Name: の細胞内相互作用の可視化と定量化髄膜炎菌と人間 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-10-24T17:30:00.000+00:00
Duration: 12 min 58 s
Description: 学ぶ髄膜炎菌とα-アクチニンの共局在解析法。共焦点顕微鏡を用いてヒト脳微小血管内皮細胞における細菌侵入メカニズムを可視化・定量化し、細菌病原性の理解に貢献します。

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研究はWellcome Trustと髄英国で賄われた。 HBMECの細胞株は、博士KS金によって提供されていました。共焦点イメージングと電子顕微鏡は、ウォルフソンのバイオイメージング施設、ブリストル大学で実施された。我々はまた彼らの支援やアドバイスのために氏アランラード、博士マークジェプソン（ブリストル大学）、そしてアランティリー（パーキンエルマー）を感謝したいと思います。

1。免疫蛍光プロトコル種まき、感染＆免疫染色次の手順では、適切な安全レベルの組織培養と微生物学的研究施設が必要です。 1日目感染の標的細胞のA.の準備<ol><li> 12ウェルプレート（3.8 cm 2の成長分野/ウェル）に配置されたカバーガラス（直径16mm）の50％コンフルエントのSeed HBMECs（〜1.5 × 10 4細胞/ cm 2）。 増殖培地：15％熱不活化（56℃、30分）FBS、2mMグルタミン、1mMピルビン酸ナトリウム、100 U / mLのペニシリン/ストレプトマイシン、1％（v / v）のMEM非必須アミノ酸を添加したRPMI 1640酸溶液を、1％MEMビタミンソリューション。 </li><li> 37℃一晩培養（O / N）℃、5％CO 2インキュベーター内でC、。 </li></ol> B.細菌培養<ol><li>興味のひずみを育てる37、10％加熱ウマ血液を補充、必要な培地の例：ブレインハートインフュージョン（BHI）寒天プレート上でO / N（16-18 H）° C、5％CO 2雰囲気4インチ </li></ol> 2日目細菌（ 髄膜炎菌 ）懸濁液のA.の準備<ol><li> 10μLの文化のループを使用して、2mLのPBSB（カルシウムとマグネシウムを含むPBS）で一晩細菌培養の懸濁液を作る。 </li><li>大規模な細菌の凝集体は、室温（RT）で5分間放置するサスペンションを残すことによって解決することができます。 </li><li>ペレットを乱すことなく、滅菌チューブにサスペンションの上部を1 mL（株接種を）転送する。 </li><li>株式の接種で細菌数を推定するために、0.1M NaOHに1％SDSの1mLのボリュームを含むチューブにアリコート（20〜50μL）を追加し、可溶化するために静かに混ぜる。 </li><li> 260nmの（A260）の吸光度を決定することにより、ソリューションの核酸の含有量を測定します。私たちの手で、1 × 10 8コロニー形成単位に対応する/ mlの（CFU / mL）のA260。これは、PBSBの株式の接種の希釈系列を準備する寒天プレート上にプレーティングし、O / Nインキュベーション後にコロニーを計数することによって確認することができます。 </li><li>感染の媒体中で株式の接種のアリコートを希釈する[（2％を添加したM199 decomplemented（56℃、30分）正常ヒト血清（NHS）]標的細胞の感染に必要な細菌密度を得るために。 <ol><li>当研究室では、標的細胞当たり200〜300細菌の感染率は、日常的に使用されます。 </li></ol></li></ol> B.細胞培養の感染<ol><li>抗生物質の痕跡を削除するには、ハンクの培地で培養した標的細胞で3回カバースリップを洗ってください。 </li><li> 5％CO 2で、37℃3時間〜8時間のため、新たに調製した細菌懸濁液（上記）° Cで細胞を感染させる。 </li><li>感染期間の終了時に、PBSで細胞を3回洗浄し、4℃、RTまたはO / Nで30〜45分間、2％パラホルムアルデヒド500μL（PFA）で修正℃の<ol><li>上記の濃度と同時にパラホルムアルデヒド固定は、細菌や細胞形態の保存に適していることが判明した。 </li></ol></li><li>パラホルムアルデヒドを洗浄した後、0.1％で10分間PBSで希釈したトリトンX - 100をインキュベートすることにより、パラホルムアルデヒド固定した細胞をpermeabilise。 </li><li>サンプルをPBSで3回洗浄する。 </li><li>免疫染色に進むか、代わりに、4℃で1％BSA / PBST O / Nの500μLのサンプルを残す℃に</li></ol> 3日目免疫染色細胞内細菌の染色とα-アクチニンは、以下のように適切な一次および二次抗体の使用により、順次または同時に実行することができます。すべての手続きは、12ウェルプレートで行うことができる。 <ol><li> RTで30〜60分間、3％BSA / PBST（PBS、0.05％トリトンX - 100を含む）の500μLとpermeabilised細胞を含むカバースリップをブロック</li><li> PBSで洗浄後、12ウェルプレートに新しいドライウェルに各カバースリップを転送する。 </li><li>細菌とα-アクチニンに対する一次抗体を追加し、カバースリップの表面を覆うように慎重に追加した場合にカバースリップ当たりの抗体の80〜100μLで十分です。室温で1時間インキュベートする。 <ol><li>我々は、同時にα-アクチニン（アブカム）に対する髄膜炎菌 （実験室で育てられた）およびマウスモノクローナル抗体（mAb）に対するウサギポリクローナル抗血清を使用。いくつかの実験で、抗α-アクチニンの代わりに、アクチンやビメンチンに対するモノクローナル抗体（Sigma社）を使用した。 </li></ol></li><li>インキュベーションの終わりに、ウェルにPBS 200μLを追加し、500μLのPBSを含む新しいウェルのカバースリップと場所を持ち上げます。 </li><li> 5分後、ピペッティングによりPBSを除去し、新鮮なPBSを加える。二回繰り返します。にカバースリップを転送するよく新しい乾いた。 </li><li>暗闇の中で1時間、室温でインキュベートする、1％BSA / PBSTで希釈した異なる蛍光色素に結合した適切な二次抗体を追加。 <ol><li>細菌検出のために、我々はTRITCに結合した抗ウサギIgを使用し、α-アクチニンと他の細胞骨格タンパク質の検出のために、我々はに結合抗マウスIgを使用するのどちらかFITC -（シグマ）又はAlexa Fluor 488 - （Invitrogen社）。 </li></ol></li><li>インキュベーションの終わりには、手順4と5のように洗ってください。 </li><li>暗所で室温で5分間0.6μgの/ PBS中DAPI（DNA染色）で染色されるカウンタ。 </li><li> PBSでリンス。 </li><li>マウンティング培地のドロップとスライド（E、G. MowiolまたはVectashield）上にマウントカバースリップ（細胞が下向きに） </li><li> 4℃暗所で保管℃に</li><li>サンプルは、顕微鏡下で観察するための準備が整いました。 </li></ol> 2。共焦点レーザー走査顕微鏡（CLSM） 観察し、細胞内細菌や細胞骨格要素の画像をキャプチャするために、我々は、ライカDM I6000倒立落射蛍光顕微鏡に取り付けられたライカSP5 - AOBS共焦点レーザー走査型顕微鏡を用いてimmunolabelledサンプルやキャプチャした画像を使用。すべての画像は、ライカのソフトウェアとの63x NA 1.4油浸対物レンズとプロセスを用いて収集した。 CLSMの手順： <ol><li> CLSMの手順を開始するには、客観的に液浸オイルのドロップを追加し、顕微鏡のステージ上の標本スライドを、カバースリップ面を下に、置きます。 </li><li>ビジュアルモードに顕微鏡をセットし、顕微鏡の接眼を使って関心の領域を見つける。 </li><li>ライカのソフトウェアを使用して、XYZの取得モードを選択します。 </li><li> 512 × 512形式（フレームサイズ）を選択します。 colocalisation研究のための、より高い分解能、より正確なイメージを、念頭に置いて顕微鏡の解像限界を保つ。その後、スキャン速度を増加させる双方向Xのモードを、選択して、光退色を減らすのに役立ちます。 </li><li>シーケンシャルスキャン設定を設定します。 "SEQ"機能をクリックし、スキャンモードのいずれかを選択してください。私たちは、モード"行の間に"使用してください。 </li><li> DAPI（青）、TRITC用のAlexa Fluor ® 488（緑色）と561 nmの（赤）のための488 nmのための405 nmの場合：[レーザーは、二次抗体に結合した蛍光色素に応じてビーム。光電子増倍管（PMT）はそれぞれ1,2、および3は、活性化する。正しい発光波長を検出するPMT設定を調整します。 </li><li> Z -スタックまたは一連の上部（"開始"）とボトム（"最後の"）を設定します。次に、必要な"Z -ステップサイズ"を設定します。 <ol><li> 髄膜炎菌は、双球菌（図1G）であり、各球菌が0.5μmのおおよその直径を有しているため、0.20μmのZ -ステップサイズは少なくとも二回各球菌をスキャンの確率を高めるために選ばれました。 0.2μmの - それは、0.1の最適な解決のためのステップサイズの範囲内である。 </li></ol></li><li>信号対雑音比を向上させるために3行の平均を選択することにより、最終的なスキャンパラメータを設定します。 </li><li> "スタート"をクリックすることで、ダブルまたはトリプル染色像は異なる発色団間のクロストークを除去するために、異なる波長で順次走査することによって得られる。 </li><li> two蛍光色素のcolocalisationの指標については、単一のイメージに選択されたチャネルをマージする"オーバーレイ"機能を選択し、たとえば、アレクサ488（緑）とTRITC（赤）蛍光色素の両方がcolocalise時、黄色の色はオーバーレイ画像に表示されます。 。 </li><li> Z -スタックまたは可能colocalisationを可視化するために必要な2次元画像の構築のための"最大値投影"機能を使用してシリーズをコンパイルします。 colocalisationのより詳細な分析は、それぞれの光学部の解析によって得ることができます。 </li><li> Z -スタックまたはシリーズを取得した後、様々な要素の細胞内局在（図1E）の可視化のための直交のイメージを取得するには、データを処理する。 </li></ol> 3。 Colocalisationの定量化共焦点走査型顕微鏡の画像の統計的な分析は、Volocityソフトウェア（即興、パーキンエルマー）で実行されます。このソフトウェアは、マンダースら （1993）5で説明したようにcolocalisationの分析用に特別に設計されたツールを提供しています。デジタル蛍光イメージングのコンテキストでColocalisationは、同じボクセル（ピクセルボリューム）各チャンネル内の位置での信号の検出として記述することができます。つのチャネルは、同じサンプルエリア（Volocityのユーザーガイド）から採取した二つの異なる蛍光色素の画像で構成されています。統計解析は以下に説明する定量Colocalisation分析を使用してVolocityソフトウェア（即興、パーキンエルマー）で実行されます。 定量的なColocalisation分析<ol><li> Volocityソフトウェアを使用して、CLSM画像とライブラリを作成します。 </li><li>上部のバーにある画像から"拡張フォーカス"を選択します。このツールは、分析する2D画像でのz -スタックをコンパイルします。。 </li><li> "局在"ツールを選択します。分析される2つのチャネルは、同じ色深度を持つ必要があります。 </li><li>それが定量化される予定であることがエリアを選択してください。どんなバックグラウンドを除去するしきい値を設定します。 </li><li> "共局在を生成する"を選択してcolocalisationの出力を作成します。 Colocalisation統計は、以前に選択された関心領域に対して生成されます。 </li><li>マンダース"係数R（係数をオーバーラップ）と私（colocalisation係数）を選択します。 <ol><li>マンダース"の係数は、それらが全体のピクセルの輝度に対して正規化されているとして、染色の強さに敏感ではなく、したがって、それらは、1つの抗原の染色は他よりも強いときに使用することができる。 </li><li>係数をオーバーラップRは、マンダース5,6によるとcolocalisationの真の程度を表し、ピクセルの合計数と比較してcolocalise画素数、すなわち。 </li><li>一方、colocalisation係数は、私の、量の少ない部分（この場合の細菌で、赤）へ、より豊かな部分（この場合はα-アクチニン、緑）の蛍光の寄与を説明し、赤のピクセルの数、すなわちそれは赤のピクセルの合計数と比較して緑のピクセルと重なる。 </li><li>マンダース"の係数は1が高いcolocalisation、0がなしていると、1と0の間の範囲、それらは簡単に解釈するためのパーセンテージとして表すことができます。 </li></ol></li><li>データのプレゼンテーションのためのExcel文書への輸出統計値​​。 </li></ol> 4。代表的な結果 OPC発現髄膜炎菌とα-アクチニンの細胞内局在としてα-アクチニンと（図示せず）3時間の感染実験ではそれほど頻繁であると思われるナノメートルの指示colocalisation上記の3と8時間でのNMを感染させたヒト脳微小血管内皮細胞の共焦点イメージング8時間感染させた培養液と比較して（図1 AF）。 OPC発現髄膜炎菌によるα-アクチニンの実証colocalisationは&gt; 5の反復実験で毎回観察された。上記のようないくつかの共焦点画像を用いたcolocalisationの統計解析を行った。全体的に、HBMECにOPC発現髄膜炎を、緑（α-アクチニン）と赤（ナノメートル）のピクセルの&gt; 25％のオーバーラップが（図2B、係数Rをオーバーラップ）を得たに感染。ビメンチンは稀だと内部化された細菌とアクチンまたはビメンチンのどちらかのラベルが実行されたα-アクチニン、実験とは対照的に、時折colocalisationは、アクチンとが、その観察された（Figure. 2B）。 データも考慮に入れ、各部分の相対量をとる係数マイを、使用して分析した。私はより多くの豊富な信号（この場合は緑、α-アクチニンの）量の少ない信号（この場合は赤、細菌の）が発生するたびに発生頻度の尺度です。この措置は、内部化髄膜炎菌（図2AおよびC）の近傍におけるα-アクチニンの発生の顕著なレベルを示しています。 <img src="/files/ftp_upload/2045/2045fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。 Nの細胞内相互作用を評価するために共焦点レーザー走査顕微鏡α-アクチニンと髄膜炎菌 。AH。カバースリップ上に成長したコンフルエント内皮単層OPC発現（AF）Nで感染させた髄膜炎菌 。 8時間後、非付着細菌は、細胞はパラホルムアルデヒドで固定し、0.1％トリトンX - 100でpermeabilised、オフ洗浄した。上述のように続いて、細菌とα-アクチニンは（;細菌、赤色のα-アクチニン、緑）に染色した。 AC。 Nmは（A）またはα-アクチニン（B）の位置のXYの画像を示す一つのフィールド。 （C）のオーバーレイイメージは黄色、オレンジ色がcolocalisationを示唆して表示されるいくつかの領域を示している。の矢印（A）と（B）α-アクチニンの蓄積度が高いが、細菌の周囲に発生しているように見える領域を示しています。 セルの底部にある細胞内細菌の周りcolocalisationを示す感染したHBMEC単分子層のD.光学解剖。 再び、このcolocalisationはα-アクチニンの偶発的な近さによるものではない、この地域におけるα-アクチニンの一般的な汚れとして低いです。 上記のように処理感染したHBMEC単分子膜のEとFには、三次元画像。頂端表面の斜視図（E）は、内皮細胞（黄色の矢印）の基底面に向かって位置するいくつかの細菌に対し、付着細菌染色した赤を（赤い矢印）を示す色ではっきりと黄色/オレンジ色です。基底場所がより明確に（F）これは、エンドオンXZ断面であるに見ることができます。 G. N.のネガティブ染色電子顕微鏡像そのを示す髄膜炎から優勢双球菌の。各球菌は、直径約0.5μmである。 <img src="/files/ftp_upload/2045/2045fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。 HBMEC細胞におけるα-アクチニン、アクチンとビメンチンの局在と分布。 上記の凡例に示すが、α-アクチニンに加えて、いくつかのカバーグラスはα-アクチニンの場合と同様の手順により、アクチンやビメンチンの検出に使用されたとしてHBMECのA.感染した単層を処理した。上記のように、α-アクチニン、いくつかの内部化細菌（白矢印）周辺に集中。ビメンチン、アクチンは、かなりのレベルまで細菌をcolocaliseていませんでした。バーは20μmを表す。 係数Rと私のためにB.＆C.値は、上述したようにVolocityソフトウェアを使用して、つ以上の実験から得られた。

<ol><li>Virji, M., Makepeace, K., Moxon, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+mechanisms+of+interactions+of+Opc-expressing+meningococci+at+apical+and+basolateral+surfaces+of+human+endothelial+cells%3B+the+role+of+integrins+in+apical+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Distinct mechanisms of interactions of Opc-expressing meningococci at apical and basolateral surfaces of human endothelial cells; the role of integrins in apical interactions.</a> Molecular Microbiology. 14, 173-184 (1994).</li>
<li>Virji, M., Makepeace, K., Peak, I. R., Ferguson, D. J., Jennings, M. P., Moxon, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Opc-+and+pilus-+dependent+interactions+of+meningococci+with+human+endothelial+cells%3A+molecular+mechanisms+and+modulation+by+surface+polysaccharides%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Opc- and pilus- dependent interactions of meningococci with human endothelial cells: molecular mechanisms and modulation by surface polysaccharides.</a> Molecular Microbiology. 18, 741-754 (1995).</li>
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<li>Manders, E. M. M., Verbeek, F. J., Aten, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+colocalization+of+objects+in+dual+color+confocal+images%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Microscopy%22%5BJournal%5D)">Measurement of colocalization of objects in dual color confocal images.</a> Journal of Microscopy. 6, 357-382 (1993).</li>
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</ol>

利害の衝突は宣言されません。

内部化の結合の可能性OPC発現α-アクチニンにナイセリア髄膜炎は、細菌のcolocalisationと3と8時間の潜伏期間の後、感染細胞の細胞骨格蛋白質の検査でHBMECを用いて検討した。共焦点顕微鏡により、α-アクチニンと髄膜炎菌のcolocalisationを実証することができます。細菌を3時間で内在化されたが、特に、、この時点でα-アクチニンと少しcolocalisationなかった。細胞骨格タンパク質と細菌の関連が8時間の感染期間の後に細胞内の居住のより長い期間を必要とするように登場し、細菌のかなりの数には密接に関連して明らかにα-アクチニンを持っていた。 α-アクチニンは多機能タンパク質であり、細胞骨格要素を持つ細菌の相互作用は、現在の研究の対象となる標的細胞の機能に重要な影響を与える可能性があります。 上記のようcolocalisationの定量化は、細心の試料の準備が必要です。特に注意が期間と抗体希釈液をブロックし、試料の固定に与えられるべきである。対雑音比最高の信号の場合は、それぞれプライマリとセカンダリの抗体は、最適な濃度を決定するために予備実験で滴定する必要があります。我々の経験では、封入剤のMowiolは、より良いイメージを作り出した。

1。共焦点レーザー走査顕微鏡（CLSM）： ライカSP5共焦点イメージングシステム：このシステムは、AOTF（音響光学チューナブルフィルター）とAOBS（音響光学ビームスプリッタ）の組み合わせを使用することにより、特定の波長で励起を簡素化します。 2 - ソフトウェア： ライカ共焦点ソフトウェアLCS、ライカマイクロシステムズ、ドイツ。 Volocity 5、即興、パーキンエルマー、米国。

の細胞内相互作用の可視化と定量化髄膜炎菌</em共焦点イメージングによるα-アクチニン>と人間

Visualisation and Quantification of Intracellular Interactions of Neisseria meningitidis and Human &alpha;-actinin by Confocal Imaging

髄膜炎菌 （ナノメートル、髄膜炎菌）のOPCの蛋白質はアドヘシンとヒト上皮および内皮細胞のための効果的なインベイシンとして作用することができる表面発現に不可欠外膜タンパク質、です。我々は、OPC、そのようなビトロネクチンのようなインテグリンのリガンドへの最初のバインドにOPCを必要とするプロセスのための主要な受容体として、これらの細胞に発現受容体1を介して内皮細胞表面にあるインテグリンを同定した。このプロセスは、内皮細胞の細菌の侵入を2につながる。最近では、我々はヒトの細胞3の全細胞溶解物に見られる100kDaタンパク質とOPCとの相互作用を観察した。宿主細胞のタンパク質は電気泳動によって分離し、ニトロセルロースにブロットOPC発現ナノメートルを重ねていたとき私たちは、最初にこの相互作用を観察した。相互作用は直接的であり、中間分子を伴うものではなかった。質量分析法により、我々はα-アクチニンなどの蛋白質のアイデンティティを確立した。ない面が発現していないとして、α-アクチニンは調べた8枚のセルラインのいずれかに発見され、標的細胞への細菌侵入に対する血中鉛の存在下で内皮細胞とOPCの相互作用として、我々は細胞内で相互作用する2つのタンパク質の可能性を検討した。このため、培養ヒト脳微小血管内皮細胞（HBMECsは）長期間と内部化された細菌とα-アクチニンの位置については、OPC発現Nmで感染させた共焦点顕微鏡で調べた。私たちは、細菌の内部化の8時間後にはかなりいた細胞骨格タンパク質、とNmのcolocalisationにおける時間依存増加を観察した。さらに、定量的なイメージングソフトウェアを使用することにより、α-アクチニンと他の細胞骨格タンパク質とナノメートルのcolocalisationの相対的な尺度を得ることができました。手順を実行すると、ヒト上皮細胞にも適用可能であるが、ここでは、ヒト内皮細胞への細菌侵入後の細胞内タンパク質と細菌のcolocalisationの可視化と定量化のためのプロトコルを提示する。

髄膜炎菌 （ナノメートル）、グラム陰性ヒト特異的な呼吸器病原体は、ヒトα-アクチニンに結合することができる。ここでは、人間の脳の微小血管内皮細胞（HBMECs）への細菌侵入後のα-アクチニン細胞と細菌のcolocalisationの可視化のためのプロトコルを提示する。

髄膜炎菌（Neisseria meningitidis; Nm, meningococcus）のOpcタンパク質は、細胞表面に発現する外膜整合タンパク質であり、アドヘシンおよび...として機能します。

本実験の全体的な目的は、細胞内に取り込まれた細菌（RIA Meningitidis）と細胞骨格タンパク質であるAlpha Actininの共局在レベルを評価することです。この目的を達成するために、培養したヒト脳微小血管細胞に一晩培養した細菌を3時間から8時間感染させ、細菌を標的細胞内に進入させます。次のステップとして、細胞内細菌を含む細胞を洗浄、固定し、透過処理を行うことで、取り込まれた細菌および細胞内alpha actininの免疫染色に向けた感染培養細胞の準備を整えます。共焦点イメージングを行い、共局在化ソフトウェアを適用することで、細胞内共局在の画像を確認できます。また、共焦点顕微鏡による可視化および定量的な共局在化解析により、Meninga Crociを発現するOPCおよび膜タンパク質が、細胞内α-actininと特異的に相互作用することが定量的な結果として得られます。こんにちは、ブリ大学細胞分子医学科のマタTI教授の研究室のIsel Mariaです。本日は、細胞内細菌と細胞骨格タンパク質の共局在比率のレベルを推定する手順について説明します。当研究室では、自己膜タンパク質OPCを発現する髄膜炎菌の菌糸と、細胞骨格タンパク質であるα-アクチンの相互作用を研究するために、この手順を用いています。それでは、始めていきましょう。この作業は、適切な安全設備を備えた研究室で行う必要があります。免疫染色の手順の2日前、目的の細菌株を脳心臓浸出液（BHI）培地に接種します。10%加熱馬血を添加した寒天平板を用い、免疫染色の前日に37°C、5% CO2 atmosphere下で一晩培養します。10 µLのカルチャーループを使用して、一晩培養した細菌培養液の懸濁液を作成します。2 mLのPBSB中にて、室温で5分間静置し、大きな細菌凝集塊を沈殿させます。次に、ペレットを乱さないように、懸濁液の上層1 mLを滅菌チューブに移します。20 µLの細菌懸濁液を含む2本のバイアルに、1% SDS 0.1 M 水酸化ナトリウムを1 mL添加して細菌を可溶化し、チューブを転倒混和します。これにより細菌数を推定します。溶液の吸光度を測定して核酸量を定量します。216に合わせ、ヒト脳微小血管内皮細胞に感染させるための感染培地における細菌懸濁液を、規定の密度に調整します。免疫染色の2日前に、12ウェルプレートのウェルに16 mmのガラスカバースリップを配置し、HBME cellsをカバースリップ上に50%コンフルエンスになるように播種します。37°C、5% CO2雰囲気下で一晩インキュベートし、翌日に移行します。当研究室で調製した新鮮な細菌懸濁液を用いて細胞に感染させます。通常、標的細胞1個あたり200から300 colony forming unitsの感染比を用います。感染期間の終了まで、37 °C、5% carbon dioxideの条件下で3時間から8時間インキュベートします。細胞をPBSで3回洗浄し、2%パラホルムアルデヒド500 µLを用いて室温で30〜45分間固定します。パラホルムアルデヒドを洗い流した後、PBSで希釈した0.1%Triton X 100中で10分間インキュベートし、パラホルムアルデヒド固定細胞を透過処理します。最後に、サンプルをPBSで3回洗浄し、以下に示す免疫染色の手順に進みます。次に、細胞内細菌とα-アクチニン（d-actinin）の染色は同時に行うことができます。12ウェルプレートにおいて、透過処理済みの細胞を含むカバーガラスを500 µLの3% BSA-PBSTで30～60分間ブロッキングします。室温でPBSを用いて洗浄した後、各カバーガラスを12ウェルプレートの新しい乾燥したウェルに移動させ、細菌に対する一次抗体とalpha actininに対する一次抗体を同時に添加します。カバーガラスの表面を覆うように慎重に添加すれば、カバーガラス1枚あたり80～100 µLの抗体で十分です。室温で1時間インキュベートします。インキュベーション終了後、ウェルに200 µLのPBSを加え、カバーガラスを持ち上げて500 µLのPBSを含む新しいウェルに配置します。5分後、ピペッティングでPBSを除去し、その後、新鮮なPBSを添加します。この操作を2回繰り返し、カバーガラスを新しい乾燥したウェルに移動させます。次に、異なる蛍光色素を標識した適切な二次抗体を1% B-S-A-P-B-S-Tで希釈し、加えます。室温・暗所で1時間インキュベートし、インキュベーション終了後、前述の方法で洗浄します。その後、DPIを用いて室温・暗所で5分間DNAを対比染色します。このインキュベーション終了後、カバーガラスをPBSで1回洗浄し、封入剤を1滴滴下して封入します。封入したカバーガラスは、顕微鏡観察まで暗所で保存してください。倒立蛍光顕微鏡に取り付けられた共焦点レーザー走査顕微鏡を用いて、免疫標識したサンプルの観察および画像キャプチャを行います。CLSMの手順を開始するため、対物レンズへの浸液を滴下し、標本スライドのカバーガラスを顕微鏡ステージ上に設置します。顕微鏡を視覚モードに設定し、接眼レンズを用いて目的の領域を探します。これでLeicaソフトウェアを使用する準備が整いました。XY z取得モードを選択します。共局在解析には、512 × 512形式を選択してください。解像度が高いほど、画像はより正確になります。次に、走査速度を向上させ、光退色を抑制するために、双方向Xモードを選択します。続いて、シーケンシャルスキャンの設定を行います。SEC機能をクリックし、ラインの間で選択します。二次抗体に結合している蛍光色素に合わせてレーザービームを選択してください。DPIには405 nanometersを、Alexa Fluor 488には488 nanometersを、そして561 nanometersを選択します。Trixyについて、光電子増倍管1、2、および3をそれぞれ起動します。Zスタックまたはシリーズの上限と下限を設定します。次に、Zステップサイズを0.2 micrometersに設定します。RIA Menciusはdiplo occusであり、各caucusの直径は約0.5 micrometersであるため、Zステップサイズを0.2 micrometersに設定することで、各caucusを少なくとも2回スキャンできる確率が高まります。「開始」をクリックし、ライン平均回数を3回に選択して最終的なスキャンパラメータを設定し、信号対雑音比を向上させます。異なる波長で逐次スキャンを行い、各チャンネルにbetween linesモードを使用することで、異なる発色団間のクロストークを排除し、二重または三重染色画像を得ることができます。2つの蛍光色素の共局在を示すには、オーバーレイ機能を選択して、選択したチャンネルを1つの画像に統合します。例えば、Alexa 488とTris-Fluor Chromesの両方が共局在している場合、オーバーレイ画像に黄色が表示されます。共局在の可能性を視覚化するために2D再構成が必要な場合は、最大投影（maximum projection）機能を用いてZスタックまたはシリーズを統合します。Zスタックまたはシリーズを取得した後、データを処理して直交画像（orthogonal image）を作成し、さまざまな要素の細胞内局在を視覚化します。共局在の定量化は、IMP provisionのVol Cityソフトウェアを用いて行います。まず、CLSM画像を用いてライブラリを作成し、上部バーにある画像からextended focus（拡張フォーカス）を選択します。このツールにより、解析対象となる2D画像にZスタックが統合されます。次に、COLOCALIZATIONツールを選択します。解析する2つのチャンネルは、同じ色深度である必要があります。定量化する領域を選択してください。閾値を設定し、背景を除去します。「generate colocalization」を選択して、共局在化出力を作成します。 previouslyに選択した関心領域（ROI）に対して、共局在化統計が生成されます。次に、マンダースの係数 R および ny を選択します。最後に、統計値を Excel ドキュメントにエクスポートしてデータ提示を行います。ここに、髄膜炎菌を 8 時間感染させたヒト脳内皮細胞の代表的な共焦点イメージング結果を示します。細菌の位置は赤色で表示されています。α-アクチニンの位置が示される一方で、緑色の矢印は細菌の周囲に高度なα-アクチニンの蓄積が起こっていると思われる領域を示しています。このオーバーレイ画像では、黄色からオレンジ色の領域がいくつか見られ、meninga occiとα-アクチニンの共局在が示唆されています。次の画像において、感染したH-B-M-E-C単層の光学切片を作成すると、細胞の基底面に位置する細胞内細菌の周囲に共局在していることがわかります。感染したH-B-M-E-C単層の3次元画像を処理したところ、頂端面の斜視像において、赤色の矢印で示される赤色に染色されたDurant細菌が確認され、黄色の矢印で示されるように数個の細菌が内皮細胞の基底面側に位置していました。このendon XZ断面図では、基底側に位置する明瞭なオレンジ色または黄色の部位がより明確に観察されます。一方で、内部に取り込まれた細菌と、mentonまたはactinのいずれかを標識したactinin実験では、H-B-M-E-C細胞においてactinとの共局在は時折見られましたが、fermentingとの共局在は稀であることが明らかになりました。前回の実験で観察されたように、Retinは白い矢印で示されるいくつかの細胞内細菌の周囲に集積していました。また、相対的なオーバーラップを得るためにデータの解析を行いました。Mandaによれば、係数Rは真の共局在度（IE）を表しており、これは全画素数に対する共局在画素数の割合を示します。OPC発現髄膜炎球菌に感染したH-B-M-E-Cにおけるα-actinin、menting、およびactin全体のNY値を算出した結果、髄膜炎球菌におけるRetinのオーバーラップは25%を超えていました。係数Yは、少量のmeningococcal信号が発生するたびに、より多量のrein信号がどの程度の頻度で出現するかを示す指標です。この指標は、内部移行したmeningococcalの近傍にα-actininが顕著に存在することを示しています。本実験では、内部移行した細菌と細胞骨格要素の共局在を視覚化し、定量化する方法を説明します。構造の完全性を維持し、高いバックグラウンドを避けるためには、固定および免疫染色のプロトコルを厳守することが重要です。以上となります。ご視聴ありがとうございました。皆様の実験の成功をお祈りいたします。

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