Name: Un protocollo per caratterizzare i cambiamenti morfologici di Clostridium difficile In risposta al trattamento antibiotico (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-25T12:30:00.000+00:00
Duration: 12 min 58 s
Description: Scopri un metodo di imaging microbiologico per caratterizzare gli effetti morfologici degli antibiotici su Clostridium difficile. Questa tecnica combina microscopia elettronica a scansione con colture in vitro per analizzare l'azione farmacologica.

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Questi esperimenti sono stati supportati da sovvenzioni di ricerca da Merck and Co. e Summit, PLC.

1. Isolamento di C. difficile da diverse fonti ambientali o cliniche <ol><li> Isolati ambientali: Utilizzando un calibro di cotone pre-sterilizzato (leggermente bagnato con 0,85% NaCl), tamponare la superficie di qualsiasi area di interesse (pavimento, porta, maniglia, mensola, ecc. ). 8 Assicurati di indossare guanti sterili e posizionare il tampone in un tubo sterilizzato dopo il completamento. </li><li> Isolati clinici (sgabello): Piastra da 10 a 100 mg di campioni clinici di sgabello su cefoxitin-cicloserina-fruttosio agar (CCFA) utilizzando un ciclo di inoculazione e incubare in condizioni anaerobiche rigorose per 48-72 h. Conservare le colonie isolate di C. difficile in crisiali a -80 ° C per ulteriori analisi. 7 , 9 , 10 </li><li> Arricchire i campioni di tampone ambientale nel brodo di infusione del cuore del cervello (BHI) con il taurocholato di sodio allo 0,05% e collocare in una camera anaerobica a 37 ° CPer 5 giorni. Centrifugare 1 ml della coltura a 10.000 xg e risospendere il pellet in 100 μL di etanolo. </li><li> Piattare le cellule risospese (50 μL) sulle piastre di cicloserinecefossiin fruttosio agar (CCFA) e incubare in una camera anaerobica a 37 ° C per 40-48 h. Conservare le colonie isolate di C. difficile in crisiali a -80 ° C per ulteriori analisi. </li><li> Testare sospette colonie C. difficile utilizzando il reagente di agglutinazione del lattice o PCR. </li></ol> 2. Coltura delle procedure cinetiche di C. difficile e di uccisione <ol><li> Crescere ceppi purificati ambientali o clinici di C. difficile sulle piastre di agarico in una camera anaerobica a 37 ° C per 48 ore. </li><li> Prendere una colonia isolata con un anello di inoculazione, trasferirlo in 5 ml di media BHI in un tubo da 15 ml e crescere per 24 ore in una camera anaerobica a 37 ° C. </li><li> Diluire le pre-colture da 1: 100 a circa 10 6 unità di formazione della coloniaS (CFU) / ml in BHIS fresco pre-ridotto (BHI plus estratto di lievito da 5 g / L e 1% di L-cisteina) integrato con taurocolato sodico 0,1% e la concentrazione appropriata di antibiotico (T0). </li><li> Raccogliere un campione da 1 ml con una pipetta ad ogni punto temporale (T0, T6, T24, T48) e piastrellare / spargere una piccola aliquota (100 μL in diluizioni seriali) su una piastra di agar sangue. Lasciare che le cellule crescano sulla piastra agarica per 48 ore in una camera anaerobica a 37 ° C e contano il numero risultante di colonie per determinare CFU. </li></ol> 3. Preparazione di campioni per la scansione della microscopia elettronica <ol><li> Raccogliere 1 mL di cellule da ogni punto di tempo nei tubi di microcentrifuga e centrifugare a 10.000 xg per 10 minuti. Scartare il surnatante e lavare le cellule in PBS. </li><li> Centrifugare i campioni a 10.000 xg per 10 min e scartare il surnatante. Diluire le cellule in 1 ml di 4% di paraformaldeide e incubare per 1 ora a temperatura ambiente. </li><li> Ripetere nuovamente campioni per 10 minuti a 10,000 xg e scartare il supernatante. Lavare le cellule due volte con acqua distillata e ridilizzare in 100 μL di acqua distillata. Regolare il volume in base alla torbidità della soluzione. NOTA: fare una serie di diluizioni multiple è una buona idea. </li><li> Il coperchio dell&#39;etichetta copre e aggiunge 40 μL del campione. Incubare per 15 minuti in un cappuccio di flusso per evaporare il liquido e permettere alle cellule di aderire alla copertura. Se il liquido è ancora presente, utilizzare un soffiatore per rimuovere il liquido. </li><li> Posizionare le copertine contrassegnate con le celle in una macchina di sputtering della tavola e il nastro in giù. Salva l&#39;oro puro nella macchina di sputtering. Accendere la macchina e avviare sputtering a bassa pressione (50 mTorr). Le cellule di coat per 30 s a 80 mA, che si traduce in 20 nm di rivestimento in oro. </li><li> Trasferire le cellule rivestite al microscopio elettronico di scansione. </li></ol> 4. Imaging C. difficile Cells su un microscopio elettronico di scansione <ol><li> Sfiatare correttamente il microscopio elettronico di scansione (SEM) per prIl pulsante di sfioramento sul software del computer. </li><li> Utilizzando nastro in carbonio, fissare le copertine rivestite sul piano metallico. Una volta che il SEM viene sfiato, la porta dovrebbe aprire facilmente. Bloccare la fase metallica nella camera SEM avvitandola. </li><li> Fare clic sul pulsante PUMP sul software del computer. Il SEM sarà utile quando il sistema legge &quot;Vac OK&quot;. </li><li> Fare clic sul rivelatore SE sotto la linguetta dei rilevatori. Accendere il fascio facendo clic sul pulsante che visualizza la tensione. Avviare l&#39;imaging ad una tensione inferiore (5 kV) prima di aumentare la tensione (fino a 15 kV). Una volta che il fascio è acceso, apparirà un&#39;immagine. </li><li> Utilizzando la funzione di tracciamento, individuare un&#39;area sulle copertine rivestite per l&#39;immagine. Ingrandire la regione e trovare strutture a forma di bacchetta; Questi sono clostridium difficile . </li><li> Ingrandire e focalizzare l&#39;immagine per calibrare il sistema. Questo deve essere fatto a più distanze di lavoro: 15, 9 e 5 mm. Immagine a una distanza di lavoro di 5 mm. </li><li> Accendere l&#39;uLtra ad alta risoluzione e comincia a focalizzare e ottimizzare l&#39;astigmatismo. </li><li> Iniziare a concentrarsi ad alta ingrandimento. Utilizzare il fuoco grossolano e fine per questo. Regolare anche l&#39;astigmatismo per ottenere un&#39;immagine più chiara. <ol><li> Regolare l&#39;astigmatismo ad alta ingrandimento. A tal fine, regolare i cambi di astigmatismo (assomigliano alle finestre di messa a fuoco sottile / grossolana) e controllare l&#39;immagine per la chiarezza ingrandendo digitalmente sul software del computer. </li></ol></li><li> Se la funzione di scansione lenta per raccogliere un&#39;immagine di alta qualità. Salvare l&#39;immagine raccolta come file .TIFF, che verrà utilizzato per l&#39;analisi. Assicurarsi che la barra dati sia selezionata se le misurazioni saranno effettuate durante l&#39;analisi. </li><li> Raccogli le immagini ad angoli diversi (fino a 52 ° ruotando manualmente l&#39;angolo direttamente sul SEM. Le immagini angolate tendono a rivelare informazioni più approfondite. </li><li> Cambiare la tensione del fascio in base alle celle in fase di acquisizione. Tenere questo per la maggior parte tra 5 - 15 kV per tutti gli esperimenti. </li&gt; <li> Al termine dell&#39;immagine, spegnere il fascio e sollevare la distanza di lavoro a 20 mm. La camera può quindi essere scaricata e lo stadio può essere rimosso. Copiare tutte le immagini su un&#39;unità per ulteriori analisi. </li></ol> 5. Elaborazione e analisi delle immagini <ol><li> Scaricare e installare il software libero FIJI (http://fiji.sc) sul computer. </li><li> Aprire il file immagine in FIJI. </li><li> Utilizzando la funzione di linea, tracciare con precisione la barra di scala. </li><li> Fare clic sulla scheda Analizza nel programma FIJI e infine selezionare la funzione Seleziona scala. Apparirà una finestra che richiederà l&#39;impostazione della distanza nota basata sulla barra di scala. Modificare anche l&#39;unità di lunghezza e fare clic su OK. </li><li> Ora che il programma è calibrato per la distanza, utilizzare la funzione di linea per misurare la lunghezza della cella. Per ottenere la lunghezza, utilizzare la funzione di linea per tracciare la cella nella sua interezza. Seleziona nuovamente la scheda Analizza, quindi fai clic su Misura. La lunghezza dovrebbe appOrecchio nelle unità indicate precedentemente. </li></ol>

<ol><li>Lessa, F. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Burden+of+Clostridium+difficile+infection+in+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Burden of Clostridium difficile infection in the United States.</a> N Engl J Med. 372 (9), 825-834 (2015).</li>
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<li>Walters, B. A., Roberts, R., Stafford, R., Seneviratne, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relapse+of+antibiotic+associated+colitis%3A+endogenous+persistence+of+Clostridium+difficile+during+vancomycin+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Gut%22%5BJournal%5D)">Relapse of antibiotic associated colitis: endogenous persistence of Clostridium difficile during vancomycin therapy.</a> Gut. 24 (3), 206-212 (1983).</li>
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<li>McDonald, L. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+epidemic%2C+toxin+gene-variant+strain+of+Clostridium+difficile%5BTitle%5D)+AND+%22New+Eng+J+Med%22%5BJournal%5D)">An epidemic, toxin gene-variant strain of Clostridium difficile.</a> New Eng J Med. 353 (23), 2433-2441 (2005).</li>
</ol>

KWG ha ricevuto supporto per la ricerca in passato e in corso da Merck & Co. e Summit, PLC.

L&#39;obiettivo dello studio è stato quello di creare un metodo ad alto throughput per l&#39;isolamento di C. difficile e la prova di suscettibilità antibiotica utilizzando la microscopia elettronica a scansione (SEM) come mezzo per una caratterizzazione più approfondita dell&#39;azione farmacologica dell&#39;antibiotico. Utilizzando i protocolli descritti qui, abbiamo dimostrato che l&#39;imaging della risposta fenotipica della cellula al trattamento antibiotico può rivelare una visione dell&#39;azione farmaco...

Clostridium difficile è un batterio gram-positivo, che forma spore, causando circa 500.000 infezioni annuali negli Stati Uniti e viene considerato un livello di rischio pericoloso da parte dei centri per la prevenzione e la prevenzione delle malattie (CDC), il livello più elevato di rischio. La decade passata ha visto notevoli sviluppi di farmaci in antimicrobici con attività contro C. difficile . 2 , 3 Studi in vitro sono una componente necessaria del processo di sviluppo del farmaco. 4 Tradizionalmente, in vitro suscettibilità e studi sul tempo sono stati utilizzati per convalidare futuri studi sugli animali e altri in vivo . Mentre questi metodi servono un ruolo importante per valutare l&#39;azione di uccisione, non catturano la risposta fenotipica delle cellule al trattamento farmacologico. Incorporando la scansione microscopia elettronica (SEM) con standardGli studi cinetici di uccisione, è possibile una caratterizzazione più approfondita degli effetti diretti antibiotici. 5 , 6 , 7 Ecco qui un metodo in cui SEM viene utilizzato come un mezzo per profilare l&#39;efficacia del trattamento antibiotico.

<table><tbody><tr><td>garza di cotone&nbsp;</td><td>Caring</td><td>PRM21408C</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Macron</td><td>7532</td><td></td></tr><tr><td>provette da 50 mL</td><td>Falcon</td><td>352098</td><td></td></tr><tr><td>Brain Heart Infusion (BHI)&nbsp;</td><td>Criterio:</td><td>C5141</td><td></td></tr><tr><td>L-cisteina</td>, <td>Alfa Aesar</td><td>A10389</td><td></td></tr>, <tr><td>estratto di lievito</td>, <td>Criterio:</td><td>C741</td><td></td></tr>, <tr><td>taurocolato di sodio,</td><td>Alfa Aesar</td><td>A18346</td><td></td></tr>, <tr><td>camera anaerobica, camera anaerobica</td><td>vinilica</td><td>Coy</td><td></td></tr><tr><td>, cicloserinecefoxitin, fruttosio, agar (CCFA), piastre</td><td>Anaerobe Systems</td><td>AS-213</td><td></td></tr><tr><td>piastre per agar sanguigno</td><td>Hardy diagnostics</td><td>A-10</td><td></td></tr><tr><td>reagente per agglutinazione al lattice</td><td>Oxoid</td><td>DR1107A</td><td>C. diff kit per test</td></tr> per <tr><td>microcentrifuga</td><td>Eppendorf</td><td>222363204</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Gibco</td><td>10010-031</td><td></td></tr><tr><td>4% paraformaldeide</td><td>Fisher Scientific</td><td>50-259-98</td><td></td></tr><tr><td>vetrini per microscopio</td><td>J. Melvin freed marca</td><td>7525M</td><td>75 x 25mm</td></tr><tr><td>cappa di flusso</td><td>Labconco</td><td>Classe II tipo A2&nbsp;</td><td>armadio di biosicurezza</td></tr><tr><td>macchina sputtering da tavolo</td><td>Denton Vacuum</td><td>Desk II</td><td></td></tr><tr><td>nastro</td><td>Nucleo in plastica</td><td>05072-AB</td><td>SPI Nastro biadesivo in carbonio</td></tr><tr><td>oro</td><td>Denton Vacuum</td><td>TAR001-0158</td><td>2.375 " Diametro x .002" Microscopio elettronico a scansione con lamina d'oro spessa</td></tr><tr><td></td><td>FEI</td><td>XL-30</td><td></td></tr></tbody></table>

un protocollo per caratterizzare i cambiamenti morfologici di<em&gt; clostridium difficile</em&gt; in risposta al trattamento antibiotico

A Protocol to Characterize the Morphological Changes of Clostridium difficile in Response to Antibiotic Treatment

La valutazione dell&#39;azione antibiotica con il nuovo sviluppo di farmaci verso batteri anaerobici è difficile e tecnicamente esigente. Per ottenere una visione di possibili MOA, i cambiamenti morfologici associati all&#39;esposizione agli antibiotici possono essere visualizzati utilizzando la microscopia elettronica a scansione (SEM). L&#39;integrazione dell&#39;immagine SEM con le curve di uccisione tradizionali può migliorare la nostra comprensione nell&#39;azione dei farmaci e promuovere il processo di sviluppo del farmaco. Per testare questa premessa, le curve di uccisione e gli studi SEM sono stati condotti utilizzando farmaci con noti ma diversi MOA (vancomicina e metronidazolo). Le cellule C. difficile (R20291) sono state coltivate con o senza la presenza di antibiotico fino a 48 ore. Durante l&#39;intervallo di 48 ore, le cellule sono state raccolte in più punti temporali per determinare l&#39;efficacia antibiotica e per l&#39;imaging sul SEM. In linea con le precedenti relazioni, la vankomicina e il metronidazolo avevano un&#39;attività battericida significativa dopo 24 h di trattamento misurata con unità di colonia-formatore (CFU)ting. Utilizzando l&#39;imaging SEM abbiamo determinato che metronidazolo avesse effetti significativi sulla lunghezza delle cellule (&gt; 50% di riduzione della lunghezza cellulare per ogni antibiotico, P &lt;0,05) rispetto ai controlli e alla vankomicina. Mentre la risposta fenotipica al trattamento farmacologico non è stata documentata in precedenza in questo modo, essi sono coerenti con la MOA del farmaco che dimostra la versatilità e l&#39;affidabilità dell&#39;immagine e delle misurazioni e l&#39;applicazione di questa tecnica per altri composti sperimentali.

Clostridium difficile è un batterio che forma spore e quindi è essenziale determinare le differenze morfologiche tra cellule vegetative e spore prima di qualsiasi analisi funzionale. La Figura 1 mostra immagini rappresentative di cellule vegetative che sono state catturate durante la fase esponenziale della curva di crescita e delle cellule di spore. Come descritto, le cellule vegetative sono strutture lunghe e lisce, mentre le spore sono piccole strutture ovali...

L'efficacia degli antibiotici è più comunemente determinata conducendo studi cinetici di uccisione e misurando le unità formanti colonie (CFU). Integrando la microscopia elettronica a scansione (SEM) con questi metodi standard, possiamo distinguere gli effetti farmacologici del trattamento tra i diversi antibiotici.

Un protocollo per caratterizzare i cambiamenti morfologici di<em&gt; Clostridium difficile</em&gt; In risposta al trattamento antibiotico

Assessment of antibiotic action with new drug development directed towards anaerobic bacteria is difficult and technically demanding. To gain insight into ...

L'obiettivo generale di questo metodo di imaging microbiologico è fornire un mezzo più descrittivo per distinguere gli effetti fenotipici del trattamento farmacologico. Pertanto, questo metodo può essere davvero utile nel campo delle malattie infettive, analizzando in particolare gli effetti morfologici di determinati antibiotici e il modo in cui uccidono C. Difficile.Il principale vantaggio di questa tecnica è che combina l'imaging ad alta risoluzione con tecniche di coltura cellulare in vitro per fornire una visione dettagliata dell'azione farmacologica di uccisione. Le implicazioni di questa tecnica potrebbero estendersi alla terapia dell'infezione da Clostridium difficile, o CDI in breve. Il motivo è che questa tecnica potrebbe fornire un mezzo per identificare in che modo un antibiotico possa risultare benefico nel trattamento della CDI.Sebbene questo metodo possa fornire informazioni sull'azione farmacologica, può essere applicato anche ad altri sistemi, come modelli di colture miste o studi su animali in vivo. In generale, le persone incontrano difficoltà con questo nuovo metodo perché la coltivazione di C.difficile e il funzionamento di un microscopio elettronico a scansione sono operazioni complesse. Abbiamo avuto per la prima volta l'idea di questo metodo quando stavamo cercando di distinguere tra i diversi meccanismi d'azione degli antibiotici.Vorrei presentarle il team di ricerca che incontrerà oggi. Jahangir Alam è un professore e microbiologo. Coordinerà tutte le attività di laboratorio che vedrà oggi.Tasnuva Rashid è una studentessa laureata del laboratorio. Si occupa di molta della microbiologia quotidiana. Eugenie Bassere è una ricercatrice post dottorato.Lei ha davvero insegnato a Tasnuva molte delle competenze e assiste anche in laboratorio. Brad Endres è un altro ricercatore post dottorato nel laboratorio. Lui svolgerà molta microscopia con l'aiuto di Long Chang.Per preparare isolati ambientali indossando guanti sterili, utilizzare una garza di cotone pre-sterilizzata per tamponare la superficie di qualsiasi area di interesse, come un pavimento, una porta, una maniglia o uno scaffale. Successivamente, inserire il tampone in un tubo sterilizzato. Cambiare i guanti tra un campione e l'altro.Per preparare gli isolati clinici, utilizzare un’ansa di inoculo per piastrare da 10 a 100 milligrammi di campioni fecali clinici su agar cefoxitin-cycloserina-fruttosio, o CCFA, e incubare i campioni in condizioni strettamente anaerobiche per 48-72 ore. Conservare le colonie isolate del ceppo C. Difficile in provette criogeniche a -80 gradi Celsius per ulteriori analisi. Arricchire i campioni da tamponi ambientali in brodo brain heart infusion, o BHI, con taurocolato di sodio allo 0,5% e collocare i campioni in una camera anaerobica a 37 gradi Celsius per cinque giorni.Centrifugare un millilitro della coltura a 10.000 ×g e utilizzare 100 microlitri di etanolo per risospendere il pellet. Piastrare 50 microlitri delle cellule risospese su piastre CCFA e incubare le colture in una camera anaerobica a 37 gradi Celsius per 40-48 ore. Conservare le colonie isolate di C. difficile in provette criogeniche a -80 gradi Celsius per ulteriori analisi.Utilizzare il reagente di agglutinazione al lattice o la PCR per testare le colonie sospette di C.difficile. Far crescere ceppi purificati di C.difficile di origine ambientale o clinica su piastre di agar sangue in una camera anaerobica a 37 gradi Celsius per 48 ore. Utilizzare un’ansa di inoculo per prelevare una singola colonia e trasferirla in cinque millilitri di terreno BHI in un tubo da 15 millilitri.Quindi coltivare la coltura in una camera anaerobica a 37 gradi Celsius per 24 ore. Utilizzare BHIS fresco, pre-ridotto, integrato con taurocolato di sodio e la concentrazione appropriata di antibiotico per diluire le precolture di 1 a 100 fino a circa 10 alla sesta UFC per millilitro. Con una pipetta, raccogliere un campione di un millilitro ad ogni punto temporale e piastrare o distribuire un piccolo aliquota su una piastra di agar sangue.Incubare la piastra per 48 ore in una camera anaerobica a 37 gradi Celsius e contare il numero risultante di colonie per determinare le UFC. Raccogliere un millilitro di cellule da ciascun punto temporale in provette per microcentrifuga e centrifugare a 10.000 ×g per 10 minuti. Eliminare il soprannatante e lavare le cellule con PBS.Centrifugare nuovamente i campioni e rimuovere il soprannatante. Quindi utilizzare un millilitro di paraformaldeide al 4% per ri-diluire le cellule e incubare i tubi a temperatura ambiente per un'ora. Dopo aver centrifugato nuovamente i campioni e rimosso il soprannatante, lavare le cellule due volte con acqua distillata prima di ri-diluirle in 100 microlitri di acqua distillata.Regolare il volume in base alla torbidità della soluzione. Dopo aver etichettato i coprioggetti, aggiungere 40 microlitri del campione su di essi. Sotto una cappa a flusso laminare, incubare i coprioggetti per 15 minuti per far evaporare il liquido e permettere alle cellule di aderire al vetro.Se è ancora presente del liquido, utilizzare un soffiatore per rimuoverlo. Posizionare i vetrini in una macchina da sputtering da banco e fissarli con del nastro. Inserire dell'oro puro nella macchina da sputtering.Quindi accendere l'apparecchio e iniziare la sputterizzazione a bassa pressione. Rivestire le cellule per 30 secondi a 80 microamperes, il che corrisponde a un rivestimento d'oro di 20 nanometri. Per iniziare l'acquisizione delle immagini, prima effettuare correttamente la messa in atmosfera del microscopio elettronico a scansione (SEM) nel software del computer premendo il pulsante Vent.Dopo aver ricoperto le cellule, trasferirle nel microscopio elettronico a scansione, o SEM. Utilizzando il nastro di carbonio, fissare le coprioggetti ricoperte sulla piastra metallica. Una volta che l'SEM è stato ventilato, la porta dovrebbe aprirsi facilmente.Bloccare il piatto metallico nella camera del SEM avvitandolo. Successivamente, fare clic sul pulsante Pompa nel software. Quando il sistema indicherà che è tutto a posto, il SEM sarà pronto per l'uso.Nella scheda Detector, fare clic sul rilevatore SE. Accendere il fascio cliccando sul pulsante che mostra la tensione. Iniziare l'acquisizione a una tensione più bassa prima di aumentarla.Apparirà un'immagine dopo l'accensione del fascio. Utilizzando la funzione di tracciamento, individuare un'area sui coprioggetti rivestiti da acquisire. Ingrandire la regione e cercare strutture a forma di bastoncello, che rappresentano Clostridium difficile.Per calibrare il sistema, eseguire uno zoom, mettere a fuoco grossolanamente l'immagine e collegare Z alla distanza libera di lavoro. Questa operazione deve essere eseguita a diverse distanze di lavoro, ad esempio a 15, 9 e 5 millimetri. Successivamente passare alla modalità di imaging ad altissima risoluzione.Utilizzare i comandi di messa a fuoco grossolana e fine per iniziare a mettere a fuoco a ingrandimento elevato. Regolare i comandi di astigmatismo per ottenere un'immagine più nitida e verificare la chiarezza dell'immagine utilizzando il software del computer per ingrandire digitalmente l'immagine. Utilizzare la scansione lenta per acquisire un'immagine di alta qualità.Salvare l'immagine acquisita come file tiff per un'analisi successiva, assicurandosi di selezionare la barra dati se si effettueranno misurazioni durante l'analisi. Acquisire immagini da angolazioni diverse per rivelare ulteriori informazioni sulla profondità, inclinando il piatto del microscopio elettronico a scansione (SEM). Ottimizzare messa a fuoco e astigmatismo prima di acquisire un'immagine a scansione lenta.Al termine dell'acquisizione delle immagini, spegnere il fascio e aumentare la distanza di lavoro a 20 millimetri. Quindi ventilare la camera ed estrarre il piatto. Elaborare le immagini, aprendo i file delle immagini in Fiji.Utilizzando la funzione linea, tracciare con precisione la barra di scala. Fare clic sulla scheda Analyze, quindi scegliere la funzione Select Scale. Apparirà una finestra che richiederà l'impostazione della distanza nota in base alla barra di scala.Modificare anche l'unità di lunghezza e fare clic su OK. Infine, per misurare la lunghezza della cellula, utilizzare la funzione linea per tracciare l'intera cellula. Selezionare nuovamente la scheda Analizza, quindi fare clic su misura.La lunghezza dovrebbe essere espressa nelle unità indicate in precedenza. Queste immagini mostrano cellule vegetative di C.difficile catturate durante la fase esponenziale della curva di crescita, così come cellule sporigene. Le cellule vegetative sono strutture allungate, lisce, di forma bastoncellare; al contrario, le spore sono piccole strutture ovali con una superficie esterna ruvida.Come mostrato in questa figura, le cellule di controllo crescono e raggiungono una fase di plateau; al contrario, le cellule trattate con gli antibiotici vancomicina e metronidazolo mostrano una diminuzione delle UFC totali fino al limite di rilevamento, indicando un effetto battericida. Come dimostrato, vancomicina e metronidazolo risultano efficaci nell'uccidere C.difficile a concentrazioni superiori alla MIC. Per dimostrare l'utilità dell'uso della SEM nell'immaginare C.difficile, le cellule sono state analizzate mediante microscopia prima e dopo il trattamento farmacologico al fine di determinare come fosse cambiata la loro morfologia.Nel caso della vancomicina, alcune pareti cellulari sono state compromesse e alcune cellule trattate con metronidazolo erano di dimensioni ridotte. Per verificare se la dimensione cellulare era influenzata, la lunghezza delle cellule è stata analizzata utilizzando il programma Fiji. Come mostrato in questa immagine, la dimensione delle cellule vegetative può variare leggermente nel caso di controllo; ma la maggior parte ha una lunghezza di circa 6 micrometri.Tuttavia, come mostrato in questo grafico, la lunghezza delle cellule è stata influenzata nelle cellule trattate con metronidazolo, ma non in quelle trattate con vancomicina. Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere eseguita in meno di due giorni. Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordare che il campione deve essere fissato e completamente asciutto prima della metallizzazione e dell'acquisizione delle immagini.Seguendo questa procedura, possiamo eseguire ulteriori metodi per rispondere a domande aggiuntive, ad esempio come i batteri rispondono ai trattamenti antibiotici; questo può fornirci maggiori informazioni per comprendere i meccanismi d'azione degli antibiotici. Questa tecnica ha un potenziale enorme e potrebbe aprire la strada ai ricercatori nel campo della microbiologia per esplorare ulteriormente la fisiologia e la farmacologia di Clostridium difficile. Spero che abbiate apprezzato la visione di questo video oggi.Spero che da questo abbiate appreso come coltivare e caratterizzare le cellule di C. difficile, come analizzare la cinetica di uccisione degli antibiotici contro C. difficile e quindi come valutare i cambiamenti morfologici associati a tali schemi di uccisione mediante microscopia avanzata. Mentre si lavora con Clostridium difficile, è necessario adottare precauzioni aggiuntive e utilizzare tutte le protezioni

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Immunologia e Infezioni

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Quantificazione di Clostridium difficile in campioni fecali da un modello di topo infetto

Questo video mostra un test per misurare l'accumulo di una sonda antibiotica fluorescente nelle cellule batteriche. L'esposizione a un inibitore della pompa di efflusso interrompe il gradiente protonico transmembrana nelle cellule batteriche, su cui viene aggiunto un antibiotico coniugato con fluoroforo. L'inibizione delle pompe di efflusso dovuta all'interruzione del gradiente protonico provoca l'accumulo dell'antibiotico all'interno dei batteri. Le cellule batteriche vengono lisate e...

Un test per misurare l'accumulo di una sonda antibiotica fluorescente nelle cellule batteriche

Clostridium difficile è un batterio patogeno che è un rigoroso anaerobio e provoca diarrea associata agli antibiotici (AAD). Qui, metodi per isolare, coltivare e mantenere C. cellule vegetative difficile e spore vengono descritti. Queste tecniche richiedono una camera anaerobico, che richiede una manutenzione regolare per assicurare adeguate condizioni di ottimale C. la coltivazione difficile.

Coltura e manutenzione<em&gt; Clostridium difficile</em&gt; In un ambiente anaerobico

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