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DOI: 10.3791/66550-v
Miguel M. Lopes*1,2,3, Sara M. Lopes*1,2,3, Rafael Baganha1,2,4, Carina Henriques1,2,5, Ana C. Silva1,2,3, Diana D. Lobo1,2,3, Luísa Cortes1,2,3,6, Luís Pereira de Almeida*1,2,4,5, Rui Jorge Nobre*1,2,3,4
1CNC-UC - Center for Neuroscience and Cell Biology,University of Coimbra, 2CIBB - Center for Innovative Biomedicine and Biotechnology,University of Coimbra, 3IIIUC - Institute for Interdisciplinary Research,University of Coimbra, 4ViraVector - Viral Vectors for Gene Transfer Core Facility,University of Coimbra, 5FFUC - Faculty of Pharmacy,University of Coimbra, 6MICC-CNC - Microscopy Imaging Center of Coimbra - CNC,University of Coimbra
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Questo manoscritto descrive un protocollo dettagliato per la generazione e la purificazione di vettori virali adeno-associati utilizzando un metodo cromatografico di affinità ottimizzato a base di eparina. Presenta un approccio semplice, scalabile ed economico, eliminando la necessità di ultracentrifugazione. I vettori risultanti mostrano un'elevata purezza e attività biologica, dimostrando il loro valore negli studi preclinici.
In questo lavoro, intendiamo sviluppare un protocollo migliorato per la produzione, la purificazione e la caratterizzazione di vettori virali adeno-associati a mosaico che potrebbero dimostrare il loro valore negli studi preclinici. Nonostante gli sforzi per stabilire linee cellulari produttrici stabili, la trasfezione transitoria nelle cellule di mammifero è ancora il flusso di lavoro predominante per la produzione di AAV. Quindi gli AAV vengono purificati mediante centrifugazione in gradiente ad altissima velocità o mediante tecniche cromatografiche che si basano sulle proprietà biochimiche delle particelle virali.
I metodi comunemente usati per purificare gli AAV utilizzano il cloruro di cesio o l'ultracentrifugazione a gradiente di densità di iodixanolo. Nonostante i loro vantaggi, hanno alcune limitazioni. Richiedono molto tempo, hanno una scalabilità limitata e spesso danno risultati ad alcuni vettori con bassa purezza.
Ora, per superare questi vincoli, diversi ricercatori hanno rivolto la loro attenzione alle tecniche cromatografiche. Descriviamo un protocollo passo-passo per la generazione di rAAV a mosaico basato sulla capacità di legare l'eparina di AAV2. Questo metodo rende gli rAAV altamente puri e biologicamente attivi pronti per l'uso in sei giorni, presentandosi come una strategia semi-automatizzata, scalabile ed economica per generare rAAV per studi preclinici.
Avendo dimostrato l'applicabilità di questo metodo per la generazione di rAAV a mosaico, il sistema di produzione può ora essere messo a punto per ottenere una migliore scalabilità ed economicità stabilendo una linea cellulare di produzione. Inoltre, miriamo a rimuovere le particelle vuote includendo una seconda fase di purificazione della lucidatura.
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