-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
מיפוי צפיפות ה-DNA המוחלטת בגרעיני התא באמצעות מיקרוסקופ לוקליזציה של מולקולה בודדת
מיפוי צפיפות ה-DNA המוחלטת בגרעיני התא באמצעות מיקרוסקופ לוקליזציה של מולקולה בודדת
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Mapping Absolute DNA Density in Cell Nuclei using Single-molecule Localization Microscopy

מיפוי צפיפות ה-DNA המוחלטת בגרעיני התא באמצעות מיקרוסקופ לוקליזציה של מולקולה בודדת

Full Text
817 Views
10:57 min
November 11, 2025

DOI: 10.3791/64268-v

Márton Gélleri1, Hilmar Strickfaden2

1Institute of Molecular Biology (IMB), 2Max Planck Institute for Polymer Research

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study describes a method for measuring absolute DNA densities within adherent cell nuclei, utilizing Voronoi tessellation of single-molecule localization microscopy (SMLM) data. This approach enables the investigation of spatial constraints in chromatin structures, linking genetic information with cell cycle stages.

Key Study Components

Research Area

  • Cell biology
  • Genetics
  • Microscopy and imaging techniques

Background

  • Understanding DNA density is crucial for investigating chromatin architecture.
  • Current methods often rely on post-translational modifications of histones.
  • Knowledge of total DNA content is essential for accurate measurements.

Methods Used

  • Voronoi tessellation of SMLM data
  • Adherent cell nuclei as the biological system
  • Image analysis software such as CellProfiler and ImageJ

Main Results

  • Measurements yield DNA densities expressed in base pairs per square micrometer.
  • Future directions include correlating density differences with epigenetic modifications.
  • Method validates the influence of cell cycle stages on DNA content measurement.

Conclusions

  • This protocol allows for precise evaluations of DNA density in cell nuclei.
  • The study paves the way for integrating genomic data with physical characteristics of chromatin.

Frequently Asked Questions

How is DNA density measured in this study?
DNA density is measured using Voronoi tessellation of single-molecule localization microscopy data combined with cell cycle analysis.
What biological systems are primarily investigated?
The method focuses on adherent cell nuclei, providing insights into chromatin architecture.
What role does cell cycle stage play in this method?
Cell cycle stages inform the DNA content and density calculations, enhancing the accuracy of measurements.
What technologies are utilized in the measurement process?
The study employs single-molecule localization microscopy and image analysis software such as CellProfiler and ImageJ.
What are potential future applications of this method?
Future experiments could explore correlations between DNA density and epigenetic modifications using immunofluorescence or Hi-C data.
How is data processed after image acquisition?
Data is processed using tailored algorithms for localization and filtering within software like ThunderSTORM in ImageJ.
What implications does this research have for genetics?
This method enhances our understanding of genomic organization and may elucidate relationships with genetic traits or diseases.

הפרוטוקול הנוכחי מתאר שיטה המודדת צפיפות DNA מוחלטת בתוך גרעיני תאים דבקים באמצעות טסלציה של וורונוי של נתוני מיקרוסקופיה של לוקליזציה של מולקולה בודדת, נפח ידוע, גודל גנום ושלב מחזור התא.

השיטה הנוכחית מאפשרת מדידות צפיפות DNA מוחלטות בגרעיני התא כדי לחקור את האילוצים המרחביים במבני כרומטין שאחרת מאופיינים רק בשינויים בהיסטון לאחר התרגום. טסלציה של וורונוי בשילוב עם SMLM מאפשרת הערכות צפיפות מוחלטת של DNA במונחים של זוג בסיסים למיקרומטר מרובע. הידע האפריורי היחיד הדרוש הוא תכולת ה-DNA הכוללת של גרעין התא הנמדד.

בניסויים עתידיים, יהיה מעניין לחקור האם הבדלי צפיפות מוחלטים קשורים למידע ביולוגי משיטות אחרות, כגון אימונופלואורסצנציה של שינויים אפיגנטיים או נתוני Hi-C. התחל בשחזור האזור הסרוק על-ידי סידור התמונות הבודדות שהוקלטו מראש יחד. פתח את CellProfiler ולאחר מכן טען את צינור cellcycleanalysis.cpproj.

בתמונות השלב הראשון של הצינור, גרור ושחרר את התמונות, כולל תמונת ההפניה. לאחר מכן, הגדר מיקום שבו יאוחסנו תמונות ההתייחסות. לאחר מכן לחץ על סמל התחל מצב בדיקה ואחריו הפעל.

לאחר הצגת ההיסטוגרמה של הגרעינים בתמונה שיש לנתח, קבע את מרווחי העוצמה עבור שלבי G1, S ו- G2, וודא שהם מוזנים בשלבי אובייקט המסנן הבאים של הצינור וכי שלבים אלה פעילים. לאחר מכן לחץ שוב על כפתור ההפעלה כדי להמשיך במחצית השנייה של הצינור. התבוננו בשלוש התמונות עם השכבות המייצגות את שלבי מחזור התא השונים, G1, S או G2, ובחרו את הגרעינים ב-G1 או G2 להדמיה נוספת כך שכמות ה-DNA בזוגות הבסיסים של גרעיני התמונה תהיה ידועה.

מקם מחדש את התאים במיקרוסקופ הלוקליזציה של מולקולה בודדת, והקפד על מצמוץ נכון של תהליך ה-FPALM. ראשית, הקלט ערימה תלת מימדית של הגרעין הנבחר רק באמצעות 500 פריימים לפרוסה. זה מאפשר לקבוע את הכמות היחסית של ה-DNA בחלק האמצעי, שמצולם מאוחר יותר עם מסגרות רבות נוספות כדי לחשוף את המבנה האולטרה-מבני שלו.

התחל את רכישת סדרת התמונות באמצעות זמן חשיפה של 50 אלפיות השנייה, והתוצאה היא קצב פריימים של כ-20 פריימים לשנייה. קח ערימת Z דרך הגרעין עם מרווחי צעדים של 200 ננומטר ורק 500 פריימים לכל קטע אופטי של אור. לאחר רכישת המחסנית, חזור למיקום z הראשוני ורכוש את מערך הנתונים הראשי של 50,000 פריימים עם אותו זמן חשיפה של 50 אלפיות השנייה.

פתח את מערך הנתונים של FPALM ב-ImageJ. כדי לייעל את ההגדרות לזיהוי אותות מהבהבים, לחץ על ThunderSTORM ולאחר מכן הפעל ניתוח. כעת, בחר הגדרת מצלמה.

הזן את גודל הפיקסלים הנכון של נתוני התמונה, ספירת ה-A/D, היעילות הקוונטית של המצלמה המשומשת, רמת הבסיס ורווח EM, ולאחר מכן לחץ על אישור. בחר את האלגוריתם לקביעת קואורדינטות הלוקליזציה על ידי התאמת האותות המהבהבים. בקטע סינון תמונה, השתמש במסנן Wavelet B-Spline עם סדר B-Spline 3 וסולם B-Spline 2. לאחר מכן, הגדר את שיטת הלוקליזציה המשוערת של מולקולות למקסימום מקומי, הגדר את סף עוצמת השיא והקישוריות ל-8 שכונות.

בסעיף לוקליזציה תת-פיקסלית של מולקולות, כשיטה, בחר גאוס משולב PSF, הגדר את רדיוס ההתאמה px ל-3, בחר שיטת התאמה כסבירות מקסימלית, והגדר את הסיגמא הראשונית ל-1.6. לאחר מכן לחץ על אישור כדי להתחיל בזיהוי האותות ובשחזור התמונה. אם הרכישה מחולקת לערימות תמונות שונות, שרשר את טבלאות הלוקליזציה ב-ThunderSTORM.

לשם כך, לחץ על ייבוא בחלון המוקפץ. ודא שהאפשרות הוסף לטבלה הנוכחית מופעלת ושנעשה שימוש במספר ההתחלתי הנכון כדי למנוע עקיפת לוקליזציות בטבלה. לאחר מכן בחר את נתיב הקובץ ולחץ על OK כדי לייבא קובץ אחד אחרי השני.

כדי למנוע ספירת יתר של אותות במסגרות עוקבות, מזגו את נתוני הלוקליזציה באמצעות מרחק מרבי של 20 ננומטר, 1 פריימים לכל היותר ו-0 פריימים לכל מולקולה, ולאחר מכן לחצו על Merge. כדי למדוד ולתקן סחיפה על ידי מתאם צולב של תת-מקטעי נתונים, פתח את תפריט תיקון הסחיפה ולחץ על החצים. הוסף 3 סלים והגדר את ההגדלה ל-5.

לאחר מכן לחץ על החל, והחלון המציג את הסחף x ו-y יופיע. כדי לקבוע את כמות האות הפרופורציונלית לתוכן ה- DNA בכל פרוסה של הערימה התלת-ממדית המוקלטת מראש עם 500 מסגרות לכל פרוסה, בחר Plugins, לאחר מכן ThunderSTORM ולאחר מכן Import/Export, וייבא את טבלת התוצאות לפרוסה הראשונה של הערימה. כדי למנוע ספירת יתר של אותות ממישורי תמונה אחרים של הערימה התלת-ממדית, יש להסיר אותות מחוץ למרווח הצעדים של 200 ננומטר ב-z בין הפרוסות.

לחץ על התוויית היסטוגרמה ובתיבת הדו-שיח הפתוחה הפצה, בחר z ולחץ על אישור. קבע את מיקום השיא והשתמש בשדה המסנן כדי לבחור את האותות בגודל הצעד האופטי של 200 ננומטר. לחץ על ויזואליזציה ובחר באפשרות היסטוגרמות ולאחר מכן לחץ על אישור. שמור את התמונה המתקבלת בתיקייה בתבנית TIFF. פתחו את כל הפרוסות ושלבו אותן באמצעות Image ולאחר מכן Stacks ולאחר מכן Images to Stack.

לאחר בחירת כל אזור התמונה, עבור אל ניתוח, לחץ על כלים ובחר את מנהל החזר ההשקעה. לחץ על הוסף, לאחר מכן לחץ על ניתוח, ולאחר מכן הגדר מדידות ובחר צפיפות משולבת. כעת, בחר באפשרות עוד, בחר Multi Measure, סמן את מדוד את כל הערימות וכן שורה אחת לכל פרוסה.

לחץ על אישור והתוצאות יופיעו. סכום העוצמות של כל הפרוסות הוא פרופורציונלי לתכולת ה-DNA של הגרעין כולו באותו אופן שבו העוצמות של פרוסות בודדות פרופורציונליות לחלק שלהן בגנום כולו. לאחר פתיחת טבלת התוצאות של המישור המרכזי המכילה את האותות של 50, 000 פריימים, סנן אותה לעובי של 100 ננומטר.

צור את ההיסטוגרמה של האותות המתקבלים כפי שהודגם קודם לכן, ומדוד את הצפיפות המשולבת של החלק המרכזי. המר את טבלת הלוקליזציה הגדולה של ThunderSTORM המכילה את המידע האולטרה-מבני מהחלק המרכזי מפורמט csv לפורמט ORTE על ידי הפעלת סקריפט MATLAB TS2orte. m, שהופך את טבלת הלוקליזציה למטריצת MATLAB ושומר אותה בפורמט MAT.

היכנס לתיקיית LAND-voronoi, ובתיקיית המשנה coreAlgorithm, פתח את הקובץ voronoicluster. m ולהתאים את תכולת ה-DNA, חלק מהחלק המרכזי הנצפה של כל שבר הגרעין DNA ולוקליזציות, ואת גורם ההמרה בהתאם לסוג התא המשומש ושלב מחזור התא לחישובי הצפיפות המוחלטת. ערוך את קובץ ה- Script שמתחיל את הניתוח voronoi.m.

התאם את נתיב הקובץ לנתוני הלוקליזציה של orte ולתיקיית הפלט עבור קבצי התוצאה. ציין את הקואורדינטות המגדירות את האזור שבו יש לבצע את הטסלציה. הגדר אזורים מרובים לחישוב בתוך אותו מערך נתוני קלט.

לאחר הפעלת הסקריפט, חפש את התמונה המציגה את צפיפות ה-DNA המוחלטת יחד עם קבצים אחרים המכילים גרפים המציגים את ההיסטוגרמה של התפלגות השטח, וצפיפות. m המכיל את הצפיפות של כל תא Voronoi מחושב בתיקיית הפלט. מדידת FPALM המורכבת מ-50,000 פריימים הביאה ל-2.68 כפול 10 בחזקת 6 לוקליזציות שזוהו בתוך חתך אמצע בעובי 100 ננומטר.

דיוק הלוקליזציה של התמונה המשוחזרת היה 10 ננומטר. המספר הגדול של לוקליזציות איפשר שילוב של הדמיה ברזולוציה גבוהה תוך הצגת צפיפות DNA מוחלטת. היה ברור שצפיפות ה-DNA שנמדדה לא הייתה מפוזרת באופן אחיד על פני הגרעין וכיסה טווח דינמי נרחב.

הגדלות גבוהות יותר של אזורים בתוך הגרעין המראים תאי וורונוי גדולים יותר הצביעו על צפיפות DNA נמוכה, בעוד שתאים קטנים יותר הצביעו על צפיפות DNA גבוהה. צפיפות ה-DNA שנמדדה בחצי גרעין G1C3H10T הראו את התפלגות צפיפות ה-DNA המוחלטת בתוך הגרעין מסוג ומין אחר. למרות שהארגון הבסיסי נראה כמו גרעין הלה G1 המוקדם, היו לו בנוסף אשכולות מכוננים של הטרוכרומטין פרצנטרי.

לא נצפו שינויים ארכיטקטוניים דרמטיים בגרעין G2 למרות גודל גרעיני מוגדל מעט. גרעין HeLa שטופל ב-TSA הראה הבדלים יוצאי דופן ביחס לטופוגרפיה גרעינית וצפיפות DNA. מלבד ההטרוכרומטין ההיקפי, שהראה איים בעלי צפיפות DNA גבוהה יותר, שאר הכרומטין נראה הרבה יותר הומוגני ומעובה.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

החודש ב-JoVE גיליון 225 SMLM fBALM תפוז סיטוקס צפיפות DNA כרומטין טסלציה של וורונוי

Related Videos

מולקולה בודדת הדמיה התחבורה גרעיני

12:13

מולקולה בודדת הדמיה התחבורה גרעיני

Related Videos

13.8K Views

דגי ה-DNA 3D חזקים באמצעות בדיקות שכותרתו ישירות

12:16

דגי ה-DNA 3D חזקים באמצעות בדיקות שכותרתו ישירות

Related Videos

35.4K Views

לדמיין אינטראקציות החלבון-DNA בתאים חיידקיים בשידור חי באמצעות מעקב מולקולה בודדת photoactivated

16:21

לדמיין אינטראקציות החלבון-DNA בתאים חיידקיים בשידור חי באמצעות מעקב מולקולה בודדת photoactivated

Related Videos

18.3K Views

שילוב מניפולציה מולקולה בודדת והדמיה לחקר אינטראקציות החלבון-DNA

14:43

שילוב מניפולציה מולקולה בודדת והדמיה לחקר אינטראקציות החלבון-DNA

Related Videos

12.1K Views

זרימת עבודה עבור גבוהה תוכן, כימות תא יחידה של פלורסנט סמנים מUniversal מיקרוסקופים נתונים, הנתמכים על ידי תוכנות קוד פתוחות

09:57

זרימת עבודה עבור גבוהה תוכן, כימות תא יחידה של פלורסנט סמנים מUniversal מיקרוסקופים נתונים, הנתמכים על ידי תוכנות קוד פתוחות

Related Videos

13.5K Views

Immunostaining עבור שינויים DNA: ניתוח חישובית של תמונות קונפוקלי

09:42

Immunostaining עבור שינויים DNA: ניתוח חישובית של תמונות קונפוקלי

Related Videos

10.3K Views

מיקרוסקופ מעקב חד-מולקולה-כלי לקביעת המדינות התפוצבניות של מולקולות ציטוסולג

10:20

מיקרוסקופ מעקב חד-מולקולה-כלי לקביעת המדינות התפוצבניות של מולקולות ציטוסולג

Related Videos

8.8K Views

3D מרובת צבעים דג DNA כלי ללמוד אדריכלות גרעינית בתאים ראשוניים אנושיים

11:25

3D מרובת צבעים דג DNA כלי ללמוד אדריכלות גרעינית בתאים ראשוניים אנושיים

Related Videos

10.9K Views

מכלול נוקלאוזומים באתרו עבור כוח מתאם של מולקולה בודדת ומיקרוסקופ פלואורסצנטי

05:58

מכלול נוקלאוזומים באתרו עבור כוח מתאם של מולקולה בודדת ומיקרוסקופ פלואורסצנטי

Related Videos

1.6K Views

שימוש בספריות ראייה ממוחשבת לייעול כימות הגרעינים

06:25

שימוש בספריות ראייה ממוחשבת לייעול כימות הגרעינים

Related Videos

666 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code