Name: ミュンヘンWistar系ラットにおける2光子顕微鏡を用いた蛍光高分子の糸球体透過性を定量化 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-04-17T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 13 s
Description: 学ぶ2光子顕微鏡を用いた糸球体透過性の定量化法。ミュンヘンWistar系ラットで蛍光高分子の腎臓濾過を可視化し、生体内で濾過係数を測定する技術を解説します。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

著者は、静脈アクセスラインの配置を伴う外科手術を完了するため博士シルビアBカンポス-BilderbackとジョージJロードスに感謝したいと思います。彼らはまた、シモンセンとFrömter株の両方で構成されるミュンヘンのWistarコロニーを維持するためにサラE離乳に感謝したいと思います。

1。スルホ-ローダミン101スルホニルクロリド（テキサスレッド）へアルブミンラット血清の結合<ol><li> 50ミリリットルコニカルチューブ中の最終濃度15 mg / mlの、100mMの重炭酸ナトリウムのpHは9.0の6.667ミリリットルで（RSA）ラット血清アルブミン100mgを溶かす。 </li><li>場所の氷/水ビーカー内の溶液と0〜4℃の間にクール</li><li>テキサスレッド塩化スルホニル（TRSC）10mgのバイアルに高品質の無水ジメチルホルムアミド（DMF）を200μlを加え、15秒間媒体上渦。 </li><li>渦RSA媒体上の液と溶解TRSCを追加します。 </li><li>ホイルでラップ50ミリリットルコニカル（形成されたパラフィルムは、密封を確実にするために使用することができます）、水平方向のw /アイスのみと場所（気泡の形成を避ける）をゆっくりとソリューションを撹拌するためのロッカー上の氷のバケツに場所は、反応は0で継続することができますに4℃で1時間。 </li><li> 0.9％食塩水の5 Lを作成し、クリップ付きのいずれか）を透析膜することができます室カットオフ50 kDaの分子量、b）は、ジを濡らすフロート·アナライザ、またはc）のスライド·アナライザカセット（すべての非共役TRSCの除去に適しています）のようにalysisチューブ。 </li><li> 5 Lコンテナのw / 0.9％生理食塩水で透析室と所定の位置に置く反応混合物は、攪​​拌棒を用いて穏やかに撹拌しながら4℃で一晩透析する。 </li><li>ほとんどない色の変化で一晩インキュベーション結果（これは典型的には少なくとも4交換で〜48時間かかります）まで、午前中と夕方の5 Lの透析液を変更します。さらに、50 kDaでMWCOがRSA、66kDaの分子量に非常に近いことと、それは明確な解決策を生み出すことはありませんすることが可能であるが、これは膜の孔径に分布に依存することになる; 60時間と5交流がある十分な時間以上。 </li><li>測定量とTR-RSAの近似濃度を与えるようにボリュームで100ミリグラムの初期重量を分け、通常の濃度範囲10-13 mg / mlのから。最後の染料：アルブミン比は15,00あたり〜4時01分、1発蛍光団であるべきタンパク質MWの0ダルトン。 4℃で保存、発生する可能性があり、断片化を結果としては透磁率の値が変更されますように、TR-RSAソリューションを凍結しないでください。 </li></ol> 2。イメージング/顕微鏡セッティング用倒立顕微鏡ステージの準備<ol><li>場所〜完全に40ミリメートルのカバースリップ底（カバーガラスボトムディッシュ）で50ミリメートル皿の内側に互いに上に積層オートクレーブテープの4-7枚（約¾ &quot;長い）。これらは近いエッジのいずれかに配置する必要がありますので、それはテープの端は、腎臓の曲の端に接触することなく、客観的な光パス（ 図1Aおよび1B）をブロックしません。大きいラットは料理のテープとエッジの間に多くのスペースが必要になります。 </li><li> 50ミリメートル皿（ 図1A）と並んで、ステージ横にプレイス2 REPTI-サームパッド。ステージ上の温暖化ウォータージャケット毛布を置きます。 </li><li>客観的なタレットを保証することで画像を収集すると、10倍の空気Oを持っている時の効率を最大化R 20X（空気や水浸）客観的かつ定量のための画像を収集するために、より高い動力を与えられた水浸対物レンズ。 </li><li>撮像中の目標に水を追加するには、最も効率的な方法は、側にそれらを回転させ、目標のトップに到達することができますPE-200チューブの長い作品と1ccのシリンジを用いて水を追加することです。 </li><li>ソフトウェア上のNDフィルターを使用して〜15〜20％に10ワットレーザーの励起強度を設定します。ガリウム砒素リン非デスキャン検出器は、赤の排出量を収集するための緑の排出量、および625を収集するために750に設定されています。青色発光（例えば、核の染色ヘキスト33342など）は750から800の間で設定で標準nondescanned multialkaline検出器を使用して収集されます。 </li><li>ボーマン空間内で低強度の排出量の適切な回収を確保するため、検出器の下限値は、これらの値を除外しないように設定されていることを確認。ビジュアル警告マーカーは感度があれば表示されます設定が低すぎると、これらの値は、ゼロの強度値を与えられている。 </li><li> 1 CCの総容積を持ち出すために0.9％滅菌生理食塩水で希釈した蛍光アルブミン溶液の約5-8 MGと1ccのシリンジをロードします。 </li></ol> 3。生体内のためにミュンヘンのWistar系ラットにおける腎臓を露出する2光子イメージング<ol><li> Pentabarbitol（50 mg / mlの溶液を、120μl/100体重100g）、Inactin（130 mg / mlの溶液を、120μ/100グラム体重）、またはイソフルラン（5％誘導、1.5を使用して事前に麻酔をかけたラットで始まる留置静脈アクセス回線（どちら頚または大腿静脈）、とばかりにただ左大腿上記胸郭下から剃ら左脇腹、）2.5％保守まで。 </li><li>ように、その右側にフラットラットを置きその左、坊主側が上を向いている、その姿勢が伸長します（ 図前足がお互いに触れ、お互いとリアの足に触れて、うずくまっていないと、それは、テーブルの上に平らであることを確認してください2A）。 </LI&gt; <li>非常に軽く、それが自然に後腹膜内に産む場所を決定し、シャーピーを使って本体（胸郭から太ももまで）（ 図2A）に平行な直線を描画するために腎臓を感じるように触診。 </li><li>歯ピンセットで皮膚をピックアップし、組織をつぶすと出血を防ぐために、止血のペアを使用して描かれた線に沿って皮膚をつまむ。手術用はさみのペアを使用して切開に沿ってカットします。カットする前に外側の皮膚と筋肉の層を破砕すると劇的に削減し、一般的に出血がなくなります。 </li><li>薄くて外側の筋肉層、について、この手順を繰り返します。 </li><li>腹膜を公開します内側の筋肉層、切開の場合は、大きさを推定するために腎臓を再度触診。腎臓より小さい切開ラインをつまんで、切開を保証するだけで、腎臓の上にある。この切開があまりに小さく、必要に応じて、それを大きくすることをお勧めします。これは大きすぎるなされた場合は、縫合が必要となる。この最後の切開が重要であり、あまりにも遠く任意の方向に経由すると、ステージ上の安定性に影響を与え、呼吸からモーションアーチファクトのいずれかを誘発する（ベストケースシナリオ）や腎茎を伸ばすに悪影響腎灌流を（最悪の場合）削減されます。 </li><li>腎臓の位置を確認します（ 図2（b）に示すように）とグリップピンセットを用いて周囲の脂肪、手のファッションの上に手に腎臓の下極に向けて取り組んでいます。 </li><li>腎臓の下極に到達すると、非常に静かに体外に出すために腎臓の下に絞りながら、優しく切開を通して腎臓を引き出します。切開が小さすぎると、筋層を粉砕し、それを広げるためにカット、腎臓を露出させるための手順を繰り返す。 </li></ol> 4。イメージングのために、ステージ上のミュンヘンのWistarラットを配置<ol><li>腎臓とカバースリップの皿の端の方に腎臓を置き、わずかに、ラットの背側（背面側）に向かって回転させ、腎臓の腹側ので、私sがカバーガラスボトムディッシュ（ 図1A）と接触する。お皿に温め、無菌の09％食塩水を追加します。 </li><li> 10倍または20倍客観的に目を通すと、動きを確認してください。動きが検出された場合は胸部が遠くカバーガラスボトムディッシュからですので、少し上のラットを転がし、腎臓などの腎茎（ 図1B）を伸ばすことなく、お皿の端に近いことを確認してください。 </li></ol> 5。アルブミンの腎透過を定量化するために画像を取得<ol><li>糸球体透過性（Glomeruluarふるい係数; GSC）を計算する任意の高分子のことは事前の蛍光分子の注入への個々の糸球体の基準背景画像を撮影する必要があります。あなたの顕微鏡はマーキング位置が可能な電動ステージが装備されている場合は、検索および低電力対物レンズを用いて個々の糸球体の中心と、それぞれの場所をマーク。デュアルパスフルオレセイン/ローダミン落射蛍光FILどちらエミッションフィルタは（位相コントラストや照明の他の非蛍光源は動作しません）動作しますが、ターは、この手順のために理想的です。糸球体は、デュアルローパスフィルタを通して見たときに特有の黄橙色autoflourescenceを持つ近位尿細管に囲まれた空の円形の構造として表示されます。 </li><li>あなたの顕微鏡は電動ステージを持っていない場合は、低消費電力を目的としたラスタパターンで腎臓をスキャンして、個々の糸球体がどこにあるかの初歩的なマップを作ること、そのような腎カプセルの上にある大規模な表在血管のような自然なランドマークに頼るまたは脂肪パッチ。 </li><li>高電力、水浸対物レンズにタレットを切り替えて毛細血管ループやボーマン空間がはっきりと見えることを確認し、それぞれの糸球体の3Dデータセットを取る。擬似カラーパレット（B / W以外のもの）を使用すると、これらの構造を視覚化するのに役立ちます。 </li><li>表在血管の中を当て、ゆっくりとTで吹き込む彼は、蛍光アルブミン意思確認時間は全身分布を可能にするために与えられている。低GSCを有する分子のためには、プラズマ中の強度値を最大化することではなく、顕微鏡の光検出器を飽和させるレベルに到達しないことが不可欠である。これは、フィルタリングされた分子の検出能を向上させます。注：時間の間に5-7秒経過は通常存在する蛍光アルブミンは、それが画面に表示されます（約1コマ/秒でフルフレームを取得する）時に導入される。 </li><li>約10分はアルブミンGSCの計算に使用される1ミクロン間隔で3Dボリュームを獲得する前にクリアして、潜在的な小分子量のフラグメントを許可することができます。一般的には、ミュンヘンのWistarラットのシモンセンの株がはるかに少ない表面糸球体があり、視覚化することができることすべてを撮像し、定量化されているそう。 Frömter株は、我々は〜10に定量数を制限するように、はるかに大きな数を持っています。 </li><li>研究の終わりに、ラットをanesthetの過剰摂取を介して安楽死させているicが研究に使用した。デュアルpneumothoracotamyは安楽死を保証するために行われる。 </li></ol> 6。 3Dボリュームから蛍光アルブミンための計算GSC <ol><li>各糸球体用の3Dデータセットをロード変形者の画像処理ソフトウェアを用いて、両方の背景セットと蛍光アルブミンの注入後に撮影セット。 </li><li>その定義されたマージンとボーマン嚢の端の間に十分なスペースが空きスペースとの表面的な毛細血管ループを見つけ蛍光アルブミンを含むボリュームで。 </li><li>背景ボリュームにアルブミンを含む画像のすべての視覚的な手がかりが含まれている必要があり、同じ焦点面を探します。関心の毛管ループ内の領域を選択し、平均強度の読みに注意してください。次にボーマン空間内の領域を選択し、平均強度の読みに注意してください。これらは、バックグラウンド値として使用される。 </li><li>定量のために、アルブミンのCボーマン空間内類似領域を選択画像をontaining。ボーマン空間内の平均強度の平均値を取るために、少なくとも2つの他の地域のためにこれを行います。 </li><li>明るいプラズマ強度と毛細血管のループを選択し、周囲の領域を描画します。閾値関数を使用して、次の、RBCのを循環している暗い縞を回避、循環血漿内明るい値を強調。選択されたプラズマ空間の平均強度値に注意してください。血中の要因が唯一の原因と血漿蛍光レベルの過小評価するのに役立つでしょうので、それは優先的にプラズマの明るい部分を選択することが重要である。 </li><li> Microsoft ExcelスプレッドシートがどこGSCを計算するために値を入力します使用： </li></ol><img alt="図1" fo:content-width="2.95in" fo:src="/files/ftp_upload/50052/50052eq1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50052/50052eq1.jpg" />

<ol><li>Russo, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+normal+kidney+filters+nephritic+levels+of+albumin+retrieved+by+proximal+tubule+cells%3B+retrieval+is+disrupted+in+nephritic+states%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+International%22%5BJournal%5D)">The normal kidney filters nephritic levels of albumin retrieved by proximal tubule cells; retrieval is disrupted in nephritic states.</a> Kidney International. 71, 504(2007).</li>
<li>Russo, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+tubular+uptake+explains+albuminuria+in+early+diabetic+nephropathy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Society+of+Nephrology%22%5BJournal%5D)">Impaired tubular uptake explains albuminuria in early diabetic nephropathy.</a> Journal of the American Society of Nephrology. 20 (3), 489(2009).</li>
<li>Sandoval, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+factors+influence+glomerular+albumin+permeability+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Society+of+Nephrology%22%5BJournal%5D)">Multiple factors influence glomerular albumin permeability in rats.</a> Journal of the American Society of Nephrology. 23 (3), 447(2012).</li>
<li>Tojo, A., Endou, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrarenal+handling+of+proteins+in+rats+using+fractional+micropuncture+technique%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Intrarenal handling of proteins in rats using fractional micropuncture technique.</a> American Journal of Physiology. 263, 601(1992).</li>
<li>Asgeirsson, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glomerular+sieving+of+three+neutral+polysaccharides%2C+polyethylene+oxide+and+bikunin+in+rat%3A+Effects+of+molecular+size+and+conformation%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiologica%22%5BJournal%5D)">Glomerular sieving of three neutral polysaccharides, polyethylene oxide and bikunin in rat: Effects of molecular size and conformation.</a> Acta Physiologica. 191 (3), 237(2007).</li>
<li>Sandoval, R. M., Molitoris, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantifying+endocytosis+in+vivo+using+intravital+two-photon+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Quantifying endocytosis in vivo using intravital two-photon microscopy.</a> Methods in Molecular Biology. 440, 389(2008).</li>
<li>Dunn, K. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live-animal+imaging+of+renal+function+by+multi-photon+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc.+Cytom%22%5BJournal%5D)">Live-animal imaging of renal function by multi-photon microscopy.</a> Curr. Protoc. Cytom. Chapter 12, Unit 12.9(2007).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もありません。

手順はここで我々は、彼らが次の落とし穴を回避するため、一貫性のある正確な透過性値が生成されたものであると感じるものを表す強調： <ol><li>散乱：長い波長の光子が散乱しにくい傾向があるので、赤色発光蛍光体の使用は、光をより効率的に回収を可能にする。どちら緑色または青色発光蛍光団を使用するので、毛細血管ループとボーマン空間3からの強度値の増加変動GSC年代に大きな変化をご紹介します。 </li><li>画像の深さ：深い3Dデータセットが通常（しばしば総深さ30-45ミクロンの間）に収集されていますが、上位10〜15ミクロンGSC値を決定するために最も適切な焦点深度を表しています。再び深い深度と感度の低下と放出された光子の散乱に起因する変動性の増加が来る。さらに重要なことはしかし、dは発生毛細血管ループの混雑です糸球体内eeper。ここでは、毛細血管ループはボーマンスペースを取り囲むボーマン嚢の端に密接に押し上げている。これは、誤って直接毛細血管ループを囲む多数の足細胞の1以上の領域を選択する可能性が高くなります。フィルタリングアルブミンの真の、より高い強度が報告されませんので、これはGSCのの過小評価につ...

<table><tbody><tr><td>オリンパスFloview 1000 共焦点/多光子顕微鏡</td><td>オリンパスアメリカ</td><td></td><td>検出器用フィルター:ブルー 430/100、グリーン 525/50、レッド 605/90</td></tr><tr><td>モードロック Ti:サファイア マイタイ レーザー</td><td>スペクトル物理学</td><td></td><td>調整可能な励起波長:~750-1150 nm</td></tr><tr><td>ガリウムヒ素リン光検出器</td><td>浜松製作所</td><td></td><td>注:フロントまたはサイドマウント構成が利用可能です。</td></tr><tr><td>変身画像処理ソフトウェア</td><td>分子動力学</td><td></td><td>注: バージョン 6.1r1</td></tr><tr><td>Microsoft Excel</td><td>Microsoft Corportation</td><td></td><td>2007 バージョン</td></tr><tr><td>取り扱い 鉗子</td><td>電子顕微鏡科学</td><td>Cat# 78266-04</td><td></td></tr><tr><td>メイヨー 解剖ハサミ</td><td>電子顕微鏡科学</td><td>Cat# 72962</td><td></td></tr><tr><td>CA マイクロハサミ モデル 1C300</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>Cat# 78180-1C3</td><td></td></tr><tr><td>Kelly Hemostatic Forceps (straight)</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>Cat# 72930</td><td></td></tr><tr><td>Water Jacket Blanket + Heating Pad</td><td>Gaymar</td><td></td><td>T/Pump PN 11184-000 Blanket-66N111CC</td></tr><tr><td>Repti-Therm Under Tank</td><td>Heater ZooMed</td><td></td><td>RH-4</td></tr><tr><td>Texas Red Sulfonyl</td><td>Chloride Invitrogen/Molecular Probes</td><td>Cat# T-353</td><td></td></tr><tr><td>ラット血清アルブミン</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Cat# A-6272</td><td></td></tr><tr><td>高品質無水DMF</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Cat# 270547</td><td></td></tr><tr><td>Strate-Line オートクレーブテープ</td><td>Fisher Scientific</td><td>Cat# 11-889-1</td><td></td></tr><tr><td>Willco-dish Coverslip Bottom Dishes (50 mm/40 mm coverslip)</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>Cat# 70665-07</td><td></td></tr></tbody></table>

ミュンヘンwistar系ラットにおける2光子顕微鏡を用いた蛍光高分子の糸球体透過性を定量化

Quantifying Glomerular Permeability of Fluorescent Macromolecules Using 2-Photon Microscopy in Munich Wistar Rats

例えば、血清アルブミンなどの大型不可欠巨大分子の尿中損失を伴う腎疾患は、長い足細胞、血管内皮細胞、および一斉に作業基底膜からなる透過バリアの変化によって引き起こされると考えられてきた。生体2光子顕微鏡を用いた我々の研究室からのデータは、フィルタアルブミンの取得は、近位尿細管細胞（PTC）1,2、と呼ばれる細胞の初期のサブセットに生じると、以前に生理的条件下では考えられていたよりも透過性の糸球体濾過障壁（GFB）を明らかにした3。 腎臓のろ ​​過および流体内容と分析4のサンプリングでこれらの初期の管状セグメントの内腔の微小穿刺を関与ろ過障壁の特性を確立することを研究するために使用前のテクニック。密接に対応し、これらの研究は事実上存在しないことを腔液のアルブミン濃度を決定する通常は尿中に検出されるものである。しかし、この技術によって定義されたサイズを有するデキストランポリマーの特徴付けは、血清アルブミンと同様のサイズのものを明らかにした管状の管腔および尿中のより高いレベルを持っていた。透過性の増大5を示唆している。 ここでは、直接生体内での糸球体蛍光アルブミン透過性を可視化し、定量化するために使用される技術の詳細な概要です。この方法は、ボーマンスペース（尿ろ過の初期室）にろ過関門フィルタリングアルブミンの検出を可能に、そしてまた近位尿細管およびその後アルブミントランス6の可視化により、アルブミン再吸収の定量が可能になります。膀胱への途中後で管状セグメントに沿って蛍光アルブミンが存​​在しないことは、以前の近位尿細管セグメントにおける検索経路の効率を強調しています。さらに、この技術を適用したときの浸透性を決定するアルブミン実質的に同一の透過性値に類似した大きさを有するデキストランの2を報告した。これらの観​​察結果は、直接、近位尿細管細胞の埋め立てに含まれる改変には多くの蛋白尿腎疾患の焦点を拡大する必要性をサポートしています。

図3は、ミュンヘンウィスター系ラットFrömterと蛍光アルブミンの浸透性を決定するために取られるステップの表面の糸球体から撮影画像の一例を示す図である。ミュンヘンWistarラットとき飼育条件3でのこの株で見られる範囲内で、この個々の糸球体の落下に対して導出0.0111のアルブミンためGSC値。これらのイメージで見られる安定性は、慎重な計画と、図1および図2に示されている命令の実行によるものです。前述のように、腎臓を視るに使用される切開の配置はモーションアーチファクトのない安定した画像を生成する中で最も重要なステップです。 <img src="/files/ftp_upload/50052/50052Figure1.jpg" alt="図1" fo:content-width="5.5in" fo:src="/files/ftp_upload/50052/50052Figure1highres.jpg"/><br ...

技術が直接表面糸球体でgloemrularろ過を視覚化し、定量化するために、高解像度intavital 2光子顕微鏡を用いた。このメソッドは、正常および病的両方の状態における高分子の透磁率特性を直接測定することができます。

ミュンヘンWistar系ラットにおける2光子顕微鏡を用いた蛍光高分子の糸球体透過性を定量化

Kidney  diseases involving urinary loss of large essential macromolecules, such as  serum albumin, have long been thought to be caused by alterations in ...

この手順の全体的な目標は、ネフロンのろ過ユニットをうまく視覚化し、ろ過バリアを越えてin vivoで尿路空間への蛍光高分子のろ過を定量化することです。これは、最初に生きた動物用の顕微鏡ステージを準備することによって達成されます。次に、腎臓を露出させ、ラットをステージに置きます。次に、個々の糸球体が特定されてマッピングされ、背景の3D画像が取得されます。最後に、蛍光アルブミンを注入します。個々の糸球体の3Dボリュームを取得し、透過性を定量化します。最終的には、バイアル内2光子顕微鏡の使用により、腎臓の糸球体全体の高分子のろ過係数を示す結果を得ることができます。2光子顕微鏡の主な利点は、糸球体濾過と近位尿細管再吸収およびトランスサイトーシスの両方を動物で同時に定量化できることです。同時に、この技術の意味は、糸球体濾過と近位尿細管の両方の役割を理解することの重要性として、機械論を超えて診断および治療にまで及びます。アルブミンの再吸収は、治療の標的を決定する上で重要です。ラットに麻酔をかけた後、頸静脈または大腿静脈のいずれかに留置静脈アクセスラインを挿入し、胸郭のすぐ下から左大腿部のすぐ上まで左脇腹を剃ります。これは非生存手術です。ラットを右側に平らに置き、剃った左側が上を向くようにします。ベンチに平らに置き、姿勢を伸ばし、しゃがんでいないことを確認し、前足が互いに触れ合い、後足が非常に優しく触れていることを確認してください。触診して腎臓を感じ、後腹膜内のどこに自然にあるかを判断し、シャーピーを使用して一対の歯の鉗子で体に平行な直線を描きます。皮膚をつまみ、止血剤を使用して描かれた線に沿って皮膚をつまんで組織を押しつぶし、外科用ハサミを使用して出血を防ぎます。切開部に沿って切ります。必要に応じて薄くなる外側の筋肉層をカットする場合も同じ手順を使用します。腹膜を露出させる内側の筋肉層への切開による出血を防ぐために、止血剤を使用してください。腎臓を触診してサイズを推定します。腎臓よりも小さい切開線をつまんで、切開が腎臓のすぐ上にあることを確認します。この切開部は小さすぎ、必要に応じて大きくするのが最善です。腎臓の位置を特定し、鉗子を使用して周囲の脂肪をつかみ、手をつないで腎臓の底極に向かって働きます。腎臓の下極に到達したら、腎臓を切開部からそっと引っ張り、腎臓の下を非常にそっと絞って腎臓を外部にします。切開部が小さすぎる場合は、筋肉層をつぶして切り込み、幅を広げます。ラットの腎臓を外部化し、ラットを顕微鏡ステージに置いてイメージングした後、腎臓を外部化する手順を繰り返します。顕微鏡に、デュアルパスフルオレセインロッド、ドミンフィルター、および低倍率対物レンズを使用して位置をマーキングできる電動ステージが装備されている場合、近位尿細管に囲まれた空の円形構造として現れる個々の糸球体を見つけて中心に配置できます。固有の黄橙色の自家蛍光で各位置をマークし、砲塔を高出力の水浸対物レンズに切り替え、各糸球体の3Dデータセットを撮影します。キャピラリーループとボウマンスペースがはっきりと見えることを確認します。擬似カラーパレットを使用すると、これらの構造を視覚化するのに役立ちます。次に、表在性血管に焦点を当ててゆっくりと蛍光アルブミンを注入し、糸球体cing係数またはGSCが低い分子の全身分布を可能にするための時間が与えられていることを確認します、血漿中の強度値を最大化することが不可欠ですが、顕微鏡の光検出器を飽和させるレベルに達しないようにする必要があります。これにより、ろ過された分子の検出可能性が向上します 約10分待って、潜在的な低分子量の断片がクリアされるようにした後、メタモルフ画像処理ソフトウェアを使用してアルブミンの計算に使用する1ミクロン間隔で3Dボリュームを取得します。蛍光アルブミンを含むボリューム内の各糸球体の背景画像とともに、3Dデータセットをロードします。定義されたマージンとボーマンのカプセルの端との間に十分な空きスペースがある表面の毛細管ループを見つけます。バックグラウンドボリュームで。同じ焦点面を配置し、そこにはアルブミンを含む画像のすべての視覚的な手がかりが含まれている必要があります。対象のキャピラリーループ内の領域を選択し、平均強度の読み取り値をメモします。次に、ボウマン空間内の領域を選択し、平均強度の読み取り値をメモします。これらは、定量のバックグラウンド値として使用されます。アルブミンを含む画像のボウマン空間内の類似領域を選択します。これを少なくとも 2 つの他の領域に対して行い、Bowman 空間内の平均強度の値を取得します。プラズマ強度が最も明るいキャピラリーループを選択し、その周囲に領域を描きます。次に、閾値機能を使用して、循環する血漿内の明るい値を強調表示し、循環する赤血球の暗い縞を避けます。選択したプラズマ空間の平均強度値に注意してください。血液中の因子は血漿蛍光レベルの過小評価を引き起こすだけであるため、血漿の明るい領域を優先的に選択することが重要です。Excelスプレッドシートに値を入力してGSCを計算します(GSCは生のボウマンスペースの差に等しくなります)。強度からバックグラウンドを差し引いたボーマン空間強度を、生の毛細管ループ強度からバックグラウンド毛細管ループ強度を差し引いた差で割った値。ろ過された蛍光アルブミンの取り込みは、主に近位尿細管の初期セグメントで発生します。Sの1つは、このパネルは、最初のテキサスレッドRSAボーラスの注入の約20分後にミュンヘンのWistarプロンプターラットから採取された糸球体とSの1つのセグメントの断面を示しています。ボウマン空間の開口部と赤のアルブミンの熱心な取り込みは、Sの1つのセグメントに示されています。このパネルは、同じデータセットの浅い 20 ミクロンの 3D 投影を示しており、ここに示されているのは、注入後約 60 分で撮影された低電力投影です。これらの画像は、生体内顕微鏡法が濾過後の注入材料の運命を視覚化できることを示しています ある程度裏付け、ここに示されている観察された濾過係数は、表面糸球体から撮影された画像です。このパネルは背景画像であり、この画像はテキサスレッドラット血清アルブミンの注入後約12分で撮影されました。これらの 2 つのパネルは疑似カラーで描画されます。ボウマンの空間に描かれた3つの小さな関心領域を使用して、ろ過障壁を越えて移動した蛍光アルブミンの平均強度を計算します。個々の領域の平均強度値は、領域統計の表示ダイアログボックス内の強調表示された領域に報告されました。この個々の糸球体について導出されたアルブミンのGSC値は0.0111で、給餌状態のとき、このミュンヘンの星型ラットの系統の範囲内に収まります。この手順に続いて、量的および定性的分析などの他の方法を他の腎臓構造に対して実施して、尿路空間への濾過後の高分子の最終的な輸送などの追加の質問に答えることができるその開発後。この技術により、腎臓生理学の研究者は、動的な生理学的および病態生理学的プロセスを一度だけでなく、縦断的に探求することができました。時間が経つにつれて、それはそうでした。

quantifying-glomerular-permeability-fluorescent-macromolecules-using

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

このビデオでは、2光子媒介マイクロパンクチャー技術を使用して、マウス糸球体からの流体吸引を紹介しています。この技術は、生きたマウスの糸球体へのアクセスを提供し、腎臓の生理学に関する洞察を得るのに役立ちます。...

マウス糸球体からの体液吸引:2光子媒介マイクロパンクチャーを用いたマウスからの糸球体液吸引法

糸球体濾過率（GFR）の測定は、腎機能の評価のための金本位である。ここでは、二相指数関数的減衰モデルで血漿およびGFRの計算に単一のボーラス注射、フルオレセインイソチオシアネートの判定（FITC）-イヌリンを使用して、意識のあるマウスでGFRを決定することができる高スループット方法を説明する。...

意識マウスにおける糸球体濾過率の測定のためのハイスループット法

孤立した血液灌流肺準備が肺表面上の微小血管ネットワークを可視化することが実現可能になります。ここでは、リアルタイムの蛍光画像を用いて単離された肺における単一微小血管の透過性を定量化するためのアプローチを記載する。...

単離された血液灌流ラットの肺の準備にシングル微小血管透過性を定量化する

ターゲット特定プローブなど各種疾患 (例えば炎症、感染、腫瘍) におけるタンパク質発現の分子機構を解析するための革新的なツールを表します。本研究では F4/80...

検出とマクロファージによるマウス腸管炎症の定量化のための蛍光を介したトモグラフィー

血液脳関門の機能障害の動物モデルに適用可能な灌流が続く蛍光トレーサーの腹腔内注入によるマウス脳血管透過性アッセイをご紹介します。1 逸見脳は、透水性の定量的評価と可視化トレーサー/染色の他に使用されます。10 匹のマウスに 5-6...

生体内で血液脳関門透過性アッセイを用いたマウス蛍光トレーサーに分類

このプロトコルでは、糸球体疾患のマウス ・...

糸球体疾患のマウス ・ モデルにおける腎機能の評価

腎生理の 2 の基礎的な技法を組み合わせることボウマンのマウスの尿中領域内でマイクロ ピペットを配置する 2 光子顕微鏡の使用を提案します。2...

2 光子顕微鏡による促進マウス Bowman 腔のそれによって

ここで経皮 GFR モニターを使用してマウスを自由に移動して、意識し、糸球体濾過率 (GFR)...

マウスにおける糸球体濾過率の経皮吸収測定

ここでは、高感度で非放射性トレーサーを用いてマウスの糸球体透過性を試験するプロトコルを提示する。この方法は、小さな尿量で反復的な尿分析を可能にします。...

フルオレセインイソチオシアネート-ポリスクロースを用いたマウスにおける糸球透過性の高感度測定 70

ここでは、表面糸球体を有するミュンヘンWistar...

2光子顕微鏡を使用して、糸球体プロセスに対する慢性片側尿管閉塞の影響を定量化

この研究は、CUBIC透明マウス腎臓からの糸球体を標識および分析するための、使いやすく完全でシンプルな一連の方法を提示します。糸球体数や体積などのデータは、フルオレセインイソチオシアネート(FITC)-デキストラン、ライトシート蛍光顕微鏡(LSFM)、または一般的な共焦点顕微鏡とImarisなどのソフトウェアを使用して簡単かつ確実に取得できます。...

マウス糸球体の標識と分析のための効率的で迅速な方法

学ぶ2光子顕微鏡を用いた糸球体透過性の定量化法。ミュンヘンWistar系ラットで蛍光高分子の腎臓濾過を可視化し、生体内で濾過係数を測定する技術を解説します。

ミュンヘンWistar系ラットにおける2光子顕微鏡を用いた蛍光高分子の糸球体透過性を定量化

さらに動画を探す