Name: Unicellulare espressione genica Utilizzando Multiplex RT-qPCR per caratterizzare eterogeneità delle rare popolazioni linfoidi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 23 s
Description: Scopri l'espressione genica unicellulare mediante RT-qPCR multiplex per caratterizzare l'eterogeneità delle popolazioni linfoidi rare. Questo metodo consente l'analisi simultanea di almeno 48 geni in singole cellule.

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Questo lavoro è stato sostenuto dall'Institut Pasteur, dall'INSERM, dall'Université Paris Diderot e dal Ministère de la Recherche (fino a S.C.); dall'Association pour la Recherche sur le Cancer (fino a S.C. e R.G.); dal REVIVE Future Investment Program e dall'Agence Nationale de Recherche (ANR; sovvenzione ''Twothyme'' ad A.C.); Sovvenzione ANR ''Myeloten'' (a R.G.); e l'Institut National du Cancer (Ruolo del microambiente immunitario durante la carcinogenesi epatica, a R.G.). Ringraziamo il Centro di Immunologia Umana e Citometria dell'Institut Pasteur per il suo sostegno.

Tutti gli esperimenti sugli animali sono stati approvati del da parte del Comitato per la sicurezza dell'Istituto Pasteur in conformità con l'agricoltura Ministero francese e gli orientamenti UE. 1. Preparare un 96 pozzetti Ordinamento Piastra Single-cell <ol><li> Preparare mix pre-amplificazione in una provetta da 1,5 ml aggiungendo 5,0 ml di specifiche tampone retrotrascrizione, 1,3 ml di bassa dell'acido etilendiamminotetraacetico tampone (EDTA) TE (10 soluzione mM TE, pH 8, e la soluzione 0,1 mM EDTA, 0,2 mM filtrato ), e 0,2 ml di Taq DNA polimerasi per pozzetto (Figura 1a). </li><li> Su una piastra a 96 pozzetti, distribuire 6,5 microlitri di miscela pre-amplificazione in ciascun pozzetto (fino a 48 pozzetti). Questa piastra è la piastra di ordinamento cella singola 96 pozzetti. NOTA: L'utilizzo di un pipetta elettronica è consigliato per questo protocollo. Permette di misure precise e riproducibili del volume e fa risparmiare tempo. </li></ol><img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/54858/54858fig1.jpg"> (A) In 96 pozzetti single-cell sorting piatto, la miscela di pre-amplificazione è distribuito per primo, seguito dal mix dosaggio 0.2X. (B) La documentazione di ogni singola posizione cellule dovrebbe essere mantenuta su un foglio di calcolo. Un bene senza una cellula è chiamato un pozzo "no input" e può essere utilizzato come controllo. Due righe possono essere risparmiati per controllare l'efficienza di fondo con diluizione cDNA (sequenziali diluizioni uno-a-dieci dal equivalente di 10 5 cellule di una cella). (C) Sulla piastra di test a 96 pozzetti, il reagente test di carico è distribuito prima, seguita dall'aggiunta di primer. Non dimenticare di mantenere un layout di ogni posizione primer. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54858/54858fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <ol start="3"><li> Preparare una miscela test 0.2x in una provetta da 1,5 ml aggiungendo 1,4 ml di ciascun primer (primer 20x, fino a 48 diverse sonde; vedere Tabella 1). Regolare il volume finale a 140 ml con basso tampone EDTA TE. </li><li> Distribuire 2.5 ml di miscela test 0.2x ai 48 pozzetti della piastra di ordinamento cella singola a 96 pozzetti contenente la miscela di pre-amplificazione. NOTA: Il volume finale in ciascun pozzetto della piastra del campione 96 pozzetti dovrebbe essere 9 microlitri. </li><li> Sigillare la piastra con un film di copertura. Vortice la piastra e spin giù a 280 g per 45 sec. Conservare la piastra a 96 pozzetti di smistamento single-cell a -20 ° C o usarlo subito. </li></ol> 2. La dissociazione Single Cell <ol><li> Utilizzando un sistema di erogazione di CO 2, un mouse eutanasia dall'ipossia. Fissare il mouse su un piatto dissezione e aprire la cavità peritoneale longitudinalmente con le forbici. </li><li> Recuperare ILCs dal fegato. <ol><li> Prima di isolamento del fegato, a filo del livcellule ER-circolanti. <ol><li> Per far risaltare la vena porta, spostare il piccolo e crasso al lato sinistro del mouse; la vena porta appare come la più grande vena nella cavità peritoneale. </li><li> Con una siringa da 10 ml e un ago 0,45 millimetri, lavare il fegato con mezzo tampone fosfato salino (PBS) attraverso la vena porta. Per facilitare vampate di fegato, tagliare l'arteria gastrica con le forbici. </li><li> Per rimuovere la cistifellea, pizzicare la base della colecisti con una pinza e separarlo dal fegato con le forbici. </li><li> Per isolare il fegato, stringere la base del fegato con una pinza, e con le forbici, separare il fegato dal resto della cavità peritoneale. </li><li> Trasferire il fegato in un tubo Potter con 5 ml di terreno Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 2% di siero fetale bovino (FCS). </li></ol></li></ol></li><li> Dissociare il fegato con una dissociazione meccanico utilizzando un pestello. Trasferire il mezzo ad una provetta da 15 ml. Portare il volume totalea 14 ml con RPMI 2% FCS. Lasciare la sospensione cellulare in ghiaccio per 15-20 minuti a decantare epatociti. </li><li> Recuperare il surnatante (senza gli epatociti) in un nuovo tubo 15 ml con una pipetta 1 ml (12 ml del surnatante può aspettare). Centrifugare a 120 xg per 7 minuti a 10 ° C. Eliminare il surnatante dopo la centrifugazione. </li><li> Risospendere il pellet ottenuto al punto 2.4 in 14 ml di terreno gradiente di densità (ad esempio, Percoll 40%). Centrifugare a 600 xg per 20 min a 20 ° C. Rimuovere il surnatante tramite aspirazione. </li><li> Risospendere il pellet in 1 ml di acetato di potassio (ACK). Lasciare a temperatura ambiente per 1 min. Dopo 1 minuto, portare il volume totale di 14 ml con la soluzione di Hank Balanced Salato (HBSS) 2% FCS. Centrifugare a 120 xg per 7 minuti a 10 ° C. Eliminare il surnatante. </li><li> Macchiare le cellule. <ol><li> Risospendere il pellet in 300 ml di mix anticorpo biotinilato (si veda la tabella materiali, aggiungere tutti gli anticorpi biotinilati parlarendr) e trasferire le cellule in 1,5 ml di tubo. Lasciare al buio per 20 minuti a 4 ° C. </li><li> Portare il volume totale di 1 ml con HBSS 2% FCS. Centrifugare a 120 xg per 7 minuti a 10 ° C. Risospendere il pellet in 300 ml di mix di anticorpi fluorocromo accoppiati e streptavidina coniugato a un fluorocromo (vedere la tabella dei materiali; aggiungere tutti gli anticorpi fluorocromi accoppiati menzionati). Lasciare al buio per 20 minuti a 4 ° C. </li></ol></li><li> Portare il volume totale di 1 ml con HBSS 2% FCS. Centrifugare a 120 xg per 7 minuti a 10 ° C. Rimuovere il surnatante con una pipetta 1 ml. Risospendere il pellet in 1 ml HBSS e ioduro di propidio (Pi; 1: 4.000). NOTA: Quando si usano i marcatori di superficie cellulare ILC ampiamente espressi, sono definiti 3 popolazioni: NKp46 + IL-7Rα -, NKp46 + IL-7Rα +, e NKp46 - IL-7Rα +. Tutte le popolazioni sono ordinati lignaggio - CD3 - CD4 - CD45.2 +. </li></ol> 3. Single-cell fluorescenza-attivato cell sorting (FACS) <ol><li> Utilizzare FACS per ordinare singole cellule 13. NOTA: tipi di cellule differenti possono essere scelti sulla stessa piastra a 96 pozzetti classificare singola cellula (Figura 2). <ol><li> Utilizzare FACS per ordinare una cellula per pozzetto contenente la miscela test 0.2x e il mix preamplificazione sulla piastra a 96 pozzetti classificare singola cellula. Utilizzare una piastra di ordinamento cella singola da 96 pozzetti appena preparata o scongelare, se conservati a -20 ° C. <ol><li> Mettere una piastra a 96 pozzetti a tenuta sul supporto piastra FACS. Utilizzare una piastra a 96 pozzetti vuoto come test. Posizionare la piastra con il A1-bene sulla sinistra e verso lo sperimentatore. </li><li> Regolare il portatarga per ottenere una goccia nel centro della A1 pozzetti con perline di verifica. </li><li> Ripetere il passaggio 3.1.1.2 con tutti i pozzi in linea A. </li><li> Rimuovere il sigillo dalla piastra a 96 pozzetti e di ordinamento 100 perle di verifica per bene. Verificare la presenza di dformazione rop nel centro dei pozzetti. </li><li> Quando regolato correttamente, posizionare la piastra di ordinamento cella singola da 96 pozzetti sul supporto piastra. Disegnare il layout della piastra e ordinare 1 cellule per pozzetto. NOTA: Il corretto posizionamento di ogni cella sulla piastra di smistamento 96 pozzetti singola cellula è essenziale. Un layout piatto dovrebbe essere mantenuta su un foglio elettronico. Il layout piastra sarà utilizzato nei successivi passaggi (Figura 1b) 14. Lasciare un pozzetto contenente miscela test 0.2x e mix di pre-amplificazione sul piatto del campione a 96 pozzetti, senza cellule. Questo pozzetto viene usato come controllo non-input. Lasciare due file di 6 pozzetti per una diluizione cDNA. Questi pozzi sono utilizzati come controlli per l'efficienza di primer (Figura 1b). </li><li> Conservare la piastra a 96 pozzetti di smistamento single-cell a -20 ° C o usarlo subito. </li></ol></li></ol></li></ol> 4. Pre-amplificazione <ol><li> Utilizzare una piastra di ordinamento cella singola OBT freschi o scongelati a 96 pozzettiained al punto 3.1.1.6. Vortice la piastra e girare verso il basso (280 xg per 45 sec). </li><li> Posizionare la piastra di ordinamento cella singola da 96 pozzetti sul termociclatore. Eseguire la trascrizione inversa e preamplificazione secondo il programma di cui in Figura 3 e nella tabella 2. </li></ol><img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/54858/54858fig3.jpg"> Figura 3: programma di pre-amplificazione. Per avere materiale sufficiente, è necessario pre-amplificazione specifici geni bersaglio su singole cellule ordinati. La piastra di ordinamento monocellulari 96 pozzetti è caricato su un termociclatore a seguire il programma pre-amplificazione. I prodotti pre-amplificazione vengono diluiti con bassa EDTA tampone TE e possono essere utilizzati immediatamente o congelati a -20 ° C. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54858/54858fig3large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <ol start="3"><li> Diluire il pre-ampcampioni con diplomi con l'aggiunta di 36 ml di bassa tampone EDTA TE in ciascun pozzetto. </li><li> Sigillare la piastra con un film di copertura. Vortice la piastra e girare verso il basso (280 g per 45 sec). Conservare il, 96-pozzetti di ordinamento pre-amplificato single-cell a -20 ° C o usarlo subito. </li></ol> 5. preparare un campione piastra a 96 pozzetti <ol><li> Preparare 191 ml di master mix con l'aggiunta di 175 ml di qPCR master mix e 17,5 ml di caricamento del campione reagente. </li><li> Su una nuova piastra a 96 pozzetti, distribuire 3,6 microlitri di master mix in ciascun pozzetto (fino a 48 pozzetti). Questo è il piatto del campione a 96 pozzetti. </li><li> Trasferire 2,9 ml di cDNA pre-amplificato dalla piastra del campione a 96 pozzetti alla nuova piastra a 96 pozzetti. Mantenere la stessa posizione per ciascun campione tra la piastra cell sorting 96-singolo e la piastra del campione a 96 pozzetti. </li><li> Sigillare la piastra con un film di copertura. Vortice la piastra e girare verso il basso (280 xg per 45 sec). Posizionare la nuova piastra a 96 pozzetti sul ghiaccio al riparo dalla luce. Conservare il 96 pozzetti sampio piatto a -20 ° C o utilizzare immediatamente. </li></ol> 6. Preparare una piastra Assay ben 96 <ol><li> Su una nuova piastra a 96 pozzetti, distribuire 3 ml di dosaggio di carico di reagente in ciascun pozzetto (fino a 48 pozzetti). Questa piastra è chiamata la micropiastra a 96 pozzetti. </li><li> Aggiungere 3 ml di primer in ogni pozzetto. Tenere un layout su un software di foglio di calcolo (Figura 1c e Tabella 1; utilizzare tutte primer elencati nella tabella 1). Il corretto posizionamento di ogni primer sulla piastra di test a 96 pozzetti è essenziale per i successivi passaggi. <ol><li> Se il numero di campioni è inferiore a 48, aggiungere acqua invece di primer per pozzi inutilizzati. </li></ol></li><li> Sigillare la piastra con un film di copertura. Vortice la piastra e girare verso il basso (280 xg per 45 sec). Conservare la piastra a 96 pozzetti test a -20 ° C o usarlo subito. NOTA: per evitare cicli ripetuti di congelamento e scongelamento dei primer, distribuire i primer per il mix di pre-amplificazione e per il 96-WELl piastra di test allo stesso tempo. </li></ol> 7. Single-cell gene-espressione Chip <ol><li> Posizionare il circuito integrato microfluidica (IFC) in panchina e controllare le valvole usando la siringa innevate. Aprire la siringa, posizionarlo perpendicolarmente alla valvola, e premere con decisione. L'o-ring deve muoversi. Riempire il circuito integrato con il liquido di controllo (0,3 ml di tubercolina). </li><li> Ripetere il passaggio 7.1 con la seconda valvola. NOTA: Nessun liquido deve essere versato sopra il chip. </li><li> Rimuovere la pellicola blu dal fondo della piastrina. Caricare il chip nel controller IFC. Sullo schermo del controller IFC, selezionare "PRIME" e poi su "Esegui". Il controllo delle linee microfluidica durano 10 min. </li><li> Estrarre il chip e ri-sigillare la pellicola blu sul fondo della piastrina. </li></ol><img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/54858/54858fig4.jpg"> Figura 4: Single-cell multiplex di espressione genica di chip di carico. Questi passaggi richiedono gprecisione reat, in particolare durante il trasferimento della piastra a 96 pozzetti per il multiplex gene chip-espressione della singola cellula. Per evitare errori di carico e misplacements, si consiglia vivamente di lavorare in modo sequenziale. Il volume preso per ogni trasferimento deve essere controllata durante il processo di pipettaggio. Infine, è importante per evitare eventuali bolle e per rimuoverli in caso di formazione. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54858/54858figfourlarge.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <ol start="5"><li> Usando una pipetta a 8 canali, trasferimento 5 microlitri dalla piastra dosaggio 96 pozzetti sul lato A1 (lato sinistro) del chip. Riempire il lato sinistro del circuito integrato, come indicato in figura 4. Fare attenzione a disegnare sempre lo stesso volume nelle punte. <ol><li> Non creare bolle. Se appaiono bolle, rimuoverli con 10 consigli microlitri. Modifica suggerimenti per ogni pozzetto del chip. </li></ol></li><li> Ripetere il passaggio 7.5 sul lato destro of chip con 5 microlitri dalla piastra campione 96 pozzetti. </li><li> Rimuovere la pellicola blu dal fondo della piastrina. Caricare il chip nel controller IFC. Sullo schermo del controller IFC, selezionare "Run Script" e poi "RUN". Il caricamento delle linee microfluidica dura 45 min. </li><li> Estrarre il chip e ri-sigillare la pellicola blu sul fondo della piastrina. </li></ol> 8. Eseguire il Chip <ol><li> Sul computer microfluidica qPCR, selezionare il software "Raccolta dati". Una volta che comincia, selezionare "Nuovo Esegui". </li><li> Selezionare "Eject", rimuovere la pellicola blu dal fondo della piastrina, e caricare il chip. Posizionare il chip per ottenere A1 bene sulla sinistra e verso lo sperimentatore. </li><li> Su "l'impostazione del progetto," selezionare "Nessuno" e poi su "Avanti". </li><li> Selezionare "Esegui nuovo chip", "directory nuovo chip" (creare una cartella per l'esperimento), e "Avanti". </li><li> Su "L'espressione genica" selezionare "; Riferimento passivo = ROX "(carbossi-x-rodamina) e" Sonda unico; "selezionare il filtro corretto secondo i primer Selezionare." Avanti ". </li><li> Selezionare "Sfoglia" e selezionare il programma corretto in base ai primer utilizzati. NOTA: "Default-10min-Hotstart.pcl" è il programma più utilizzato per multiplex cella singola RT-qPCR. </li><li> Selezionare "Start Esegui". La reazione dura circa 90 min. </li><li> Una volta terminato, selezionare "Eject-Done". </li></ol> 9. Analisi dei dati <ol><li> Aprire il software "Real-Time PCR Analisi", selezionare "File" e "Open", trovare la cartella esperimento, e selezionare "il file ChipRun.bml." </li><li> Clicca su "Analisi View", "Tabella risultati" e "Heat Map View;" campi contrassegnati con una "X" sono al di sotto del livello di rilevamento di soglia e / o aveva curve di amplificazione cattivi. </li><li> Nome i campioni. Vai a "Configurazione di esempio" e SELect "Nuovo SBS 96." Clicca su "Mapping" e selezionare "..." Copia e incolla il layout design campione dal software del foglio elettronico. Definire il layout incollato come "Nome del campione." </li><li> Nome i saggi. Ripetere il punto 9.3 con i nomi di primer in "Setup Detector". Definire il layout incollato come "Nome Detector". </li><li> Clicca su "Analisi vista" e "Analizza"; i nomi dei campioni e di primer saranno attribuiti automaticamente ai campioni e primer (Figura 7). </li><li> Calcolare Ct, Delta Ct, e Piega Change per ogni campione. Utilizzare un gene housekeeping come controllo interno (qui, GAPDH): ΔCt = Ct campione - controllo interno Ct Piegare Change = 2 - (controllo ΔCtsample-ΔCtnegative) <ol><li> Fare clic su "Setup Detector" e selezionare il pozzo senza alcun controllo di input (utilizzare il gene housekeeping come controllo interno per normalizzare l'espressione genica). Selezionare "EDitor "," definire il riferimento, "e" Update ". </li><li> Selezionare tutti i pozzetti a cui verrà applicato il controllo interno sopra definito. Selezionare "Editor" e "definire Test". Selezionare un gene di riferimento appropriato e fare clic su "Aggiorna". </li><li> Selezionare "Impostazioni di esempio" per selezionare bene il controllo negativo. Selezionare "Editor" e definire "di riferimento". Fai clic su "Update". </li><li> Selezionare "Analisi View" e "Analizza"; Delta del Ct e piega Change verranno automaticamente calcolate. </li></ol></li><li> Esportare i dati. Selezionare "File" e "Esporta, salva come" tabella dei risultati ", selezionare la cartella di destinazione e premere" Salva "e" Exit ". </li><li> Ripetere il passaggio 9.7, ma invece di "tabella dei risultati," Salva con nome "HeatMap risultati". </li></ol>

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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Questo protocollo descrive come ottenere informazioni esaustive espressione genica a livello clonale. Qui, abbiamo studiato il fegato ILC eterogeneità vano. Dopo l&#39;ordinamento cella singola di diverse popolazioni ILC (sulla base di marcatori di superficie ILC ampiamente espresse), i campioni sono stati pre-amplificati per specifici geni pre-selezionati. Poi, il cDNA ottenuto e primer sono stati caricati su un multiplex RT-qPCR chip microfluidico. Infine, abbiamo ottenuto l&#39;espressione di 48 geni diversi dal 48 s...

Nel corso degli ultimi anni, le cellule linfoidi innate (ILCS) sono stati sempre più studiati. Nonostante la loro mancanza di recettori antigene-specifiche, essi appartengono al lignaggio linfoidi e rappresentano sentinelle importanti per l&#39;omeostasi dei tessuti e l&#39;infiammazione. ILCs sono attualmente divisi in tre gruppi in base alla loro espressione di specifiche combinazioni di fattori di trascrizione e sulla loro capacità di produrre citochine 6, 7. ILC contribuiscono a numerose situazioni omeostatici e fisiopatologici in diversi organi attraverso la produzione di citochine specifiche 8, 9. Per essere in grado di comprendere il ruolo di queste cellule, è importante determinare le varie sottopopolazioni ILC per organo e per identificare le loro relazioni evolutive. Inoltre, fenomeni di plasticità tra i diversi sottoinsiemi sono stati correlati. Studiando l&#39;eterogeneitàdelle cellule presenti in un organo, è possibile delimitare la loro fase di maturazione e distinguere le loro funzioni specifiche. Per illustrare la tecnica di multiplex cella singola RT-qPCR, ILC epatici sono stati scelti, con una particolare attenzione per la loro eterogeneità all&#39;interno dello stesso gruppo ILC (tipo 1 ILC) 10. Innanzitutto, attraverso l&#39;uso di citometria a flusso, tre popolazioni ILC distinti stati caratterizzati nel fegato. Gruppo 1 ILC rappresenta circa il 80% degli effettori innati, mentre le altre due popolazioni sono rari popolazioni ILC epatiche (meno del 5% degli effettori innati). Quelle popolazioni sono stati ordinati utilizzando marcatori superficie cellulare ampiamente espresse delle popolazioni ILC. Come risultato, scelti popolazioni ILC nel fegato guardano uno sostanzialmente simile ad un altro. Multiplex cella singola RT-qPCR è emerso come uno dei migliori tecniche per investigare prontamente l&#39;eterogeneità di queste popolazioni 11 </sup&gt;. Due caratteristiche principali sono determinate dalla sfruttando il multiplex cella singola tecnica di RT-qPCR. Innanzitutto, cercando a livello clonale, è possibile recuperare l&#39;espressione genica specifica delle cellule per il confronto tra le cellule che apparentemente mostrano stadi di sviluppo simili. Poi, cercando in una combinazione pre-selezionata di espressione genica, si determinerà nuove firme genetiche sulla base di modelli di espressione genica simultanee a un certo punto del tempo. Questi aspetti permettono la raccolta di una grande varietà di dati di espressione per un gran numero di cellule, anche in rare popolazioni, dato che la tecnica viene eseguita a livello clonale. In tal modo, l&#39;eterogeneità ILC nel fegato può essere adeguatamente valutata. Avanti, di classificare tutte le cellule con un fenotipo ILC globale, un&#39;ampia panoramica della espressione genica multiple del fegato popolazioni ILC si ottiene, anche se rappresentano popolazioni estremamente rari. Un chip microfluidica-based consente la sperimentazione con ancorauna piccola quantità di materiale cellulare. Di conseguenza, i profili di espressione genica di popolazioni di cellule rare possono essere ottenuti. Usando in linea gene firma software di analisi, i cluster di popolazione cellulare e potenziali relazioni di cellule può essere indagato. Di conseguenza, i test funzionali possono essere eseguiti per convalidare i dati di clustering al livello in vivo. Decine di espressione genica può essere stabilita contemporaneamente su centinaia o più celle singole sullo stesso chip 3, 11, 12. Progettazione del saggio è la parte più lunga e più importante di questo esperimento. La determinazione dei geni rilevanti per l&#39;ipotesi da testare è fondamentale per ottenere risultati rilevanti. In secondo luogo, sono necessari dei controlli interni (come marcatori di superficie noti utilizzati per l&#39;ordinamento) e controlli specifici. Ciò è fondamentale per testare la specificità di primer di amplificazione, l&#39;efficienza dell&#39;amplificazione, e tegli assenza di concorrenza primer. Pertanto, lavorando con multiplex cella singola RT-qPCR è una tecnica risparmiare tempo, come espressione multipla gene di una cella è valutata allo stesso tempo. Utilizzando lo stesso chip e miscelazione dei reagenti per tutte le celle limita i possibili errori di manipolazione e consente riproducibilità tra i campioni. Complessivamente, i diversi aspetti della multiplex singola cellula RT-qPCR consente la produzione di risultati altamente affidabili a livello clonale, con un grande livello di sensibilità per un&#39;ampia varietà di campioni e geni. I risultati ottenuti offrono dati potenti e affidabili per i test di biostatistica. Ciò può essere ottenuto grazie all&#39;aspetto microfluidica del metodo, che consente di lavorare su piccolissime quantità di materiale e porta a risultati esaustivi. Infine, utilizzando software online, è possibile confrontare le popolazioni desiderati.

<table><tbody><tr><td>Kit qRT-PCR Cells Direct One Step</td><td>Biosystems applicati&nbsp;</td><td>11753100</td><td>Kit di rilevamento della sonda di innesco. Contiene 2x miscela di reazione, enzima platinio SSIII.</td></tr><tr><td>Tampone EDTA a basso TE</td><td>Affymetrix</td><td>75793 100ML</td><td></td></tr><tr><td>Piastre a 96 pozzetti</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>AB 1100</td><td>Piastre a 96 pozzetti adattate per la selezione cellulare e il termociclo</td></tr><tr><td>Film di copertura</td><td>Dominique Dutscher</td><td>106570</td><td>film di copertura in alluminio; evitare la contaminazione e l'evaporazione</td></tr><tr><td>Actb</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00607939_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Aes</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01148854_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Ahr</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00478932_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Bcl2</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00477631_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>c-myc</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00487804_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Cbfb</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01251026_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Cd27</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01185212_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Cd49a</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01306375_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>CD49b</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00434371_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Cxcr5</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00432086_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Cxcr6</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm02620517_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Eomes</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01351985_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Ets1</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01175819_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Foxo1</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00490672_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Gapdh</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm03302249_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Gata3</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00484683_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Gm-csf</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01136644_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Hes1</td><td>Thermofisher Scientific Mm01342805_s1</td><td></td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Hprt</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00446968_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Id2</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01293217_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Il-12rb2</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00711781_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Il-18r1</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00515178_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Il-1rl1</td><td>Thermofisher Scientific Mm00434237_s1</td><td></td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Il-22</td><td>Thermofisher Scientific Mm001226722_s1</td><td></td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Il-23r</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00519943_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Il-2ra</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01340213_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Il-2rb</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01195267_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>IL-7r</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00434295_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Klr5</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm04207528_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Lef1</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00550265_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Ncr1</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01337324_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Nfil3</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01339838_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Notch1</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00435249_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Notch2</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00803069_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Rora</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01173766_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Rorc</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01261022_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Runx3</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00490666_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Tbx21</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01299453_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Tcf3</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01175588_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Tcf7</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00493445_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Tle1</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00495643_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Tle3</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00437097_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Tsc22d3</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01306210_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Tnfrsf11a</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00437132_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Tox</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00455231_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Zbtb16</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm01176868_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>Zbtb7b</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>Mm00784709_s1</td><td>20x primer</td></tr><tr><td>qPCR Master mix&nbsp;</td><td>Applied BioSystems</td><td>P/N 4304437</td><td></td></tr><tr><td>2x Reagente di caricamento del saggio</td><td>Fluidigm</td><td>P/N 85000736</td><td>Terreno a densità specifica per caricare saggi in chip microfluidico multiplex RT-qPCR.</td></tr><tr><td>2x Reagente di caricamento del campione</td><td>Fluidigm</td><td>P/N 85000735</td><td>Terreno a densità specifica per caricare i campioni nel chip microfluidico multiplex RT-qPCR.</td></tr><tr><td>48.48 chip microfluidico multiplex RT qPCR</td><td>Fluidigm</td><td>BMK-M-48.48</td><td>48.48 Dynamic Array IFC per l'espressione genica; chip per reazione RT-qPCR multiplex a cella singola</td></tr><tr><td>48.48 multiplex RT qPCR controllore di chip microfluidico</td><td>Fluidigm</td><td>89000020</td><td>48.48 IFC Controller; controllare il sistema fluidico interno del chip, caricare campioni e saggi nelle camere di reazione</td></tr><tr><td>multiplex RT qPCR termociclatore microfluidico</td><td>Fluidigm</td><td>GE48.48</td><td>48.48 Dynamic Array IFC termociclatore</td></tr> piastre <tr><td>a 96 pozzetti</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>AB 1100</td><td>Piastre a 96 pozzetti adattate per la selezione cellulare e il termociclo</td></tr><tr><td>di topi C57Bl/6</td><td>Janvier</td><td>C57Bl/6 miceJ@RJ</td><td></td></tr><tr><td>siringa da 10 ml</td><td>BD Biosciences</td><td>309639</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Life Technologies</td><td>14040174</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Life Technologies</td><td>24020133</td><td></td></tr><tr><td>RPMI</td><td>Life Technologies</td><td>61870044</td><td></td></tr><tr><td>FCS</td><td>CVFSVF000U</td><td>Eurobio Abcys</td><td>Siero fetale di vitello standard</td></tr><tr><td>Potter tubo</td><td>N/A Tubo</td><td></td><td></td></tr> da <tr><td>15 ml</td><td>Corning</td><td>352097</td><td></td></tr><tr><td>Tubo da 1,5 ml</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T9661-1000EA</td><td></td></tr><tr><td>Macchina FACS</td><td>N/A</td><td></td><td></td></tr><tr><td>centrifuga&nbsp;</td><td>Thermofisher Scientific 75004538</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1.000 &micro; l punte</td><td>Fisher Scientific</td><td>10313272</td><td></td></tr><tr><td>P1000&nbsp;</td><td>Gilson</td><td>F123602</td><td></td></tr><tr><td>Percoll</td><td>Dominique Dutscher</td><td>17-0891-01</td><td></td></tr><tr><td>Facs tubo</td><td>Falcon</td><td>352235</td><td></td></tr><tr><td>anti-CD8 Anticorpo di topo alla biotina</td><td>Anticorpo di lignaggio</td><td>Sony</td><td>1103520</td></tr><tr><td>anti-CD19 Anticorpo di topo alla biotina</td><td>Anticorpo di</td><td>lignaggio</td>Sony <td>1177520</td></tr><tr><td>anti-TCRab Anticorpo di topo alla biotina</td><td>BioLegend</td><td>Anticorpo di</td><td>lignaggio</td>109204</tr><tr><td>anti-TCRgd Anticorpo di topo di biotina</td><td>BD Biosciences</td><td>Anticorpo di lignaggio</td><td>di 553176</td></tr><tr><td>anti-Ter119 Anticorpo di topo di biotina</td><td>BD Biosciences</td><td>Anticorpo di lignaggio</td><td>di 553672</td></tr><tr><td>anti-Gr1 Anticorpo di topo di biotina</td><td>BD Biosciences</td><td>Anticorpo di</td><td>lignaggio</td>di 553125</tr><tr><td>anticorpo anti-CD45.2 PerCPCy5.5 anticorpo di topo</td><td>BioLegend</td><td>109828</td><td></td></tr><tr><td>anti-IL7ra PeCy7 anticorpo di topo</td><td>ebioSciences</td><td>25-1271-82</td><td></td></tr><tr><td>anti-CD3 BV510 anticorpo di topo</td><td>BD Biosciences</td><td>563024</td><td></td></tr><tr><td>anti-CD4 BV786 anticorpo di topo</td><td>BD Biosciences</td><td>563727</td><td></td></tr><tr><td>anti-NKp46 PE anticorpo di topo</td><td>ebioSciences</td><td>12-3351-82</td><td></td></tr><tr><td>Streptavidina</td><td>Sony</td><td>2626025</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>Pipetta elettronica Eppendorf</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>4986000017</td><td></td></tr><tr><td>Pipetta</td><td></td> multicanale <td>30089405Rainin</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>L8-10XLS+</td><td></td></tr><tr><td>Accuis</td><td>BD Bioscience</td><td>345249</td> s <td>per FACS</td></tr></tbody></table>

unicellulare espressione genica utilizzando multiplex rt-qpcr per caratterizzare eterogeneità delle rare popolazioni linfoidi

Single-cell Gene Expression Using Multiplex RT-qPCR to Characterize Heterogeneity of Rare Lymphoid Populations

Espressione genica eterogeneità è una caratteristica interessante per indagare nelle popolazioni linfoidi. Espressione genica in queste cellule varia durante l&#39;attivazione delle cellule, stress, o la stimolazione. Single-cell espressione genica multiplex consente la valutazione simultanea di decine di geni 1, 2, 3. A livello di singola cellula, l&#39;espressione genica multiplex determina popolazione eterogeneità 4, 5. Esso permette la distinzione di eterogeneità della popolazione per determinare sia la probabile mix di diversi stadi precursori tra cellule mature e anche la diversità delle risposte delle cellule agli stimoli. Cellule linfoidi innate (ILC) Recentemente sono state descritte come una popolazione di effettori innate della risposta immunitaria 6, 7. In questo protocollo, l&#39;eterogeneità delle cellule della ILC haVano Patic è indagato durante l&#39;omeostasi. Attualmente, la tecnica più utilizzata per valutare l&#39;espressione genica è RT-qPCR. Questo metodo misura l&#39;espressione genica solo un gene alla volta. Inoltre, questo metodo non può stimare eterogeneità di espressione genica, poiché più celle sono necessari per una prova. Questo porta alla misurazione dell&#39;espressione genica media della popolazione. Nel valutare un gran numero di geni, RT-qPCR diventa un tempo-, e il metodo di campionamento che consumano reagent-. Quindi, i compromessi limitano il numero di geni o popolazioni di cellule che possono essere valutati, aumentando il rischio di perdere il quadro globale. Questo manoscritto descrive come multiplex singola cellula RT-qPCR può essere utilizzato per superare queste limitazioni. Questa tecnica ha beneficiato di recente microfluidica progressi tecnologici 1, 2. Le reazioni che si verificano in multiplex chip RT-qPCR non lo fanno exceed il livello nanolitro. Quindi, l&#39;espressione genica cella singola, nonché simultanea espressione genica multipla, possono essere eseguite in un reagent-, di prova e conveniente modo. È possibile testare genica firma eterogeneità a livello clonale tra sottogruppi di cellule in una popolazione a diversi stadi di sviluppo o in diverse condizioni 4, 5. Lavorando in rare popolazioni con un gran numero di condizioni a livello di singola cellula non è più una limitazione.

popolazioni linfoidi grandi differenze in termini di espressione genica. In questo protocollo, fegato vano ILC eterogeneità è stata studiata usando multiplex cella singola RT-qPCR espressione genica. A differenza di altre tecniche di espressione genica, multiplex cella singola RT-qPCR espressione genica permette lavori su varie popolazioni, anche i più rari, allo stesso tempo. Questa specificità, accoppiato con un elevata sensibilità a livello clonale, permette la ricerca di differenze d...

Questo protocollo descrive come valutare l&#39;espressione di una vasta gamma di geni a livello clonale. Single-cell RT-qPCR produce risultati altamente affidabili con una forte sensibilità per le centinaia di campioni e geni.

Unicellulare espressione genica Utilizzando Multiplex RT-qPCR per caratterizzare eterogeneità delle rare popolazioni linfoidi

Gene expression heterogeneity is an interesting feature to investigate in lymphoid populations. Gene expression in these cells varies during cell ...

L'obiettivo generale di questo esperimento è osservare l'espressione genica multipla in singole cellule. Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo dell'immunologia, come l'eterogeneità delle firme molecolari all'interno di una popolazione cellulare o una rara firma molecolare. Il vantaggio principale di questa tecnica è che specifiche firme molecolari con almeno 48 geni diversi possono essere valutate in molte cellule contemporaneamente.Iniziare questa procedura preparando una miscela di preamplificazione per 48 reazioni in una provetta da 1,5 millilitri. Aggiungere alla provetta 240 microlitri di tampone retrotrascrizione specifico, 62,4 microlitri di tampone EDTA TE basso e 9,6 microlitri di Taq DNA polimerasi. Utilizzando una pipetta elettronica, distribuire 6,5 microlitri della miscela di preamplificazione in ciascuno dei 48 pozzetti in una piastra a cella singola a 96 pozzetti.Quindi, preparare una miscela di saggio 0,2x in una provetta da 1,5 millilitri. Aggiungere al tubo 1,4 microlitri di ogni primer. Regolare il volume finale a 140 microlitri con tampone EDTA TE basso.Utilizzando una pipetta elettronica, distribuire 2,5 microlitri della miscela di saggio 0,2x nei 48 pozzetti della piastra di selezione a singola cellula a 96 pozzetti, contenente la miscela di preamplificazione. Sigillare la piastra con una pellicola di copertura. Agitare il piatto e farlo girare a 280 volte g per un minuto.Le singole cellule linfoidi innate epatiche, o ILC, saranno selezionate mediante smistamento cellulare attivato dalla fluorescenza. Iniziare questa procedura utilizzando una piastra vuota a 96 pozzetti come test. Posizionare la piastra di prova sul portapiastra con il pozzetto a sinistra e verso lo sperimentatore.Regolare il portatarga in modo da ottenere una goccia al centro di un pozzetto con le perline di verifica. Se regolata correttamente, posizionare la piastra di selezione a cella singola a 96 pozzetti contenente la miscela del saggio e la preamplificazione sul supporto della piastra. Disegna il layout della piastra e ordina una cella per pozzetto della popolazione recintata.Il corretto posizionamento di ciascuna cella sulla piastra di smistamento a 96 pozzetti a cella singola è essenziale e il layout della piastra deve essere mantenuto su un software per fogli di calcolo. Lasciare un pozzetto contenente una miscela di saggio 0,2x e una miscela di preamplificazione senza cellule, come controllo senza input. Facoltativamente, lasciare due file di sei pozzetti per la diluizione del cDNA come controlli per l'efficienza del primer.Immediatamente dopo la selezione a cella singola, vorticare e centrifugare la piastra di selezione a cella singola a 96 pozzetti. Posizionare la piastra nel termociclatore. Eseguire la trascrizione inversa e la preamplificazione come indicato.Per avere materiale sufficiente è necessaria la pre-amplificazione di specifici geni bersaglio su singole cellule selezionate. Diluire i campioni preamplificati aggiungendo 36 microlitri di tampone EDTA TE basso in ciascun pozzetto. Per iniziare questa procedura, preparare 191 microlitri di una Master Mix pipettando 175 microlitri di una Master Mix qPCR e 17,5 microlitri del reagente di caricamento del campione in una provetta da 1,5 millilitri.Su una nuova piastra da 96 pozzetti, distribuire 3,6 microlitri di Master Mix su ciascuno dei 48 pozzetti. Questa è la piastra campione a 96 pozzetti. Trasferire 2,9 microlitri di cDNA preamplificato dalla piastra di smistamento a 96 pozzetti a singola cellula alla nuova piastra di campionamento a 96 pozzetti, mantenendo la stessa posizione per ogni campione tra le due piastre.Preparare una piastra di dosaggio da 96 pozzetti distribuendo tre microlitri di reagente di caricamento del saggio a ciascuno dei 48 pozzetti su una nuova piastra da 96 pozzetti. Aggiungere tre microlitri di primer a ciascun pozzetto. Il corretto posizionamento di ciascun primer nella piastra di saggio a 96 pozzetti è essenziale.Mantieni un layout di targa su un software per fogli di calcolo. Per iniziare questa procedura, posizionare il circuito microfluidico integrato, o IFC, sul banco e controllare le valvole utilizzando una siringa. Rimuovere il cappuccio della siringa, posizionarlo perpendicolarmente a una valvola e premere con decisione.L'O-ring dovrebbe muoversi. Riempire il chip con il liquido della linea di controllo. Dopo aver ripetuto i passaggi precedenti con la seconda valvola, rimuovere la pellicola nera dal fondo del chip.Caricare il chip nel controller IFC. Nella schermata del controller IFC, selezionare prime, quindi eseguire. Quindi, espellere il chip e richiudere la pellicola nera sul fondo del chip.Utilizzando una pipetta a otto canali, trasferire cinque microlitri dalla piastra del saggio a 96 pozzetti al lato sinistro, o uno, del chip. Cambia le punte per ogni pozzetto del chip. Evita di creare bolle e, se compaiono bolle, usa punte da 10 microlitri per rimuoverle.Riempi il lato sinistro del chip come indicato. Allo stesso modo, riempire il lato destro del chip utilizzando cinque microlitri dalla piastra di campionamento a 96 pozzetti. Per il successo di questo esperimento, è essenziale che il chip IFC sia riempito correttamente per un corretto caricamento nel controller IFC.Rimuovere la pellicola blu dalla parte inferiore del chip e caricare il chip nel controller IFC. Nella schermata del controller IFC, selezionare load mix, quindi eseguire. Al termine, espellere il chip e richiudere la pellicola blu sul fondo del chip.Per eseguire il chip, selezionare prima il software di raccolta dati sul computer qPCR microfluidico. Una volta avviato, seleziona nuova esecuzione. Seleziona espulsione e carica il chip.Dopo aver configurato il software come descritto nel protocollo di testo, selezionare avvia esecuzione. La reazione durerà circa 90 minuti. Per iniziare l'analisi dei dati, aprire il software di analisi PCR in tempo reale, selezionare il file e aprire, trovare la cartella dell'esperimento e selezionare chip run dot b m one file.Fare clic sulla vista di analisi, sulla tabella dei risultati e sulla vista della mappa di calore. Le caselle contrassegnate con una x sono al di sotto del livello di rilevamento di soglia e/o presentano curve di amplificazione errate. Assegna un nome ai campioni.Vai alla configurazione di esempio e seleziona il nuovo SBS 96. Fare clic su mappatura e selezionare il layout del campione in base al layout della piastra del campione a 96 pozzetti. Copia e incolla il layout di esempio dal software per fogli di calcolo.Definire il layout incollato come nome di esempio. Utilizzare la stessa procedura per denominare i saggi. Immettere i nomi dei primer nella configurazione del rivelatore e definire il layout incollato come nome del rivelatore.Fare clic su Analisi, Visualizza e analizza. Seleziona il file, esporta e salva come risultati della mappa termica. Utilizzando la citometria a flusso, le popolazioni di ILC epatiche sono state ordinate in base a marcatori ILC ampiamente espressi e sono state definite tre popolazioni distinte.Un chip di espressione genica multiplex a singola cellula correttamente caricato dovrebbe apparire con linee rette e righe, con ogni camera di reazione riempita e nella stessa dimensione. Un chip caricato in modo errato avrà linee e file vuote di camere di reazione, nonché linee di piegatura. Questa figura di fluoresceina amidite di un chip caricato correttamente mostra differenze nella luminosità della camera di reazione che appaiono dopo alcuni cicli.Le camere di reazione con un segnale di amplificazione appaiono più luminose delle camere di reazione con segnali di amplificazione bassi o assenti. Dopo un corretto smistamento cellulare, pre-amplificazione e caricamento, la popolazione ILC è apparsa eterogenea per l'espressione genica nel fegato di topi adulti wild type. A sinistra c'è una mappa di calore senza modifiche.A destra è riportata la mappa termica modificata ottenuta dopo la definizione del nome del campione e del saggio. Utilizzando un software online, sono state identificate le firme di espressione genica specifiche delle cellule e le relazioni tra le popolazioni cellulari. Ogni riga rappresenta un gene e ogni riga rappresenta la stessa cellula e le tre popolazioni cellulari sono rappresentate in blu, rosso e verde.Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita in nove ore, se eseguita correttamente. Durante il tentativo di questa procedura, è importante tenere attentamente traccia dell'orientamento della piastra per la distribuzione delle celle e del primer. Dopo il suo sviluppo, questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori per esplorare firme molecolari rare e specifiche nelle popolazioni cellulari.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come valutare l'espressione genica multipla in molte singole cellule contemporaneamente, dopo un corretto smistamento cellulare, pre-amplificazione e caricamento.

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Qui descriviamo un metodo robusto per determinare l'identità e la purezza delle cellule immunitarie attraverso firme epigenetiche rilevate utilizzando la PCR quantitativa (qPCR). La demetilazione del DNA in un locus specifico funge da identificatore univoco per un particolare tipo di cellula e consente l'identificazione delle cellule T CD8, normative o Th17.

Determinazione dell'identità e della purezza delle cellule immunitarie utilizzando la PCR quantitativa basata sull'epigenetica

Questo protocollo spiega come raccogliere singoli neuroni, microglia e astrociti dal nucleo centrale dell'amigdala con alta precisione e specificità anatomica utilizzando la microdissezione di cattura laser. Inoltre, spieghiamo il nostro uso di RT-qPCR microfluidico per misurare un sottoinsieme del trascrittoma di queste cellule.

Combinazione di microdissezione laser di cattura e qPCR microfluidico per analizzare i profili trascrizionali di singole cellule: un approccio di biologia dei sistemi alla dipendenza da oppioidi

Qui abbiamo presentato un metodo di sequenziamento dell'mRNA a singola cellula multiplexed per profilare l'espressione genica nei tessuti embrionali del topo. Il metodo di sequenziamento dell'mRNA a singola cellula (scRNA-Seq) basato su droplet in combinazione con strategie di multiplexing può profilare singole cellule da più campioni contemporaneamente, riducendo significativamente i costi del reagente e riducendo al minimo gli effetti batch sperimentali.

Analisi del sequenziamento dell'mRNA a cella singola multiplexed delle cellule embrionali del topo

Marcatori epigenetici sono utilizzati per sottotipi di globuli bianchi (WBC) attraverso la quantificazione dei modelli di metilazione del DNA. Questo protocollo presenta un metodo di reazione a catena di polimerasi a goccia multiplex (mdPCR) utilizzando un dispositivo microfluidometro termoplastico (TPE) per la generazione di droplet che consente una quantificazione mirata precisa e multiplex specifica della metilazione dei conteggi differenziali WBC.

Metilazione specifica Multiplex Droplet PCR utilizzando Polymer Droplet Generator Device per la diagnostica ematologica

Scopri l'espressione genica unicellulare mediante RT-qPCR multiplex per caratterizzare l'eterogeneità delle popolazioni linfoidi rare. Questo metodo consente l'analisi simultanea di almeno 48 geni in singole cellule.

Unicellulare espressione genica Utilizzando Multiplex RT-qPCR per caratterizzare eterogeneità delle rare popolazioni linfoidi

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