Name: マイクロスケール熱泳動によって結合親和性の決定のタンパク質精製·フリー法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 22 s
Description: 学ぶマイクロスケール熱泳動法によるタンパク質精製不要の結合親和性測定。GFP融合タンパク質を用いて細胞溶解液から直接リガンド相互作用を解析し、生化学的相互作用の理解を深める。

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からとフェデラル·ファンド; NCIとCalidrisピュー間共同研究契約、; OTに米国癌協会助成IRG 97-152-17この作品は、部分的にNIH、国立がん研究所、がん研究センターの学内研究プログラムによってサポートされていました契約HHSN26120080001E下の国立がん研究所、NIH、。

1。細胞溶解物の準備このプロトコルは、任意のGFP融合タンパク質を発現する接着細胞を対象としています。必要とされる細胞数は、低タンパク質発現のレベルに応じて、最大20×10 6細胞〜6 10とで変えることができる。例えば、HEK細胞を過剰発現するGFP-STAT3の溶解物を、1mlの溶解緩衝液で70％コンフルエントに近い10 T75フラスコ中で培養した細胞を処理することによって調製した。しかし、この溶解物MST実験に蛍光の最適なレベルを提供するために150倍に希釈しなければならなかった。細胞溶解プロトコルは、調査中の性質と蛋白質の細胞内局在化に強く依存する。洗剤を使用しているため、タンパク質の不安定性の望ましくない場合は、超音波処理は、以下に説明するように、最良の選択かもしれません。別の添加剤は、タンパク質の修飾反応を防ぐために、溶解緩衝液に添加することができる。EDTAは、リン酸化を防ぎ、バナジン酸ナトリウムので、チロシンプロテインホスファターゼの阻害diumフッ化セリン/スレオニンホスファターゼの阻害剤である。 <ol><li>溶解バッファーを準備します。以下の組成がうまくための簡単​​に抽出する細胞質タンパク質：25mMトリス塩酸、pHは8.0、および2mM AEBSF、0.3μMアプロチニン、130μMのベスタチン、から構成される（シグマアルドリッチP2714、100倍希釈したプロテアーゼ阻害剤カクテル1mMのEDTA、14μME-64、1μMロイペプチン）。また、少ない可溶性タンパク質、1つは、プロテアーゼ阻害剤カクテルと非変性洗剤と商業RIPA緩衝液を使用することができます。氷の上のバッファに保管してください。 </li><li>氷冷PBSでT75フラスコ当たりバッファー10mlのを使って簡単に細胞を洗浄する。 5分間氷上で細胞を維持する、または細胞がフラスコから取り外し始めるまで。必要に応じてデタッチするには、セルスクレーパーで細胞をこすり取る。 </li><li> 10ミリリットルの氷冷PBSと予冷14ミリリットルの丸底遠心管への転送中に再懸濁した細胞。 </li><li> 4で400-600×gで遠心分離により細胞をペレット化℃で5分間。私はこの時点でいくつかのフラスコから細胞を組み合わせるfは必要としていました。 </li><li>あらかじめ冷やした1.5​​ミリリットルエッペンドルフチュー​​ブにサスペンションを転送、氷冷溶解バッファー200μlのPBS清とペレットを再懸濁しを削除します。 </li><li>局所的な過熱を最小限に抑えるために氷の上に細胞を保管してください。あらかじめ冷やした先端2〜3ミリメートルを使用して30％の振幅で超音波処理の3倍の10秒パルスで細胞を溶解。泡立ち最小限に抑えるために表面下先端を保管してください。代わりに30分間氷上で洗剤含有バッファとインキュベートを使用している場合、この手順を省略します。 </li><li>生理的塩濃度（100mMのNaCl）5 MのNaClを使用して必要に応じて格納するための溶解液ソリューションを修正してください。 </li><li> 10分間4℃で約26,000×gで遠心分離によって溶解物を収集します。 </li><li> 1滴（通常プレ希釈ライセート300μlの周り）に必要な溶解液の最適な溶解液の希釈（以下のセクション3に記載）と量を決定します。 </li><li>調査中のタンパク質（-80°C、ほとんどの場合）に適した温度でアリコートライセートや店舗。 </li> &lt;/ OL&gt; 2。 MSTバッファの選択と準備<ol><li>タンパク質 - リガンド相互作用は、緩衝液条件に依存するので、MST緩衝液組成物は、特定のシステムの特性に基づいて選択される。それは、少なくとも2つの異なるバッファをテストすることが一般に有利である。 </li><li> 2 5倍MSTバッファを準備します。とトリス塩酸（250mMのトリス塩酸、pH7.4の; 750のNaCl、50 HEPES（; 25のMgCl 2;; 500mMのNaClを0.25％NP-40 250のHEPES、pH7.4）に：我々は、これらの2つの組成物との良好な経験を持っていたのMgCl 2、0.05％のTween-20）。 BSAの添加（最終結合混合物中の5％）、プラスチックチューブやガラスキャピラリーへのタンパク質の付着を防ぐことができます。のNaN 3（0.5ミリモル）も、微生物の増殖を防ぐために含めることができる。 </li></ol> 3。最適な溶解物の希釈の決定<ol><li> MST機器に波長λ= 470nmのLEDで励起源を選択します。 </li><li> CEと毛細血管を読み込む2に希釈し、MSTバッファーで10倍抽出う。 </li><li> MST機器の制御ソフトウェアの &quot;毛細血管を検索&quot;操作を実行します。希釈溶解物中の最適な蛍光範囲は400〜1,500蛍光単位からのものである。 </li></ol> 4。最適なリガンド濃度範囲の決定<ol><li>リガンドの最高濃度は、予想される解離定数よりも少なくとも20倍以上である必要があります。 </li><li>最低のリガンド濃度は、蛍光タンパク質のモル濃度よりも低くなければなりません。 </li></ol>リガンド濃度範囲推定のためNanoTemperテクノロジーズ集中ファインダーツールを参照してください。 5。細胞可溶化物とリガンド希釈の調製<ol><li>氷の上の0.5ml LoBind遠心管の必要な番号（通常は10-16）と管ラックを置きます。各チューブの底にMSTバッファのピペットで25μlの。最初のタブにリガンドストック溶液25μlをE（＃1、リガンド最高濃度）とチューブの残りの部分を使用したリガンドの連続2倍希釈を行う。氷の上のリガンドサンプルでラックに保管してください。 </li><li>雪解けセルは氷の上でゆっくりと溶解物。 </li><li>結合反応における蛍光標的タンパク質の最適なレベルを提供するために、MST緩衝液で細胞溶解物を希釈する。最終タンパク質濃度が予想されるK D以下に近くなければならない。これは、最終溶液中の蛍光カウント必要な数が得られるように調整されるべきである。溶解物中のGFP-STAT3の濃度を決定するために、器具は、フルオレセインの助けを借りて較正した。溶解物中のGFPのモル濃度は、フルオレセインおよびEGFPの量子収率は、それぞれ0.85および0.61の比を用いて決定した。15 </li></ol> 6。マイクロスケール熱泳動バインディング研究<ol><li> MST機器でλ= 470nmでのLED励起源を選択します。 </li><li> Tにおける場所の0.5ml LoBindチューブリガンド連続希釈サンプルとチューブの向かいUBEラック。慎重に各チューブの底に細胞溶解液15μLを加える。サンプルの損失を回避するために、管壁に触れないようにしてください。 </li><li>細胞溶解物に対応するチューブに最高濃度（＃1）＃1とリガンドのサンプル15μLを加える。よく混ぜ、ピペットチップを変更してください。全く配位子を含むべきではありません最後のを除いて、チューブの残りの部分と、この手順を繰り返します。 </li><li>最後のチューブにMSTバッファー15μLを加え、よく混ぜる。 </li><li>中心に向かって解決策を移動し、位置＃1（トレイ開口部に最も近い位置）にキャピラリートレイにキャピラリーを配置し、それを傾け、チューブ＃1から結合混合物を用いて約2/3最初のキャピラリーを埋める。残り毛細血管でこの手順を繰り返します。キャピラリー両端はもはや実験のためのワックスで差し込むことができます。 </li><li> MST機器内部にトレイを置き、機器のドアを閉める。 </li><li> &quot;毛細血管を検索&quot;を実行コマンドでは、楽器が毛細血管の正確な位置を見つけて、サンプルの蛍光を測定できるようにする。 </li><li>蛍光信号強度に基づいて、400-1,500単位間隔にそれを持って来るために電源LEDを（10から100パーセントから）を調整します。 </li><li>熱泳動実験を実行するための &quot;スタート&quot;ボタンをクリックします。複数のIRレーザーパワーは、特定のシステムのための最適な温度勾配を見つけるために実験のために選択することができる。測定の再現性を確保するための毛細血管の同じセットの実行2-3からデータを収集する。それは16毛細血管の1セットを実行するために10-12分かかります。 </li></ol> 7。マイクロスケール熱泳動データ解析<ol><li>解析ソフトウェアを開きます。 </li><li>プロジェクトフォルダを読み込みます。登場情報ランビューアで選択し、特定のIRレーザパワー熱泳動曲線で収集。このようなIRレーザーパワーなど、さまざまな条件の下で収集されたすべての熱泳動トレースを開くためのオプションがあり、pは、LEDとower、温度、濃度など 。一度、それらをオンとオフを切り替えることにより、解析のために、任意の曲線を選択すると、（実験の名前をクリックします）。 </li><li>評価点グラフ]ウィンドウで、[T-ジャンプと熱泳動または熱泳動を選択します。青と​​赤の線が正しく配置されていることを確認。標準偏差と平均点を取得するには、選択し、 &quot;平均を使用する&quot;、または別の実行のために、 &quot;区別が実行されます&quot;。 </li><li>解離定数近似をプロットするには、標識分子の濃度値（フィットウィンドウメニューの &quot;濃度&quot;正方形を確認）を入力して修正し、 &quot;平均を使用する&quot;を選択し、曲線にフィット。その標準偏差とのK D値は、独立した情報のポップアップウィンドウに表示されます。ヒルメソッドを使用してフィット感をプロットするには、 &quot;平均&quot;ヒル方法を選択し、カーブにフィット。その標準偏差との親和性EC 50値は、この場合、示されている。時飽和K Dまたはヒル&quot;枠&quot;の特徴を利用することもできる束縛状態に達していない。 </li><li>テキストフ​​ァイル内の平均近似データを保存して、Excelに転送します。 </li><li>非標識（滴定）分子の濃度の関数として（下記化学式参照）を結合したプロットF ノルム （正規化された蛍光）、ΔF ノルム （正規化蛍光の差が異なる実験が比較される場合）、または画分。 </li></ol>サーム（C）は、結合していないが、バインドされていない状態のために熱泳動濃度Cを測定し熱泳動です分数バウンド（複合体における分子の割合）=（サーム（C）非結合）/（バウンド非結合）、（分子があるとき完全に束縛状態に対する熱泳動ではない複雑な）、およびバインドされています。

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著者は、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。本書の内容は、必ずしも、保健社会福祉省の見解あるいは政策を反映していない、また、商号、商用製品、または組織の言及は、米国政府による承認を意味するものではありません。

タンパク質の発現および精製は、しかし、ほとんどの現在使用されている方法により相互作用&#39;K Dを決定するために必要な労力を要しかつ高価な工程である。 MSTの適用が大幅に相互作用の定量的な特性評価を簡素化し、加速するため、タンパク質精製を避けることができます。このような膜タンパク質及び転写因子などの困難な発現及び精製タンパク質の場合に特に顕著な利点を提示する。 MSTの主要な制限と要件は、緑色蛍光タンパク質との融合体としてタンパク質を発現する能力である。しかし、GFP-融合したヒトおよびマウスタンパク質の大部分を発現させるための構築物は、市販されている。 GFP融合タンパク質はまた、広くトラフィッキング及び分解研究のために使用されているので、MST試験と組み合わせて &quot;ダブル義務&quot;を果たすことができる。 タンパク質ウェブの必要性の欠如に加えてK D判定の従来の方法と比較した場合、すべての試薬 ​​およびバッファー組成のわずかな変化に鈍...

分子間相互作用の親和性の定量的特性評価は、生物医学研究の多くの分野において重要である。結合定数（K D）解離だけでなく、創薬に不可欠であるだけでなく、任意の生物学的システム内の任意のバイナリの相互作用の特性評価に重要なパラメータである。このような免疫沈降および酵母ツーハイブリッドスクリーニングなどのタンパク質-タンパク質相互作用の検出のために使用生化学的方法では、親和性は、この特定の複合体が、生体内で与えられた条件の下に存在するかどうかを定義しながら、それらの相互作用は、どのように締まっている私たちを上に通知していない。創薬プロセスにおいては、結合アッセイの開発が必要と頻繁に最も時間のかかる工程の一つである。 K D判定の最も一般的に使用される方法は、蛍光偏光、1表面プラズモン共鳴（SPR）技術、2放射性リガンド結合、3等温滴定熱量測定、4 equilibriを含むウム透析（ED）、5限外濾過（UF）、5及び超遠心分離（UC）6は、それらのすべては、標的タンパク質の精製かなりの量を必要とする。マイクロスケール熱泳動（MST）は、微視的温度勾配​​中の分子の指示動きを検出急速に発展方式です。温度勾配に沿った移動の相対的な変化で生体分子結果の水和殻のいずれかに変化する。7 MSTが結合親和性を決定するために使用され、蛍光標識したタンパク質または標的タンパク質の蛍光リガンドに結合するリガンドの研究に適用されている。8、 9 MSTは表面への固定化の必要性（固定フリー技術）せずに直接溶液中での相互作用の測定が可能。変化の大きさが大きく、システムによって異なるが、実質的に、任意の結合は、MST信号の変化を伴っている。 MSTによる分子の動きの検出のために、彼らが蛍光を発するしなければならないNT。このメソッドの主な制限は、利点に変換することができます。タンパク質は、任意のシステムにおけるGFP融合体として発現される場合、それは唯一の蛍光分子となり、従って、細胞溶解物又は無細胞発現系から単離することなく研究することができる。最小限のアーティファクトとの結合条件を可能に細胞溶解物の生成は、大きな課題です。ここでは、多くの可溶性および膜タンパク質を使用することができ、細胞溶解物の準備とMST実験のプロトコルを記述します。 STATタンパク質は、細胞外シグナルに応答してチロシンリン酸化により活性化細胞転写因子の潜在していると免疫、造血、炎症、および開発を含む多くの生物学的過程に関与している。哺乳類で10、STATファミリーは、STAT 1、2、3、4から成り、5A、5B、及び図6。すべてのアクティブ統計をIFN-γ活性化するシーケンスので、GASモチーフと呼ばれる、同じDNA配列に結合することが知られている。しかし、transcriSTATは異なるのptional効果は非常に異なっています。関与にもかかわらず、11種類のDNA配列と17,000出版、STAT相互作用のK Dにわたってもたらす多くの病理学的プロセスと広範な研究で決定されていない。ガスのみモチーフの変種に異なるSTATはの相対親和性が特徴づけられている。タンパク質の発現と精製11難しさは、STATS &#39;DNA結合選択性の特性評価における主要な障害である。研究の大半はTyrのリン酸化転写因子への代名詞となった&quot;活性化&quot; STATは、転写の調節に非リン酸化STATは（U-STATS）の役割の役割に焦点を当ててきたが、急速に浮上している12は、しかし、これらのメカニズムは十分に理解され、それがU-STATSは、実際に他の転写因子との相互作用を介してDNAまたは行為にバインドするかどうかは不明であったされています。我々は最近、U-STAT3がDNA sequenに結合することができることが示されているさらに高い親和性を有するガスモチーフ異なるCES 13は、発見は、この重要なタンパク質の生物学的機能の理解のために重要な意味を持っています。我々はガスにし、オリゴヌクレオチドS +100（ 図4）豊富なAT STAT3の相対的な親和性を決定するために、マイクロ熱泳動を適用している。陰性対照として用いた関連転写因子、GFP-STAT1とほぼ同一のプロトコルが異なるSTAT3リガンド、リポペプチド阻害剤の結合のためのK Dを決定するために使用されている。14結合はこのような相互作用の選択性を確認した検出することができなかった。 14

<table><tbody><tr><td>RIPAバッファー</td><td>ミリポア</td><td>20-188</td><td>他のメーカーのバッファーも同様に機能します</td></tr><tr><td>プロテアーゼ阻害剤カクテル</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P2714</td><td></td></tr><tr><td>モノリス NT.115</td><td>NanoTemper Technologies GmbH</td><td>G008</td><td></td></tr><tr><td>モノリス NT.115 キャピラリートレイ</td><td>NanoTemper Technologies GmbH</td><td>T001</td><td></td></tr><tr><td>モノリス NT.115 標準処理キャピラリー</td><td>NanoTemper Technologies GmbH</td><td>K002</td><td></td></tr><tr><td>NT制御ソフトウェア</td><td>NanoTemper Technologies GmbH</td><td>2.0.2.29</td><td></td></tr><tr><td>NT分析ソフトウェア</td><td>NanoTemper Technologies GmbH</td><td>1.4.27</td><td></td></tr><tr><td>卓上型冷蔵遠心分離機</td><td>Eppendorf</td><td>5417R</td><td>その他のマイクロチューブ冷蔵遠心分離機 </td></tr><tr><td>Protein LoBind Tube 0.5 ml</td><td>エッペンドルフ</td><td>22431064</td><td></td></tr></tbody></table>

マイクロスケール熱泳動によって結合親和性の決定のタンパク質精製·フリー法

Protein Purification-free Method of Binding Affinity Determination by Microscale Thermophoresis

タンパク質相互作用の定量的特性評価、特に生命科学、創薬の実質的にすべての分野で必要不可欠である。 K D判定の現在利用可能な方法のほとんどは、時間がかかり、高価である生成うち目的のタンパク質を精製へのアクセスを必要とする。我々は、細胞溶解物から標的タンパク質の精製をせずにマイクロ熱泳動（MST）による結合親和性の決定を可能にするプロトコルを開発した。この方法は、非変性条件下でのGFP融合タンパク質および細胞溶解の過剰発現を伴う。 STAT3-GFPへの法の適用は、一過性に初めて異なる配列を有するオリゴヌクレオチドによく研究転写因子の親和性を決定するために許可されたHEK293細胞で発現。プロトコルは、簡単であり、小分子、ペプチド、DNA、RNAとタンパク質の相互作用を研究するための、アプリケーションの様々な構造を有することができ、及びproteins。

オリゴヌクレオチドに結合非リン酸化STAT3タンパク質の親和性を測定する。 STAT3-GFPを発現するHEK293細胞を、DNA結合アッセイのために蛍光標識されたSTAT3の供給源として使用した。細胞溶解物をRIPA緩衝液（20×10 6細胞/ ml）を用いて調製した。結合研究のために、溶解物を結合反応（約20nM）の蛍光タンパク質の最適なレベルを提供するようにMST-DNA結合緩衝液で150倍希釈した。非トランスフェクトHEK293細胞であっても、非希釈した溶解物の非検出可能であることが判明したバックグラウンド蛍光を評価するために使用されている。しかしながら、バックグラウンド蛍光は、他の発現系においてより顕著にすることができるので、監視されなければならない。リガンド結合せずに11混合物および溶解物からなる試料の滴定一連調製されている。各サンプルは、希釈細胞溶解液15μlのとconcentratを変えるのオリゴ液15μlのが含まれていたイオン。 50mMのNaCl;; 2.5のMgCl 2、および0.02...

マイクロ熱泳動（MST）が広く細胞溶解物から標的タンパク質を精製することなく結合親和性の決定のために用いることができる。プロトコルは、GFP融合タンパク質、非変性条件下での細胞溶解、及びリガンドの濃度を変化させるの存在下で、MST信号の検出の過剰発現を伴う。

Quantitative characterization of protein  interactions is essential in practically any field of life sciences,  particularly drug discovery. Most of ...

この手順の全体的な目的は、細胞溶解物からタンパク質を精製することなく、タンパク質とリガンドの相互作用における結合親和性を決定することです。これは、まず任意の接着性細胞株で目的のGFP融合タンパク質を発現させることで達成されます。細胞溶解物の調製とリガンドの希釈後、細胞溶解物とリガンドの混合液を調製し、キャピラリーに充填します。次に、さまざまなリガンド濃度におけるGFP融合タンパク質の熱泳動性が測定されます。最終ステップは、マイクロスケール熱泳動（MST）測定のデータ解析です。最終的に、マイクロスケール熱泳動を用いて、GFP融合タンパク質とさまざまなリガンドとの相互作用における結合親和性を決定します。滴定法、カロリメトリー、または表面プラズモン共鳴などの既存の手法に対するこの技術の主な利点は、タンパク質の精製を回避できることであり、これによりバイナリー相互作用の定量的特性評価を大幅に簡略化し、加速させることができる点にあります。この方法は、膜タンパク質や転写因子など、発現および精製が困難なタンパク質を扱う際に大きな利点をもたらします。マイクロスケール熱泳動法の最大の利点の一つは、多様なバッファーで動作し、システム内に界面活性剤やミセルが存在していても許容されることです。本技術のデモンストレーションを行うのは、私の研究室の生物学者であるKaren Stefkaです。まず、T75フラスコあたり10 mLのバッファーを用い、氷冷したリン酸緩衝生理食塩水（PBS）で細胞を短時間洗浄します。細胞を氷上で5分間、またはフラスコから剥離し始めるまで保持します。必要に応じて、セルスクレーパーで細胞を掻き取って剥離させます。氷冷したPBS 10 millilitersで細胞を再懸濁し、あらかじめ冷却した14 milliliterのラウンドボトム遠心チューブに移します。400〜600 G、4 °Cで5分間遠心分離し、細胞をペレット化します。上清を除去し、ペレットを200 µLの氷冷した溶解バッファーに再懸濁します。細胞質タンパク質を抽出するため、懸濁液をあらかじめ冷却した1.5 mLエッペンドルフチューブに移します。局所的な過熱を最小限に抑えるため、細胞を氷上に置き、30%の振幅で10秒間の超音波処理を3回行い、細胞を溶解します。2〜3 mmの冷却済みチップを使用し、泡立ちを最小限に抑えるためにチップの先端を液面下に保ちます。界面活性剤を含むバッファーを使用する場合はこのステップを省略し、氷上で30分間インキュベートします。代わりに、必要に応じて5 M塩化ナトリウムストック溶液を用いて、溶解液の生理学的塩濃度を100 mM塩化ナトリウムに調整します。最後に、約25,000 G、4 °Cで10分間遠心分離し、溶解液を回収します。MST装置で、波長が470 nmの発光ダイオード（LED）励起光源を選択します。MSTバッファーで2倍および10倍に希釈した細胞抽出液をキャピラリーに充填し、MST装置にセットします。MST装置のコントロールソフトウェアで「find capillaries」操作を実行します。希釈ライセートにおける最適な蛍光強度の範囲は、400〜1500 fluorescence unitsです。テキストプロトコルに従い、最適なリガンド濃度範囲の決定に進みます。必要数の0.5 milliliter低吸着遠心チューブをセットしたチューブラックを氷上に置き、各チューブの底に25 microlitersのMST bufferを分注します。最初のチューブに25 microlitersのリガンドストック溶液を加え、残りのチューブを用いてリガンドの2倍連続希釈を行います。リガンド試料が入ったラックは氷上で保持してください。結合反応において蛍光標的タンパク質の最適なレベルが得られるように、細胞溶解液の希釈倍率を算出します。最終的なタンパク質濃度は、予想される結合解離定数に近い値またはそれ以下である必要があり、必要な蛍光カウント数を得られるように調整してください。最終溶液にする際、MST Bufferを用いて細胞溶解液を希釈します。リガンド連続希釈サンプルが入ったチューブの向かい側のチューブラックに、0.5 milliliterのローバインドチューブを配置します。各チューブの底に、細胞溶解液を15 microlitersずつ慎重に加えます。サンプルの損失を防ぐため、チューブの壁面に触れないようにしてください。最高濃度のリガンド試料を15 µL、対応するチューブ（細胞溶解液を含むチューブ1）に加えます。十分に混ぜ合わせ、ピペットチップを交換してください。リガンドを含まない最後のチューブを除き、残りのチューブでこの手順を繰り返します。最後のチューブに15 µLのMSTバッファーを加えて混合します。1番目のキャピラリーの約3分の2まで、チューブ1の結合混合液で満たします。傾けて溶液を中心方向に移動させ、キャピラリーをキャピラリートレイの1番の位置に配置します。残りのキャピラリーについてもこの手順を繰り返します。実験時間が長い場合は、キャピラリーの端をワックスで封止することができます。トレイをMST装置内にセットし、装置のドアを閉じます。次に、波長470 nanometersのLED励起光源を選択します。MST装置で「find capillaries」コマンドを実行し、装置にキャピラリーの正確な位置を特定させ、蛍光信号強度に基づいてサンプルの蛍光を測定します。LED出力を400から1500ユニットの範囲に調整します。開始ボタンをクリックして、熱耐性実験（Thermo Resis Experiment）を実行してください。実験に使用する赤外線レーザー出力は、複数選択することが可能です。特定のシステムに最適な温度勾配を決定するために、16本のキャピラリー1セットの走行に10〜12分かかります。測定の再現性を確保するため、同一のキャピラリーセットを用いて2〜3回の走行データを収集してください。データ解析を開始するには、解析ソフトウェアを開き、プロジェクトフォルダをロードします。表示された情報ランビューアにおいて、特定のIRレーザー出力で収集されたサーモレティック曲線を選択します。さまざまな条件下で収集されたすべてのサーモレティックトレースを一度に開き、その後、オン・オフを切り替えることで解析に使用する曲線を選択できるオプションがありました。評価ポイントのグラフウィンドウで、Tジャンプの青色線および赤色線で示されるサーモレシスまたはサーモフォレシスを選択します。ソフトウェアによる解析のために、手動で選択する実験曲線の2つの領域を定義します。Thermo Resisの最大変化が得られるよう、青線と赤線が正しく配置されていることを確認してください。標準偏差を伴う平均点を得るには、「use average（平均を使用）」を選択するか、個別のランについては「distinguish runs（ランを区別）」を選択してください。解離定数のフィッティングをプロットするには、[use average]を選択し、ラベル付けされた分子の濃度値を入力して固定し、曲線をフィッティングさせます。結合解離定数またはKD値とその標準偏差が、別の情報ポップアップウィンドウに表示されます。平均フィッティングデータをテキストファイルに保存し、Excelに転送してください。Heck。STAT 3G FPを発現させた2 9 3細胞を、蛍光標識したstat threeの供給源として使用した。AのDNA結合アッセイにおいて、高電荷のオリゴヌクレオチドの結合により、STAT threeの移動度に顕著な変化が生じた。温度勾配において。Thermo retic signalをオリゴヌクレオチド濃度の関数としてプロットした。各データ点は3回の測定値の平均を表している。Nano temporal analysisソフトウェアを用いてフィッティングを行い、見かけのKD値を決定した。見かけの解離定数は、gasモチーフへの結合で37.9 ± 1.0 µM、ATリッチなオリゴヌクレオチドs+100への結合で23.3 ± 0.6 µMであった。驚くべきことに、s+100配列はgasよりもわずかに強い結合を示した。3回の測定において、AからGへの置換により、s+100変異体1の親和性は劇的に低下した。S plus 100 変異体 2 では結合が検出されなかったため、STAT three の S plus 100 への結合が配列選択的であることが確認されました。この手法を習得すれば、適切に実施することで 2 時間以内に完了させることができます。本手順を行う際は、膜タンパク質の抽出における最適条件はタンパク質ごとに異なり、通常は最適化が必要であることを留意してください。このビデオを視聴することで、細胞溶解物からタンパク質を精製することなく、リガンドに対するタンパク質の結合親和性を決定する方法について十分な理解が得られるはずです。

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マイクロスケール熱泳動によって結合親和性の決定のタンパク質精製·フリー法

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