related Videos

11.5K Views

ניתוח בזמן אמת של גורם שעתוק כריכה, תמלול, תרגום, מחזור ולהציג אירועים גלובליים במהלך ההפעלה הסלולרית

12:54

ניתוח בזמן אמת של גורם שעתוק כריכה, תמלול, תרגום, מחזור ולהציג אירועים גלובליים במהלך ההפעלה הסלולרית

Related Videos

13.9K Views

הגנום משופרת עריכה עם Cas9 Ribonucleoprotein שונים תאים ואורגניזמים

09:51

הגנום משופרת עריכה עם Cas9 Ribonucleoprotein שונים תאים ואורגניזמים

Related Videos

35.1K Views

מסכי אחד-היברידית משופרת שמרים לזהות גורם שעתוק מחייב את רצפי דנ א אנושי

11:25

מסכי אחד-היברידית משופרת שמרים לזהות גורם שעתוק מחייב את רצפי דנ א אנושי

Related Videos

8.4K Views

כרומטין Immunoprecipitation שימוש בנוקלאוסים מיקרוקוקל בתאי מיונקים

11:42

כרומטין Immunoprecipitation שימוש בנוקלאוסים מיקרוקוקל בתאי מיונקים

Related Videos

15.2K Views

זיהוי אתרי אינטגרציה של Lentivirus רלוונטיים מבחינה תפקודית בספריית תאי מוטגנזה החדרתית

07:28

זיהוי אתרי אינטגרציה של Lentivirus רלוונטיים מבחינה תפקודית בספריית תאי מוטגנזה החדרתית

Related Videos

589 Views

במבחנת תמלול מבחנים ויישומם ותרופות דיסקברי

09:28

במבחנת תמלול מבחנים ויישומם ותרופות דיסקברי

Related Videos

15.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code