Summary
يوفر البروتوكول نهجا موثوقا ومحسنا لعزل النوى من عينات الورم الصلبة لتسلسل الجينوم المتعدد باستخدام منصة 10x Genomics ، بما في ذلك التوصيات الخاصة بظروف تفكك الأنسجة ، والحفظ بالتبريد لمعلقات الخلية المفردة ، وتقييم النوى المعزولة.
Abstract
يمثل تسلسل Multiome ، الذي يوفر الحمض النووي الريبي أحادي الخلية / المقترن - ومقايسة الكروماتين الذي يمكن الوصول إليه بواسطة transposase مع بيانات التسلسل (تسلسل ATAC) ، طفرة في قدرتنا على تمييز عدم تجانس الخلايا السرطانية - وهو التركيز الأساسي لأبحاث السرطان الانتقالية في هذا الوقت. ومع ذلك ، فإن جودة بيانات التسلسل التي تم الحصول عليها باستخدام هذه الطريقة المتقدمة تعتمد بشكل كبير على جودة المواد المدخلة.
يجب تحسين ظروف الهضم لزيادة إنتاجية الخلايا دون التضحية بالجودة. هذا أمر صعب بشكل خاص في سياق الأورام الصلبة ذات المصفوفات البلاستيكية الكثيفة التي يجب تكسيرها بلطف لإطلاق الخلايا. الخلايا المعزولة حديثا من أنسجة الورم الصلبة أكثر هشاشة من تلك المعزولة من خطوط الخلايا. بالإضافة إلى ذلك ، نظرا لأن أنواع الخلايا المعزولة غير متجانسة ، يجب اختيار الظروف لدعم إجمالي عدد الخلايا.
وأخيرا، يجب تحسين ظروف العزل النووي استنادا إلى هذه الصفات من حيث أوقات التحلل وأنواع/نسب الكواشف. في هذه المقالة ، نصف تجربتنا مع العزل النووي لمنصة تسلسل الجينوم المتعدد 10x Genomics من عينات الورم الصلب. نحن نقدم توصيات لهضم الأنسجة ، وتخزين معلقات الخلية الواحدة (إذا رغبت في ذلك) ، والعزل النووي والتقييم.
Introduction
مع نمو معرفتنا ببيولوجيا الورم ، زادت أيضا أهمية تحليل الخلايا غير المتجانسة عبر البيئة المكروية للورم 1,2. توفر القدرة على الحصول على الحمض النووي الريبي أحادي الخلية ومقايسة الكروماتين الذي يمكن الوصول إليه بواسطة transposase مع بيانات التسلسل (تسلسل ATAC) من نفس الخلية بطريقة الخلايا المزدوجة (تسلسل multiome) تقدما كبيرا نحو هذه الغاية 3,4. ومع ذلك ، فإن هذه التجارب مكلفة وتستغرق وقتا طويلا ، وتعتمد جودة وتأثير البيانات المكتسبة بشكل كبير على جودة الظروف والمواد التجريبية. تم نشر بروتوكولات موحدة لعزل النوى 5,6. تتطلب الأنسجة الطازجة وغير المتجانسة تحسين البروتوكول لأن الخلايا المعزولة حديثا من عينات الورم الصلبة أكثر هشاشة من تلك المعزولة من خطوط الخلايا.
هناك اعتبار آخر وهو أنه بالنسبة للأورام الصلبة ، غالبا ما لا تتوفر العينات الجراحية من غرفة العمليات حتى وقت متأخر من اليوم. على هذا النحو ، ليس من الممكن عموما الانتقال مباشرة من الحصول على العينات إلى التقاط النوى دون خطوة الحفظ بالتبريد. في تجربتنا ، ينتج عن تجميد معلق أحادي الخلية نوى عالية الجودة (بدلا من الأنسجة الكاملة المجمدة أو طرق الحفظ الأخرى). هذا ينطبق بشكل خاص على أنواع الأنسجة الأنزيمية التي تحتوي على نسبة عالية من RNase مثل البنكرياس.
يجب أيضا تصميم ظروف هضم الأنسجة لزيادة إنتاجية الخلايا إلى أقصى حد دون التضحية بالجودة7. في سياق أنواع الأورام الصلبة ذات المصفوفات البلاستيكيةالكثيفة 8 ، يجب تقسيم المصفوفة خارج الخلية برفق لإطلاق الخلايا. بالإضافة إلى ذلك ، نظرا لأن أنواع الخلايا المعزولة غير متجانسة ، يجب تعديل الظروف لدعم إجمالي عدد الخلايا. تستخدم عينات سرطان البنكرياس البشري (سرطان البنكرياس الغدي القنوي) في البروتوكول الموصوف. يمثل سرطان البنكرياس نوعا من الأورام شديدة التنسج ، والتي تنذر بأنسجة وخلايا لزجة نسبيا. علاوة على ذلك ، نظرا لأن عينات أورام البنكرياس المتاحة للبحث تميل أيضا إلى أن تكون صغيرة نسبيا ، تبذل الجهود لزيادة كمية الخلايا التي تم التقاطها.
يتطلب عزل النوى أكبر قدر من التحسين من حيث ظروف تحلل الخلية وتوقيتها ، وكذلك أنواع الكواشف ونسبها. يتطلب التعامل مع النوى على مدار العزلة أيضا عناية كبيرة. في هذه المقالة ، نصف تجربتنا في تحسين العزل النووي لمنصة تسلسل الجينوم المتعدد 10x من أنسجة الورم الصلبة (الشكل 1). نحن نقدم توصيات لهضم الأنسجة ، والحفظ بالتبريد للمعلقات أحادية الخلية (إذا رغبت في ذلك) ، والعزل النووي.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
تم الحصول على عينات من سرطان البنكرياس البشري (سرطان البنكرياس الغدي القنوي) وفقا لبروتوكول معتمد من IRB في مختبرنا. تم الحصول على موافقة مستنيرة من المرضى لجمع الأنسجة. تم نقل الأنسجة من غرفة العمليات إلى المختبر ثم معالجتها على النحو التالي.
1. تفكك الأنسجة (الهضم)
- إعداد المخزن المؤقت للهضم (انظر جدول المواد).
- الحصول على الأنسجة ذات الأهمية في أقرب وقت ممكن بعد استئصال الورم ونقل العينة في العازلة إخماد (DMEM F-12 مع ~ 5٪ مصل بقري الجنين) أو 1x PBS على الجليد.
- فرم الأنسجة باستخدام ملقط ومقص نظيف في 3-5 مل من Digest Buffer في طبق بتري 90 مم (الشكل 2 أ).
- انقل المنديل المفروم إلى أنبوب مخروطي سعة 50 مل وانفصل في ~ 10 مل من Digest Buffer لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية باستخدام حمام مائي مع وظيفة الاهتزاز أو محرض جاف.
- إزالة من المحرض وإخماد مع ~ 20 مل من وسط التبريد. قم بتصفية المحلول من خلال مصفاة خلية 100 ميكرومتر في أنبوب مخروطي نظيف.
- اجمع أي أنسجة صلبة متبقية من المصفاة (أعد فرم قطع الأنسجة المتبقية إذا لزم الأمر) ، وضعها في ~ 10 مل من Digest Buffer الطازج لمدة 30 دقيقة أخرى عند 37 درجة مئوية مع التقليب. كرر حتى يتم فصل جميع أنسجة الورم.
- يتم ترشيح حصص تعليق خلايا البركة وتصفيتها من خلال 70 ميكرومتر متبوعة بمصفاة خلية 40 ميكرومتر في أنبوب مخروطي نظيف على الجليد.
- أجهزة الطرد المركزي إلى خلايا الحبيبات عند 500 × جم لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية ثم صب المادة الطافية.
2. الحفظ بالتبريد
- شطف الخلايا عن طريق تعليق بيليه في 1 مل من 1x PBS.
- نقل تعليق الخلية (~ 1-10 مليون خلية / أنبوب للتجميد الأمثل) إلى 1.5 مل cryovial على الجليد.
- أجهزة الطرد المركزي لخلايا الحبيبات عند 500 × جم لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية ثم صب المادة الطافية.
- أعد تعليق الخلايا في 1 مل من محلول Bambanker ، وانقلها إلى 1.5 أو 2 مل كريوفيال (الشكل 2 ب) ، وقم بتجميدها باستخدام حاوية تجميد بمعدل تبريد -1 درجة مئوية / دقيقة (تحتوي على 100٪ كحول الأيزوبروبيل) عند -80 درجة مئوية ، أو نقلها إلى النيتروجين السائل إذا كان من المتوقع تخزين العينة على المدى الطويل.
3. عزل النوى
- قم بإذابة الجليد بسرعة في تعليق الخلية ووضعه على الثلج الرطب.
- انقل تعليق الخلية المذابة إلى أنبوب طرد مركزي دقيق سعة 2 مل وقم بتعبئة القارورة إلى محلول 2 مل باستخدام 1x PBS لشطف الخلايا.
- احصل على تعداد يدوي للخلايا باستخدام مقياس الدم لتقييم كل من كمية ونوعية الخلايا (الشكل 2C).
- أجهزة الطرد المركزي إلى خلايا الحبيبات عند 500 × جم لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية ثم صب المادة الطافية برفق باستخدام أطراف ماصة أصغر تدريجيا لتترك وراءها حبيبات جافة وتحافظ عليها على الجليد.
- استخدم دوار الجرافة المتأرجحة لجميع خطوات الطرد المركزي. للحصول على أقصى إنتاجية للخلية ، ضع الأنابيب في جهاز الطرد المركزي بحيث تكون المفصلة متجهة للخارج ثم صبها مع توجيه طرف الماصة نحو الجانب الآخر من الأنبوب (الشكل 2 د).
ملاحظة: لصب المادة الطافية ، استخدم أطراف ماصة أصغر تدريجيا لإزالة السوائل للحد من تعطل الحبيبات مع زيادة حجم السائل المصبوغ. هذه الاستراتيجية مفيدة بشكل خاص لاحقا في البروتوكول التالي لاستخراج النوى لأن حبيبات النوى غير مرئية بشكل عام.
- استخدم دوار الجرافة المتأرجحة لجميع خطوات الطرد المركزي. للحصول على أقصى إنتاجية للخلية ، ضع الأنابيب في جهاز الطرد المركزي بحيث تكون المفصلة متجهة للخارج ثم صبها مع توجيه طرف الماصة نحو الجانب الآخر من الأنبوب (الشكل 2 د).
- قم بإعداد 1x Cell Lysis Buffer ، و Cell Lysis Dilution Buffer ، و Wash Buffer (الشكل 3A) وفقا للبروتوكول المنشور مع التعديلات التالية (انظر الجدول 1 ، جدول المواد):
ملاحظة: ضع الديجيتونين على كتلة تسخين عند 65 درجة مئوية قبل استخدامه لإذابة الراسب (الشكل 3 ب). يستغرق هذا عادة حوالي 10 دقائق. - قم بإعداد المخزن المؤقت لتحلل الخلية 0.1x من خلال الجمع بين 100 ميكرولتر من 1x Cell Lysis Buffer و 900 μL من Cell Lysis Dilution Buffer ، ماصة بلطف لخلطها ، ووضعها على الجليد.
- أعد تعليق حبيبات الخلية في 100 ميكرولتر من محلول تحلل الخلية المبرد 0.1x وماصة برفق لخلط 5x.
- احتضان على الجليد لمدة 3 دقائق (الشكل 3C).
- أضف 1 مل من Wash Buffer المبرد والماصة لأعلى ولأسفل لخلط 5x برفق.
- أجهزة طرد مركزي لتكوير النوى عند 500 × جم لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية ، صب المادة الطافية برفق على حبيبات جافة ، والحفاظ عليها على الجليد.
ملاحظة: إذا كان رقم خلية البداية منخفضا (100000-200000 خلية) ، فقم بإجراء خطوات تحلل الخلية وغسلها في أنبوب PCR سعة 200 ميكرولتر بدلا من أنبوب طرد مركزي دقيق سعة 2 مل لتقليل مساحة سطح الأنبوب وتقليل الخسائر. في هذه الحالة ، اضبط مستوى صوت Wash Buffer لأسفل لاستيعاب حجم الأنبوب الأصغر. - كرر الخطوات 3.9-3.10 2x ليصبح المجموع ثلاث غسلات.
- عد النوى يدويا باستخدام شريحة مقياس الدم تحت المجهر. استخدم صبغة التريبان الزرقاء إذا رغبت في ذلك لتوفير التباين لعرض النوى وللمساعدة في تمييز النوى من الخلايا غير المحللة.
- قم بإعداد 1x Nuclei Buffer وفقا للبروتوكول المنشور: مخزون 20x Nuclei Buffer ، 1 mM DTT ، 1 U / μL RNase Inhibitor في الماء الخالي من النيوكلياز واحتفظ به على الجليد (انظر جدول المواد).
- أعد تعليق حبيبات النوى في 1x Nuclei Buffer بناء على استعادة النوى المستهدفة الهدف.
ملاحظة: إذا كان التركيز مرتفعا بدرجة كافية، فاستهدف الاسترداد المستهدف بمقدار 10000 أو أعلى قليلا في هذه الخطوة (3230-8060 نواة/ميكرولتر) عند تحديد حجم إعادة التعليق في البداية، نظرا لفقدان الحجم المتوقع بمقدار 25 ميكرولتر وانخفاض التركيز بنسبة 20٪ مع الترشيح (الخطوة 3.15). - مرر حجم النوى المعاد تعليقه برفق من خلال مصفاة خلية طرف ماصة 40 ميكرومتر وضع النوى على الجليد (الشكل 3 د).
- أعد عد النوى (الشكل 4A-C). قم بتخفيف المحلول النهائي بشكل أكبر باستخدام Nuclei Buffer إذا لزم الأمر.
- انقل النوى على الجليد وتابع على الفور التقاط النوى وفقا للبروتوكولات المنشورة.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
لعزل النوى عالية الجودة من عينات الورم الصلبة للمريض لتسلسل متعدد الomeات (الشكل 1) ، تم فصل أنسجة الورم وتم حفظ تعليق خلية واحدة بالتبريد (الشكل 2A-D). ثم تم إذابة تعليق الخلية في وقت التقاط multiome المخطط له. تم إجراء التقاط النوى باستخدام كواشف التحلل العازلة المحسنة والتوقيت لزيادة الجودة والعائد (الشكل 3A-D). تظهر صور النوى التمثيلية الحجم والشكل المناسبين (الشكل 4A-C). تظهر النوى المحاطة بدائرة باللون الرمادي الباهت تنقيطا خفيفا للمغلف.
الشكل 1: رسم تخطيطي لسير عمل عزل النوى. رسم تخطيطي يوضح سير العمل الأساسي من عينة نسيج ورم كاملة إلى تعليق أحادي النواة جاهز للتقديم لالتقاط النوى ، وإعداد مكتبة متعددة النوى ، وفي النهاية تسلسل scRNA- و ATAC. الاختصارات: scRNA = الحمض النووي الريبي أحادي الخلية ؛ ATAC-seq = مقايسة للكروماتين الذي يمكن الوصول إليه بواسطة transposase مع التسلسل. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 2: هضم الأنسجة، والحفظ بالتبريد، وتقييم الخلايا، وخطوات الطرد المركزي. (أ) إعداد المعدات اللازمة لفرم عينات أنسجة الورم؛ (ب) الحفظ بالتبريد بتعليق الخلية؛ (ج) التقييم المجهري لمعلق الخلية؛ (د) نهج الطرد المركزي لهذا البروتوكول. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 3: تحضير الكواشف واستخلاص النوى والترشيح. (أ) تحضير كواشف استخلاص النوى؛ (ب) إذابة الديجيتونين عند 65 درجة مئوية قبل الاستخدام؛ (ج) حضانة عينات التحلل الخلوي على الجليد؛ د: ترشيح النوى المستخرجة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 4: صور مجهرية تمثيلية للنوى التي تم حصادها من عينات أنسجة الورم المعقدة. (A-C) صور تمثيلية للنوى التي تم حصادها مع أو بدون تلطيخ Trypan Blue. (ب، ج) تظهر النوى المحاطة بدائرة رمادية شاحبة تنقيطا خفيفا للغلاف النووي. 10x و 40x الأهداف المستخدمة. قضبان المقياس = 50 ميكرومتر. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
| اسم الحل | مكونات | ||
| هضم العازلة | 0.5-1 ملغ/مل كولاجيناز من النوع الرابع | ||
| 100 وحدة / مل DNase I | |||
| 0.1٪ بولوكسامير 188 | |||
| 20 مللي متر HEPES | |||
| 1 مللي متر كلوريد الصوديوم2 | |||
| 3-5٪ سيروم بقري جنيني (FBS) في وسط 199 | |||
| 1X خلية تحلل العازلة | 10 مللي متر Tris-HCl (درجة الحموضة 7.4) | ||
| 10 مللي متر كلوريد الصوديوم | |||
| 3 مللي متر مغسل2 | |||
| 2٪ BSA (بدلا من 1٪) | |||
| 0.10٪ توين -20 | |||
| 0.1٪ بديل P40 غير معروف | |||
| 0.01٪ ديجيتونين | |||
| 1 مللي متر DTT | |||
| 1 U / μL مثبط RNAse في الماء الخالي من النيوكلياز | |||
| المخزن المؤقت لتخفيف تحلل الخلية | 10 مللي متر Tris-HCl (درجة الحموضة 7.4) | ||
| 10 مللي متر كلوريد الصوديوم | |||
| 3 مللي متر مغسل2 | |||
| 2٪ BSA | |||
| 1 مللي متر DTT | |||
| 1 U / μL مثبط RNAse في الماء الخالي من النيوكلياز | |||
| غسل العازلة | 10 مللي متر Tris-HCl (درجة الحموضة 7.4) | ||
| 10 مللي متر كلوريد الصوديوم | |||
| 3 مللي متر مغسل2 | |||
| 2٪ BSA | |||
| 0.10٪ توين -20 | |||
| 1 مللي متر DTT | |||
| 1 U / μL مثبط RNAse في الماء الخالي من النيوكلياز | |||
الجدول 1: الحلول المستخدمة في هذا البروتوكول.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
يعد فك تشابك مجموعات الخلايا غير المتجانسة الموجودة في البيئة المكروية للورم مجالا نشطا للتركيز في بيولوجيا السرطان. وبالمثل ، توجد الأنسجة المعقدة في الأمراض الحميدة مثل التئام الجروح والتليف. برز تسلسل Multiome كأداة قوية تسمح بالحصول على بيانات scRNA- و ATAC-seq المقترنة بنفس الخلية. يصف هذا البروتوكول عزل النوى ، الأمر الذي يتطلب التحسين في إعداد معالجة عينات الورم الصغيرة الطازجة والهشة. نقدم هنا بروتوكولا لعزل النوى من عينات أنسجة الورم الصلبة اللدائن. لقد وجدنا أن هذا النهج ينتج بيانات موثوقة وعالية الجودة حتى عندما يتم تجميد معلقات الخلايا قبل عزل النوى والتقاطها.
زيادة تركيز الألبومين في جميع أنحاء الفحص مفيد في الحد من تكتل نوى الخلايا والمصب ، والتي يمكن أن تكون مشكلة عند العمل مع عينات الورم. فيما يتعلق بهضم الأنسجة ، يمكن أيضا استخدام كواشف مجموعة الهضم مع هذا البروتوكول إذا رغبت في ذلك (انظر جدول المواد). إذا تم استخدامه ، فإننا لا نزال نوصي باتباع عمليات الهضم / التبريد والتبادلات العازلة كل 30 دقيقة لزيادة إنتاجية الخلايا القابلة للحياة. بعد تفكك الأنسجة ، يمكن إجراء تحلل خلايا الدم الحمراء وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة. يمكن أيضا إجراء بروتوكول فصل الخلايا المتدرجة وفقا لتقدير الباحث (انظر جدول المواد). نحن لا ننفذ هذه البروتوكولات بشكل روتيني ، لكننا طبقنا هذه البروتوكولات على عينات مماثلة دون اختلافات ملحوظة في النتائج. إذا لوحظ وجود حطام صغير كبير بعد ترشيح النوى ، فيمكن النظر في فرز النوى المنشطة بالفلورة (FANS) لمزيد من التنقية. تتوفر مناقشة مفصلة ل FANS ، بما في ذلك توصيات البروتوكول ، ولكن خارج نطاق هذا البروتوكول. من الجدير بالذكر أن هناك بروتوكولات في الأدبيات تنظر في خطوة التثبيت قبل تحلل الخلية. ومع ذلك ، فإننا نفضل المضي قدما في الأنسجة والنوى غير الثابتة لأن scATAC-seq يعمل بشكل أفضل على الأنسجة غير الثابتة9.
بالنسبة لتحلل الخلايا ، نظرا لأن مثبط RNase مكلف للغاية ، فمن المعقول تقليل الحجم المحضر لمخزن تحلل الخلية (ومخزن تخفيف تحلل الخلية) مقارنة بالأحجام المتوفرة في البروتوكول المنشور ، إذا رغبت في ذلك ، طالما أن نسب الكواشف تظل متناسبة. عند تقييم وحساب النوى المحصودة ، يمكن تطبيق مجموعة الجدوى الحية / الميتة / السمية الخلوية وفقا لتقدير الباحث. يمكن أيضا استخدام صبغة تريبان الزرقاء لتوفير التباين لعرض النوى وللمساعدة في تمييز النوى من الخلايا غير المحللة إذا لزم الأمر. أخيرا ، تجدر الإشارة إلى أننا طبقنا نفس ظروف تحلل الخلية مع الكواشف المعدلة لكل بروتوكول ل ATAC-seq أحادي الخلية مع نتائج ممتازة10.
الخطوات الحاسمة في البروتوكول هي التوقيت الدقيق للتحلل والتعامل اللطيف ولكن المناسب مع النوى. سيؤدي الخلط الناقص إلى تحلل خلوي غير مكتمل أو غير متسق ؛ ومع ذلك ، فإن الإفراط في الخلط سيؤدي إلى قص الكروماتين. كما لوحظ في بروتوكولات عزل النوى الأخرى ، يجب أن يتم خلط النوى عن طريق سحب العينة بدلا من دوامة العينة لأن قوى القص يمكن أن تلحق الضرر بالنوى الهشة11. في هذا الصدد ، من المهم تحضير Cell Lysis Buffer طازجا قبل استخدامه في كل مناسبة. يعد إجهاد (تصفية) خلايا طرف الماصة بعد خطوة الطرد المركزي النهائية أمرا أساسيا في تجربتنا لمنع تكتل النوى قبل التقاطها. يمكن تكرار هذا الترشيح قبل التحميل إذا استمر اكتشاف كتل في العد النهائي أو تطورت أثناء نقل العينة قبل التحميل ، مع الأخذ في الاعتبار الخسارة الإضافية في الحجم والتركيز مع كل خطوة ترشيح مضافة. وتجدر الإشارة إلى أنه لا ينبغي أن يكون هناك توقف زمني كبير بين عزل النوى والتقاطها.
قيود هذا البروتوكول هي أن تفكك الأنسجة وخاصة توقيت حضانة تحلل الخلايا والظروف قد تحتاج إلى تحسين لأنواع مختلفة من الأورام الصلبة12. تم تحسين هذا البروتوكول للأورام الصلبة التنسجية مثل سرطان الثدي وسرطان البنكرياس الغدي ، كما تم تطبيقه بنجاح على الأنسجة غير الورمية مثل التليف المتني ، ولكن قد تتطلب أنواع الأورام الأخرى تعديلات إضافية. تم تحسينه لكل من معلقات الخلايا الطازجة وكذلك معلقات الخلايا المجمدة ذات العائد النوى الممتاز من كليهما. نوصي بمتابعة هذا التحسين بالتتابع بدءا من تفكك الأنسجة ، وبمجرد تحقيق التعليق الأمثل لخلية واحدة ، انتقل إلى تحسين ظروف تحلل الخلية للحصول على تعليق مثالي أحادي النواة.
يقدم تسلسل ATAC أحادي الخلية ومؤخرا تسلسل multiome أداة اختراق هائلة لفك تشابك عدم تجانس الخلايا الصلبة للورم. يمكن تحديد الأنواع الفرعية للخلايا بناء على كل من إمكانية الوصول إلى الكروماتين وخصائص التعبير الجيني ، ويمكن فحص تأثير إمكانية الوصول إلى عامل النسخ والتعبير عنه على سلوك الورم مباشرة. يتم تطبيق هذه التطورات المنهجية على نطاق واسع نظرا لإمكاناتها الهائلة للكشف عن أهداف علاجية جديدة. على هذا النحو ، فإن تطوير بروتوكولات محسنة للحصول على هذه البيانات أمر في غاية الأهمية. هنا نشارك هذا البروتوكول لعزل النوى في سياق أنسجة سرطان البنكرياس - وهو نوع من السرطان لا يوجد له سوى عدد قليل من العلاجات وكلها ذات فعالية محدودة حتى الآن.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للكشف عنه.
Acknowledgments
نود أن نعرب عن تقديرنا لمرفق ستانفورد للجينوم الوظيفي (SFGF) ، ولا سيما دانانجاي واغ وجون كولر ، و 10x Genomics لمساعدتهم في تحسين تجاربنا. نود أيضا أن نشكر الدكاترة جورج بولتسايد ومونيكا دوا وبريندان فيسر وبيرن لي على مساعدتهم في الحصول على عينات المرضى. نود أن نعرب عن تقديرنا لآرت وإلين تايلور ، ومؤسسة رانتز ، ووارن وجودي كابلان لدعمهم السخي لجهودنا البحثية. تشمل مصادر التمويل منح المعاهد الوطنية للصحة 1F32CA23931201A1 (D.S.F.) ، 1R01GM116892 (M.T.L.) ، 1R01GM136659 (M.T.L) ، مؤسسة جولدمان ساكس (J.A.N. ، D.S.F. ، M.T.L.) ، مؤسسة دامون رونيون لأبحاث السرطان (D.D. ، M.T.L.) ، صندوق Gunn / Olivier ، معهد كاليفورنيا للطب التجديدي ، مؤسسة Stinehart / Reed ، ومختبر Hagey للطب التجديدي للأطفال. تم الحصول على التسلسل باستخدام الآلات المشتراة بأموال المعاهد الوطنية للصحة (S10OD025212 و S10OD018220 و 1S10OD01058001A1).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 100, 70, and 40 μm Falcon cell strainers | ThermoFisher | ||
| 10x Genomics Nuclei Buffer (20x) | 10x Genomics | 2000153/2000207 | |
| Bambanker | Wako, Fisher Scientitic | NC9582225 | |
| BSA | Miltenyi Biotec | 130-091-376 | |
| Calcium Chloride | Sigma Aldrich | 499609 | |
| Collagenase (Collagenase Type IV) | ThermoFisher | 17104019 | |
| Digitonin | Thermo Fisher | BN2006 | |
| DNase I | Worthington | LS006330 | |
| DTT | Sigma Aldrich | 646563 | |
| Dulbecco’s Modified Eagle Medium F-12 | Thermo Fisher | 11320082 | |
| Fetal Bovine Serum | Thermo Fisher | 10438026 | |
| Flowmi 40 μm Pipette Tip Cell Strainer | Sigma Aldrich | BAH136800040 | |
| HEPES | Sigma Aldrich | H3375 | |
| Histopaque-1119 Gradient Cell Separation solution | Sigma Aldrich | 11191 | |
| Medium 199 | Sigma Aldrich | M2520 | |
| MgCl2 | Sigma Aldrich | M1028 | |
| Miltenyi GentleMACSTM digest kit | |||
| NaCl | Sigma Aldrich | 59222C | |
| Nalgene Cryo "Mr. Frosty" Freezing Container | ThermoFisher | 5100-0001 | |
| Nonident P40 Substitute | Sigma Aldrich | 74385 | |
| Poloxamer 188 | Sigma | P5556 | |
| Rnase inhibitor | Sigma Aldrich | 3335399001 | |
| Tris-HCl | Sigma Aldrich | T2194 | |
| Tween-20 | Thermo Fisher | 85113 |
References
- Jain, S., et al. Single-cell RNA sequencing and spatial transcriptomics reveal cancer-associated fibroblasts in glioblastoma with protumoral effects. J Clin Invest. 133 (5), e147087 (2023).
- Sahai, E., et al. A framework for advancing our understanding of cancer-associated fibroblasts. Nat Rev Cancer. 20 (3), 174-186 (2020).
- Foster, D. S., et al. Multiomic analysis reveals conservation of cancer-associated fibroblast phenotypes across species and tissue of origin. Cancer Cell. 40 (11), 1392-1406 (2022).
- Hasan, S., Buechler, M. B. What's in a name? An emerging framework for cancer-associated fibroblasts, myofibroblasts, and fibroblasts. Cancer Cell. 40 (11), 1273-1275 (2022).
- Nuclei isolation from complex tissues for single cell multiome ATAC + gene expression sequencing. , 10x Genomics. https://www.10xgenomics.com/support/single-cell-multiome-atac-plus-gene-expression/documentation/steps/sample-prep/nuclei-isolation-from-complex-tissues-for-single-cell-multiome-atac-plus-gene-expression-sequencing (2022).
- Nuclei isolation from embryonic mouse brain tissue for single cell multiome ATAC + gene expression sequencing. , 10x Genomics. https://www.10xgenomics.com/support/single-cell-multiome-atac-plus-gene-expression/documentation/steps/sample-prep/nuclei-isolation-from-embryonic-mouse-brain-tissue-for-single-cell-multiome-atac-plus-gene-expression-sequencing (2022).
- Januszyk, M., et al. Characterization of diabetic and non-diabetic foot ulcers using single-cell RNA-sequencing. Micromachines (Basel). 11 (9), 815 (2020).
- Foster, D. S., Jones, R. E., Ransom, R. C., Longaker, M. T., Norton, J. A. The evolving relationship of wound healing and tumor stroma. JCI Insight. 3 (18), e99911 (2018).
- Nott, A., Schlachetzki, J. C. M., Fixsen, B. R., Glass, C. K. Nuclei isolation of multiple brain cell types for omics interrogation. Nat Protoc. 16 (3), 1629-1646 (2021).
- Foster, D. S., et al. Integrated spatial multiomics reveals fibroblast fate during tissue repair. Proc Natl Acad Sci U S A. 118 (41), e2110025118 (2021).
- Leiz, J., et al. Nuclei isolation from adult mouse kidney for single-nucleus RNA-sequencing. J Vis Exp. (175), (2021).
- Narayanan, A., et al. Nuclei isolation from fresh frozen brain tumors for single-nucleus RNA-seq and ATAC-seq. J Vis Exp. (162), e61542 (2020).
