6 febbraio 2015
L'isolamento dei singoli neuroni dopaminergici o l'area tegmentale ventrale con immunoistochimica diretta o indiretta è dimostrata tramite microdissezione laser. Parametri per isolamento di tessuto da un vetrino utilizzando un laser a infrarossi e da diapositive membrana utilizzando la combinazione di un laser infrarosso ed ultravioletto sono discussi.
L'obiettivo generale di questa procedura è isolare neuroni dopaminergici da sezioni di tessuto su vetrini. Questo viene ottenuto prima sezionando il tessuto del mesencefalo ventrale congelato su vetrini appositi o su vetrini con membrana a penna. Successivamente, i neuroni dopaminergici vengono marcati mediante un'immunohistochimica fluorescente rapida.
Quindi il tessuto viene disidratato e caricato nel microscopio per la cattura laser. Successivamente, i neuroni dopaminergici marcati vengono fissati al tappo LCM mediante un laser a infrarossi e l'RNA o la molecola di interesse viene isolata. I risultati dimostrano che è possibile ottenere RNA in quantità e qualità sufficienti per analisi quantitative mediante PCR utilizzando la microscopia a cattura laser.
Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la dissezione macroscopica o i micro-prelievi, è che consente l'isolamento di popolazioni cellulari singole o di regioni cerebrali molto discrete. Per prepararsi all'isolamento dell'RNA, immergere sia vetrini da preparazione seline che vetrini in polietilene metilato o con membrana di vetro in soluzione disinfettante, quindi lavarli tre volte con acqua priva di RNAsi, disidratare i vetrini mediante una serie progressiva di etanolo privo di RNAsi ed essiccarli sotto vuoto per 30 minuti. Con un criostato, tagliare sezioni di tessuto di 10 micron di spessore e montarle su vetrini privi di RNAsi, mantenendo i campioni congelati durante il taglio per preservare la qualità dell'RNA.
Successivamente, eseguire l'immunohistochimica. Utilizzare una penna idrofoba per delineare il tessuto e lasciarlo asciugare, quindi fissare in una soluzione di acetone e metanolo in rapporto uno a uno. Fissare il tessuto a meno 20 gradi Celsius per 10 minuti. Dopo aver rimosso il tessuto dal congelatore, coprire le sezioni con 100-200 microlitri di anticorpo anti-tirosina idrossilasi in PBS e 1% Triton per 10 minuti.
Quindi utilizzare PBS con il 1% di Triton per risciacquare i vetrini prima di ricoprire le sezioni con 100-200 microlitri di anticorpo secondario caprino anti-coniglio IgG marcato con Alexa Fluor 488, incubare per cinque minuti e quindi risciacquare i vetrini con PBS due volte. Successivamente, disidratare i campioni mediante una serie crescente di alcol etilico privo di RNasi per 30 secondi ciascuno, come dimostrato precedentemente in questo video. Incubare nello xilene per un minuto e un secondo, quindi lavare per cinque minuti.
Rimuovere le slide immediatamente prima dell'uso per la LCM e lasciarle asciugare all'aria. Dopo aver caricato i cappucci per LCM e le slide e aver configurato il sistema LCM secondo il protocollo descritto, regolare e mirare il laser a infrarossi per la cattura, impostandone l'intensità. Posizionare il cappuccio in una zona della slide lontana dal tessuto, utilizzando la barra degli strumenti del laser di cattura.
Selezionare "abilita", regolare l'impulso di potenza e il numero di colpi del laser. Sparare il laser a infrarossi quando il cappuccio si trova sopra una porzione della lamellina priva di tessuto, e verificare se il laser scioglie adeguatamente la membrana del cappuccio LCM. Dopo aver regolato l'intensità del laser a infrarossi, fare clic con il tasto destro e selezionare "cattura laser qui" per puntare il laser ed eseguire la LCM su singoli neuroni dopaminergici prelevati da lamelline preparate con la tecnica della linea.
Iniziare spostandosi nella regione di interesse per acquisire le cellule, prelevandole singolarmente da un preparato cline. Nella barra degli strumenti della microdissezione, selezionare la scheda LCM, quindi l'icona del punto singolo. Successivamente, nella barra degli strumenti del microscopio, utilizzare la scheda dell'otturatore per passare tra fluorescenza e campo chiaro, con le schede dei filtri fluorescenti per scegliere i filtri appropriati, e le schede degli obiettivi per modificare l'ingrandimento.
Una volta che le cellule di interesse sono visibili nella finestra video in tempo reale, regolare le dimensioni del punto utilizzato per contrassegnare le cellule di interesse in base alle dimensioni approssimative delle cellule. Contrassegnare le cellule di interesse selezionando l'icona del punto singolo e quindi facendo clic sulle cellule. Dopo aver contrassegnato le cellule sulla barra degli strumenti di microdissezione, selezionare la scheda "go cut and capture" e il laser a infrarossi si attiverà automaticamente su tutte le cellule contrassegnate.
Spostare il cappuccio lontano dalla sezione e su una regione aperta del vetrino per verificare se le cellule sono state catturate sul cappuccio LCM. Al termine del prelievo del tessuto, spostare il cappuccio facendo clic con il tasto destro sul cappuccio, selezionando quindi "sposta" e poi "rimuovi", come indicato nel protocollo testuale; utilizzare il vetrino processato per immunohistochimica come riferimento per selezionare la regione di interesse dal tessuto presente sulla membrana a pennarello. Nella barra degli strumenti di microdissezione, selezionare la scheda "taglia e cattura", quindi scegliere la scheda "linea di taglio" e, utilizzando il vetrino etichettato per immunohistochimica come guida, delimitare la regione di interesse sotto l'obiettivo 10x.
Prova, accendi e punta i laser IR e UV come mostrato in precedenza. In questo video, nella barra degli strumenti della microdissezione, seleziona la scheda vai a catturare e tagliare. Quindi sposta il cappuccio LCM dal tessuto per determinare se il tessuto è stato rimosso dalla sezione e si è attaccato al cappuccio.
Al termine della raccolta del tessuto, per rimuovere il cappuccio, fare clic con il tasto destro sul cappuccio e selezionare "sposta in", quindi scaricare le microfotografie. Le figure dimostrano che la LCM è in grado di isolare singoli neuroni dopaminergici immunoreattivi per la tirosina idrossilasi utilizzando il laser IR o i laser IR e UV, poiché l'uso più comune delle cellule nei tessuti isolati mediante LCM è l'analisi dell'RNA. Le procedure presentate sono state ottimizzate per preservare l'integrità dell'RNA, come evidenziato da una riduzione relativa dell'altezza del picco dell'rRNA 28 S rispetto al picco 18 S. L'integrità dell'RNA è risultata ridotta nei campioni ottenuti con LCM dopo immunohistochimica, seguita da fissazione con acetone, rispetto all'RNA ottenuto dal cervello intero. Per misurare la quantità di RNA ottenuta da neuroni acquisiti tramite L-C-M-R-N-A da neuroni dopaminergici della regione ventrale tegmentale, su vetrini preparati con soluzione salina, i campioni sono stati isolati in base alla curva standard generata: sono stati ottenuti rispettivamente 17,3, 24,8 e 50,9 picogrammi per microlitro da 5, 100 e 200 neuroni dopaminergici.
E utilizzando la QPCR per misurare la qualità dell'RNA, un intervallo di concentrazioni di RNA proveniente dall'intero cervello e da neuroni dopaminergici è stato sottoposto a trascrizione inversa e il gene della beta-actina è stato misurato da queste misurazioni; concentrazioni di 3,55, 6,82 e 20,58 picogrammi per microlitro sono state calcolate rispettivamente da 5, 100 e 200 neuroni dopaminergici. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come utilizzare il microscopio a cattura laser per isolare singoli neuroni dopaminergici o per isolare regioni di neuroni dopaminergici.
Questo articolo descrive un protocollo per l'isolamento di neuroni dopaminergici da sezioni di tessuto mediante microdissezione laser assistita da cattura (LCM) combinata con immunohistochemia. Il metodo consente la raccolta precisa di singoli neuroni dopaminergici o di specifiche regioni anatomiche, come l'area tegmentale ventrale, per analisi molecolari successive. Il protocollo sottolinea le fasi necessarie per preservare l'integrità dell'RNA, permettendo un'estrazione di RNA di alta qualità adatta per PCR quantitativa e altre applicazioni.
La microdissezione con laser (LCM) combinata con immunohistochemia consente l'isolamento preciso di neuroni dopaminergici o di regioni cerebrali definite, supportando un profilo molecolare ad alta fedeltà nelle fasi iniziali della scoperta. Questo approccio aumenta la sicurezza predittiva nella validazione degli obiettivi, garantendo che le analisi successive siano effettuate su popolazioni cellulari altamente specifiche. La capacità del metodo di produrre RNA di alta qualità da quantità minime di materiale iniziale ha un impatto diretto sulla continuità traslazionale e sulle decisioni di portafoglio corrette in base al rischio.
La LCM con immunohistochemia si integra nel percorso dalla scoperta alla fase preclinica consentendo l'isolamento preciso di cellule per analisi molecolari, sostenendo sia la verifica di ipotesi sia lo sviluppo di biomarcatori traslazionali.