Name: のための簡単なシート光顕微鏡を設定するトトでイメージングの C.虫開発 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-05-05T16:25:00.000+00:00
Duration: 8 min 37 s
Description: 学ぶライトシート顕微鏡の構築とC. elegans胚の生体内イメージング手法。高速・低光毒性で蛍光タンパク質の動態を3Dタイムラプスで観察し、細胞分裂と紡錘体の可視化が可能です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

我々は、ソフトウェア開発と議論のためのジェレミーCapouladeために特定のオリビエ​​·ブランで、Lenneとベルトランラボのすべてのメンバーに感謝します。我々はまた、技術的なサポートのためにPI​​CsL-IBDMイメージング施設、特にクロード·モレッティとブライスDetailleurに感謝します。 この作品はCNRSから（P.-FLおよびVBに）のATIP補助金によって支えられ、Labexは（P.-FLおよびVBに）補助金を通知し、（VBに）サノフィ·アベンティスからの助成金。私たちは、（「INVESTISSEMENTS D&#39;アベニール」と呼んで、ANR-10-INSB-04から01）アジャン国立·デ·ラ·ルシェルシュでサポートされているフランス·バイオイメージングインフラストラクチャを認めている。

1。シート光と検出経路の設定 図1は、光学セットアップの一般的なスキームを提供します。 <ol><li>光学テーブル上の顕微鏡とレーザーを配置し、固定します。 </li><li>レーザーの488 nmの、561 nmおよび対応するダイクロイックミラーを持つ405 nmのを兼ね備えています。ダイクロイックミラーの後、レーザーが正確に共同揃えなければならない。レーザ波長は、ダイクロイックミラー、及び光学フィルタの選択は、実験で使用される特定の蛍光標識の吸収スペクトルから決定されることに留意されたい。 </li><li>音響光学チューナブルフィルタ（AOTF）を配置します。 AOTFの周波数とパワーを調整するためにサプライヤが提供するテストシートを使用してください。よく揃うと、レーザパワーの約90％はパワーメータにより測定される最大同調で送信される。 AOTFを不要にする可能性が、いくつかのレーザは、完全にソフトウェアによって制御することができることに留意されたい。 </li><li>プレイスと修正望遠鏡。望遠鏡は、照明対物レンズの後開口部の直径よりも等しいか大きい幅にビームを拡大つのレンズから構成されていることに留意されたい。最小焦点距離を持つレンズは最初に来るべきです。 </li><li>場所、近いシリンドリカルレンズの背面開口部に上方向の光路をもたらす潜望鏡を整列させ、固定します。潜望鏡の2ミラーは、その長軸が完全に展開されたビームを反射するために、ミラーの傾きに敷設されているような方法で実装されていることに注意してください。 </li><li>次の潜望鏡出口にシリンドリカルレンズを配置します。シリンドリカルレンズが一方向にビームを集束し、それによって光シートを形成し、他の方向にコリメート残すことに留意されたい。 </li><li>照明対物レンズを用いて得られる光シートに再び焦点を合わせる。照明対物レンズの像焦点が検出目的のオブジェクト焦点と一致する必要があることに注意してください。ビームを投影長距離の画面（例えば壁）に。光シートの画面シャープな輪郭に取得するために、照射ビーム軸に沿って照明の目的を移動します。 </li><li>顕微鏡（キューブ）内に貯留場所にクワッドライン（405/488/561/638）発光フィルタを配置します。 </li><li>顕微鏡出力ポートでEMCCDカメラを配置します。 </li><li>顕微鏡ステージに掘削穴にネジで顕微鏡のステージ上の最初の手動の平行移動ステージを固定します。キュベットは、検出対物レンズの下にセンタリングされるように、並進ステージのエッジが、離れて顕微鏡ステージの中心から約2cmに配置しなければならないことに留意されたい。 </li><li>最初の1に第2の手動移動ステージを固定します。 2ステージの方向は（XとYの変換）に対して垂直でなければならない。 </li><li>前の2つのステージの上部にZピエゾステージを固定します。電動ステージではなく、圧電ステージの使用できることに注意してください。 </li><li>キュベットholdeを修正しました。rはステージの上部にある（ 図2参照）。キュベットは、このように互いに垂直である、照明経路及び検出経路の交点に配置される。 </li></ol> 2。シート光を確認する<ol><li>蛍光性溶液でガラスキュベットに充填し、二つの光路の交差点に試料ホルダー上に置きます。シート光は、このように表示されている。これは、水平にあり、対称/検出対物レンズに対して中心。 </li><li>シリンドリカルレンズを取り外し、光シートの厚さを測定するための画像を取得する。光シートの厚さは照明対物レンズ（NA = 0.3で約3〜4程度）の開口数（NA）に依存していることに注意してください。与えられたレンズには、光シートの厚みがスリットで逆アパーチャに入射するビームのサイズを減少させることによって増加させることができることに留意されたい。蛍光ミクロスフェアが斧を測定するために使用できることに注意してください顕微鏡のIALと横の解像度。 </li><li>実験を開始する前に、シリンドリカルレンズを戻す。 </li></ol> 3℃の取り付け虫胚 以下のステップを図3に描かれている。 <ol><li> 10×20×1mmのガラススライドの一部をカットするダイヤモンドマーキングペンを使用してください。 </li><li>水中の5％のバクト寒天を準備し、それを沸騰し、60℃でヒーターブロックでそれを維持する</li><li>スライドの切断片の片面にポリ-L-リジンの50μl加え、それを乾燥させます。 </li><li>ベンチで顕微鏡スライドを配置し、それを修正する。 </li><li>固定スライドとスライドの切断片を並置し、上部の溶融寒天の一滴を追加します。薄い寒天パッドを得るために、別のきれいな顕微鏡スライドを使用した寒天を絞る。 </li><li>寒天パッドが一番上のスライドを削除する前に乾燥することができます。 </li><li>約3ミリメートルOの過剰を残すために、固定スライドの側面にある寒天パッドをカットF寒天、ゆっくりと一定のスライドを削除します。 </li><li>寒天上のポリ-L-リジンの50μLを追加し、完全に乾燥させます。 </li><li>時計皿にM9培地で妊娠ワームを置く。 </li><li>胚を解放するために、メスと外陰部のレベルでワームをカット。 </li><li>両眼の下で、目的の段階で胚を識別し、マイクロキャピラリーピペットを使用してそれらを集める。 </li><li>スライドの切断片から突出したポリ-L-リジンでコーティングされた寒天の一部に胚を置きます。ただ、次のスライドの国境に胚を置きます。彼らは十分に安定していませんので、寒天の境界に胚を配置しないでください。胚は、ポリ-L-リジン層の上に固執するように優しく、液体を除去します。 </li><li>素早く乾燥を避けるために、胚を合わせます。 </li><li>プラスチックシャーレ中のカットのスライドを置き、ゆっくりとスライドをカバーするM9培地を追加します。 </li><li>卵がまだ寒天上に立ち往生している両眼の下に確認してください。 </李&gt; </ol> Cの 4。録音虫の開発<ol><li>試料ホルダーの前の準備（カットスライド、寒天プラス胚）を固定し、キュベット内に配置します。 図4に、自家製のホルダーを説明し、 図5は、観測コンテキストでキュベットの図を示している。 </li><li>圧電ステージにキュベットを修正します。 </li><li>明視野照明と胚の位置を特定します。 </li><li> AOTF、カメラと圧電ステージを制御するホームメイドのソフトウェアを起動します。例えば细としてそのフリーソフトウェア、なお、使用することもできる。 </li><li>レーザ線と電源（AOTF）を選択します。 </li><li>シリンドリカルレンズと照明レンズを支持3方向ステージを用いて光シートの位置を調整します。最も明るい信号を得るために、横方向（X）に沿ってステージを移動します。目を取得するために、光シートのZ位置、縦位置（Y）を調整対雑音比E最良の信号。光学シート焦点の位置は、光路長差を補正するために、1つの胚から別に調整する必要があり得ることに留意されたい。 </li><li>タイムラプス画像を取得するために、2つの画像、並びに、取得する画像の数、レーザパワーとの間の時間を得るため、露光時間を選択する。 2色取得のために、第二のレーザ線を選択します。二つのカラー画像を連続して取得される。 </li><li> AZスタックを取得するために、また、2つのスライス間の距離、および開始と圧電の位置と終了位置を選択します。 </li></ol>

<ol><li>Huisken, J., Swoger, J., Del Bene, F., Wittbrodt, J., Stelzer, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+sectioning+deep+inside+live+embryos+by+selective+plane+illumination+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Optical sectioning deep inside live embryos by selective plane illumination microscopy.</a> Science. 305, 1007-1009 (2004).</li>
<li>Huisken, J., Stainier, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+plane+illumination+microscopy+techniques+in+developmental+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Selective plane illumination microscopy techniques in developmental biology.</a> Development. 136, 1963-1975 (2009).</li>
<li>Reynaud, E. G., Krzic, U., Greger, K., Stelzer, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light+sheet-based+fluorescence+microscopy%3A+more+dimensions%2C+more+photons%2C+and+less+photodamage%5BTitle%5D)+AND+%22HFSP+J%22%5BJournal%5D)">Light sheet-based fluorescence microscopy: more dimensions, more photons, and less photodamage.</a> HFSP J. 2, 266-275 (2008).</li>
<li>Sulston, J. E., Schierenberg, E., White, J. G., Thomson, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+embryonic+cell+lineage+of+the+nematode+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">The embryonic cell lineage of the nematode Caenorhabditis elegans.</a> Dev Biol. 100, 64-119 (1983).</li>
<li>Hardin, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+embryonic+morphogenesis+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Imaging embryonic morphogenesis in C. elegans.</a> Methods Cell Biol. 106, 377-412 (2011).</li>
<li>Wu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inverted+selective+plane+illumination+microscopy+%28iSPIM%29+enables+coupled+cell+identity+lineaging+and+neurodevelopmental+imaging+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Inverted selective plane illumination microscopy (iSPIM) enables coupled cell identity lineaging and neurodevelopmental imaging in Caenorhabditis elegans.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 17708-17713 (2011).</li>
<li>Giurumescu, C. A., Kang, S., Planchon, T. A., Betzig, E., Bloomekatz, J., Yelon, D., Cosman, P., Chisholm, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+semi-automated+analysis+of+morphogenesis+with+single-cell+resolution+in+complex+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Quantitative semi-automated analysis of morphogenesis with single-cell resolution in complex embryos.</a> Development. 139, 4271-4279 (2012).</li>
<li>Gao, L., Shao, L., Higgins, C. D., Poulton, J. S., Peifer, M., Davidson, M. W., Wu, X. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+Imaging+beyond+the+Diffraction+Limit+of+3D+Dynamics+in+Thickly+Fluorescent+Specimens%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Noninvasive Imaging beyond the Diffraction Limit of 3D Dynamics in Thickly Fluorescent Specimens.</a> Cell. 151, 1370-1385 (2012).</li>
<li>Krzic, U., Gunther, S., Saunders, T. E., Streichan, S. J., Hufnagel, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiview+light-sheet+microscope+for+rapid+in+toto+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Multiview light-sheet microscope for rapid in toto imaging.</a> Nat Methods. 9, 730-733 (2012).</li>
<li>Tomer, R., Khairy, K., Amat, F., Keller, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+high-speed+imaging+of+entire+developing+embryos+with+simultaneous+multiview+light-sheet+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantitative high-speed imaging of entire developing embryos with simultaneous multiview light-sheet microscopy.</a> Nat Methods. 9, 755-763 (2012).</li>
<li>Huisken, J., Stainier, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Even+fluorescence+excitation+by+multidirectional+selective+plane+illumination+microscopy+%28mSPIM%29%5BTitle%5D)+AND+%22Opt+Lett%22%5BJournal%5D)">Even fluorescence excitation by multidirectional selective plane illumination microscopy (mSPIM).</a> Opt Lett. 32, 2608-2610 (2007).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もありません。

このプロトコルは、Cのin vivoイメージングのための光シート顕微鏡の簡単なセットアップについて説明します虫の胚。レーザは、ビームエキスパンダ、コリメーション及び集束レンズを含む光学シートを作成し、揃えるために必要な光学素子は、容易に光学ベンチ上に取り付けることができる。検出経路とカメラ用正立顕微鏡との組み合わせでは、これは、セットアップの簡単な解決策光シート顕微鏡を提供します。 このジオメトリは、サンプル環境が簡単になります。生体試料は、保持された位置決め及び機械部品の小さなセットによって移動されるガラスキュベット内に配置される。シート照明顕微鏡が機能を区画した広視野手法であるように、単一の軸電動移動が3D画像に必要です。これは、単一の走査要素への同期の要求を制限し、ソフトウェア開発を容易にする。 iSPIM 6私たちの直立幾何と比較したリューは、検出用の高NAの対物レンズを使用することができる。水平面内の対物レンズとのSPIMのセットアップに比べて、サンプルの取り付けや胚の一連の撮影が容易になります。要するに、この技術の実装が簡単であり、光学系にはほとんど専門知識を用いて達成することができる。これは、より高い速度と減少し、光毒性は低く、軸方向の分解能の欠点の利点と共焦点顕微鏡への安価な代替である。 また、Cをマウントするための簡単で再現性のある方法を開発しましたこのシステムを用いたin vivoイメージングのための線虫胚 。取付手順は高速で（15分）、日常の実験のために適している。 Cの虫イメージング 、この単純な設定の利点は、少なくとも2倍量である：TOTOイメージングにおいて （i）は回転せずに可能であるため、3D再構成が簡単です。 （ii）のサンプル実装が容易であり、複数の胚を順次撮像することができる同じスライド上。我々は細胞分裂や細胞形状の変化を観察するのに十分な時間分解能でタイムラプス映画の例を示した。 Cを勉強するシート光顕微鏡の力エレガンスの発達はまた、最近、他6,7,8によって示されている。したがって、この技術は、C.の形態形成およびパターニングを研究するために非常に有用であろう虫胚 。 このシステムはまた、他のモデル生物の発達を分析するために使用することができますか？これは、認識することが重要であるような小さなC.及び透明生物用シート照明顕微鏡法の実装虫は、ショウジョウバエの胚のようなより大きな生物ほど厳しくなる。 ショウジョウバエのTOTO撮影では 、通常、回転、マルチビュー再構成9、10が必要です。共線励起の対物レンズとの2側面から励起はまたattenuatによって生じる影の影響を軽減することができます光11のイオン。しかし、ここで紹介する設定はまだ低い漂白および低光毒性で、 ショウジョウバエの胚の画像1の側に適合されている。このセットアップはまた、ホヤやゼブラフィッシュなどの画像小さな透明の胚にとって有用である可能性があります。

生物の形成および整形は、細胞運動、細胞形状の変化、細胞分裂および細胞分化を含む。これらのプロセスの進行と調整を理解することは、3次元機能と細胞内分解能で高速な画像処理ツールが必要です。これらのインビボイメージング機能を備えた技法の中でも、光学シート照明顕微鏡法は、単一/選択的平面照明顕微鏡法と呼ばれる低毒性効果および1,2低い光退色を製造する独特の利点を有する。 シート照明顕微鏡法では、試料は光学切片を行う光シートにより側面から照明される。照明経路及び検出経路は、互いに直交する光シートは、検出対物レンズの物体焦点面と一致するように整列される。サンプルは、2つのパスの交点に配置されているndは3Dイメージングを可能にするように検出軸に沿って移動させることができる。関心のある面が照明されると、この面の全ての点が同時に検出されるのみ。これは、有意に取得速度を増加させ、共焦点顕微鏡3と比較して、光退色、並びに光毒性を低減する。 具体的には、シート照明顕微鏡は、セットアップと整列するには簡単です。2次元画像化のために、何のスキャンは、検出部のため、また照明部のためでもない必要ありません。能力をセクショニングを有する広視野技術として、三次元イメージングは​​、試料を保持するステージ、単一の軸移動することによって得ることができる。 ここでは、CのTOTOイメージングでのために簡単なシート光顕微鏡とその実装の ​​設定までを提示虫胚℃で虫の胚は、生体内のIMA に住むのに適しているそれらの透明性、不変系統とステレオタイプセル位置4,5にエージング。開発した光シートのセットアップは、検出のための標準的な正立顕微鏡に基づいています。以下に示すプロトコルが構築し、位置合わせ励起モジュール/パスをテストし、シート光を特徴づけると3Dイメージングのためのサンプルをマウントする方法について説明します。また、蛍光マーカーを発現する種々の菌株のセットアップで取得タイムラプスムービーの例を示します。

<table><tbody><tr><td>SPIM</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">検出</td></tr><tr><td>正立顕微鏡</td><td>ZEISS</td><td>Axiophot 1</td><td></td></tr><tr><td>100x W対物レンズ(NA 1.1、W.D. 2.5mm)&nbsp;</td><td>NIKON</td><td></td><td></td></tr><tr><td>EMCCD 裏面照射型</td><td>ANDOR</td><td>DU-885K-CS0-#VP</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Illumination</td></tr><tr><td>LASER 488 nm / 60 mW</td><td>TOPTICA</td><td>iBeam smart</td><td></td></tr><tr><td>LASER 405 nm / 120 mW</td><td>TOPTICA</td><td>iBeam smart</td><td></td></tr><tr><td>LASER 561 nm / 500 mW</td><td>COBOLT</td><td>JIVE 500</td><td>&nbsp;タイムラプスイメージングの場合、50または100mWで十分です</td></tr>フィルターク<tr><td>ワッドラインレーザー除去バンドZET 405/488/561/638</td><td>AHF</td><td>F57-405</td><td></td></tr><tr><td>ダイクロイック405</td><td>AHF</td><td>F38-405</td><td></td></tr>ダイ<tr><td>クロイック488</td><td>SEMROCK</td><td>Di01-R488</td><td></td></tr><tr><td>AOTF</td><td>AA</td><td>AOTFnC-400.650-TN</td><td></td></tr><tr><td>ミラー</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>レンズ50 mm</td><td>THORLABS</td><td></td><td>望遠鏡 5X</td></tr><tr><td>レンズ 200 mm</td><td>THORLABS</td><td></td><td>望遠鏡 5X</td></tr><tr><td>ペリスコープ</td><td>THORLABS</td><td>RS99/M</td><td></td></tr><tr><td>シリンドリカルレンズ f=100mm</td><td>THORLABS</td><td>ACY254-100-A</td><td></td></tr><tr><td>10X NA 0,3</td><td>NIKON</td><td></td><td></td></tr><tr><td>xyz stage</td><td>NEWPORT</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Sample</td></tr><tr><td>Bacto Agar</td><td>BectktonDickinson</td><td>214010</td><td>5% 水ポリ</td></tr><tr><td>-L-リジン溶液&nbsp;</td><td>シグマ</td><td>P8920</td><td></td></tr><tr><td>キャピラリーGC100F-10、1.0mm外径、0,58mm内径、100mmL</td>ハ<td>バードAppartus</td><td>30-0019</td><td></td></tr><tr><td>吸引チューブ(口ピペット)</td><td>ダット</td><td>シャー55005</td><td></td></tr><tr><td>M9媒体:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4(3g / L)</td><td>任意の</td>サプライヤーNa2HPO4<td></td><td></td></tr><tr><td>(6g / L)</td><td>任意のサプライヤーNaCL</td><td></td><td></td></tr><tr><td>(5g / L)</td><td>任意の</td>サプライヤーMgSO4<td></td><td></td></tr><tr><td>(1 mM最終)</td><td>任意のサプライヤー</td><td></td><td></td></tr>キュ<tr><td>ベットホルダーHOME</td><td>MADE</td><td></td><td>によってBrice Detailleur&nbsp;</td></tr><tr><td>サンプルホルダーHOME</td><td>MADE</td><td></td><td>Made by Claude Moretti&nbsp;</td></tr><tr><td>xステージ</td><td>NEWPORT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>カバースリップ50x20x1 mm</td><td>MARIENFELD</td><td></td>カット、その後、アンプ/コントローラーPI P-622を備えた<td>10x20x1mm</td></tr><tr><td>ピエゾ電気ステージ</td><td></td>。<td>ZCD / E-625.CR</td><td></td></tr><tr><td>キュベット40mmx40mmx10mm</td><td>HELLMA</td><td>704.002-OG.40 mm- 10mm高</td><td></td></tr><tr><td>ダイヤモンドポイントガラスマーキングペンシル</td><td>VWR</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Software</td></tr><tr><td>C++(Qt)オリ</td>ビエ・ブランとクレア・シャード&egraveによって開発された自家製ソフトウェア<td></td><td></td><td>。s、リクエストに応じて利用可能。代替ソリューション:micromanagerまたはlabview&nbsp;</td></tr></tbody></table>

のための簡単​​なシート光顕微鏡を設定する<em&gt;トトで</em&gt;イメージングの<em&gt; c.虫</em&gt;開発

Setting Up a Simple Light Sheet Microscope for In Toto Imaging of C. elegans Development

高速かつ低毒性のイメージング技術は、 全体として生物の発生を研究するための前提条件である。細胞下解像度の3D映像を提供しながら、シート光ベースの顕微鏡は、共焦点顕微鏡に比べて、光退色と光毒性の影響を低減します。ここでは、正立顕微鏡と光シートを生成するための光学機械要素の小さなセットで構成されている光シートベースの顕微鏡のセットアップを提示する。プロトコルは、構築顕微鏡を整列させ、シート光を特徴付ける方法について説明します。また、C.のトトイメージングで方法を実装する方法の詳細単純な観察 ​​室を使用して、胚エレガンス 。この方法は、開発の数時間にわたる3D二色タイムラプスムービーのキャプチャを可能にする。これは、細胞形状の追跡を容易にする細胞分裂及び長期間にわたってタンパク質をタグ化すべきである。

3別のCから三次元タイムラプス撮影実験エレガンス株は、上述の光シート顕微鏡セットアップを用いて得ることができるデータの種類を示す。私たちは、これらの条件下で胚はSPIMイメージングがCで唯一の低光毒性レベルを引き起こすことを示す以前の報告と一致して、通常の速度で開発し、イメージングを生き残ることを確認虫胚 6,7。 第1の株は、GFP（; stIs10024 zuIs178）に融合されたヒストンを表現しています。記録は37秒毎に撮影し20スライス（スライス1ミクロンとの間の距離）のスタックで2時間実施した。 図6は、異なる時点でのスタックの1つの面を示している。 interphasic核（矢印）と凝縮された有糸分裂クロマチン（矢じり）の両方がはっきりと見える。 第2の株は、GFP（ruIs57）に融合されたチューブリンおよびヒストンを表現mCherry（; stIs10226 itIs37）に融合。記録は105秒毎に採取20スライス（スライス1ミクロンとの間の距離）のスタックで16分間で実施した。7はスタックと異なる時点の異なる面を示す図 。 3つの連続する時点での関連する映画1を表示し、3D再構成。分裂の間に、紡錘体（緑色）と凝縮した染色体（赤）が開発中の細胞分裂の方向を追跡できるようにはっきりと見える。 三株は、GFPに融合したアポリポタンパク質VIT-2（pwIs23）とmCherry（ltIs44）膜結合を表現しています。記録は30秒毎に撮影し10スライス（スライス1ミクロンとの間の距離）のスタックで25分間で実施した。8はスタックと異なる時点の異なる面を示す図 。細胞内の卵黄リポタンパク質粒子（緑）の迅速な動きを簡単にすることができます続く。 <img alt="図1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51342/51342fig1highres.jpg" width="500" /> 図1：照明および検出ユニットは、前面および底面図で構成SPIM光学装置 。照明ユニットにおいては、ダイクロイックミラーにより合わせたレーザーはそれぞれ独立して、レーザのパワーを制御するAOTFを入力する。次いで、望遠鏡は4倍ビームの大きさを増大させ、ペリスコープは、顕微鏡の高さに持ってくる。シリンドリカルレンズは、照明対物レンズによって再集束された光のシートを形成する。検出部は、正立顕微鏡に一体化され、主に検出レンズ、フィルター、チューブレンズとEMCCDによって構成されている。試料は、照明および検出経路間の交差部に配置されている。ピエゾステージは、試料の垂直（Z）の変位を可能にする3D取得のため。 <img alt="図2" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51342/51342fig2highres.jpg" width="500" /> 図2：このキュベットホルダーは、ホルダー3のアルミニウム板からなり、圧電ステージ上にねじ込まれている。ガラスキュベット（赤）ばねによって保持される。 <img alt="図3" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51342/51342fig3highres.jpg" width="500" /> 図3：Cの実装プロトコルSPIM実験のための胚エレガンス 。ガラスの切断片を、ポリ-L-リジンで被覆されている。寒天のパッドがコーティングされた表面上に配置される。ポリ-L-リジン、次いで寒天パッドに添加される。最後に、C.エレガンス胚は、ポリ-L-リジンコーティングされた寒天パッド上に整列される。 図4：試料ホルダー 。ホルダーは、ガラスキュベットの内部寸法に適合します。 （赤）二つのスプリング（ 図3を参照）、スライドガラスを保持します。このホルダーをガラスキュベットの中に置かれる。 <img alt="図5" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51342/51342fig5highres.jpg" width="500" /> 図5：観察コンテキストにおける試料ホルダ胚を図3にまとめたプロトコルに従ってスライドガラス上に固定したスライドは、図4で説明した試料ホルダに保持されている試料ホルダをガラスキュベットに挿入される、。 図2で説明したホルダに保持された。光シートは、私は水平であり、側からの胚をlluminates。検出対物レンズは試料の上に、垂直である。 <img alt="図6" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51342/51342fig6highres.jpg" width="500" /> 図6：Cの記録ヒストンを表現する線虫胚 :: GFP融合ヒストンを発現するトランスジェニック胚の単一平面画像:: GFP融合（zuIs178; stIs10024）異なる時点での3Dタイムラプス記録から抽出した画像：20スライスで作られたスタック（。スライス1μm）との間の距離;スライス当たりの露光時間：30秒;スタック間の時間間隔：37秒;総取得時間：2時間。矢印：interphasic核、矢頭：凝縮有糸分裂クロマチン。 T = 0分で胚は2細胞期にあり、正常な発達の下に予想されるようにtの= 120分、胚は約70細胞が含まれています（胚のすべての細胞単一の平面に含まれる細胞のみが絵で表示されていることに注意していない）オシッコ。照明の電力は、（照明目的の出口で測定）488nmで30μWた。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51342/51342_LenneBertrand_Figure6.avi" target="_blank">動画をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図7" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51342/51342fig7highres.jpg" width="500" /> 図7：Cの記録チューブリン:: GFP融合とヒストンを表現する線虫胚:: mCherry融合℃の3Dタイムラプス記録から抽出した画像チューブリン:: GFP融合（ruIs57）とヒストン:: mCherry融合（; stIs10226 itIs37）を発現する線虫胚 。記録条件：スライス1間の20スライス（距離のスタックの取得程度）ごとに105秒;総取得時間：16分;露出時間：各チャネルごとに200ミリ秒。パネルAは 、同じスタックの10スライスを示しています。パネルBは、同じスライスごとに210秒を示しています。照明の電力はそれぞれ488と561 nmのレーザー、（照明目的の出口で測定）のために、30μW300μWた<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51342/51342_LenneBertrand_Figure7.avi" target="_blank">動画をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図8" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51342/51342fig8highres.jpg" width="500" /> 図8：Cの記録VIT-2 :: GFP融合し、膜を標的とmCherryを表現する線虫胚℃の3Dタイムラプス記録から抽出した画像虫胚 VIT-2 :: GFP融合を表現（PWIS23）、膜を標的とmCherry（ltIs44）。記録条件：10スライス（スライス1ミクロンの間の距離）ごとに30秒のスタックの取得;総取得時間：25分;チャネル当たりの露光時間：200ミリ秒。パネルAは 、同じスタックの5最初のスライスを示しています。パネルBは、同一スライスごとに30秒を示しています。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51342/51342_LenneBertrand_Figure8.avi" target="_blank">動画をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

このプロトコルは、シート光顕微鏡のセットアップとCのin vivoイメージングのために、その実装について説明します虫の胚。

のための簡単​​なシート光顕微鏡を設定する<em&gt;トトで</em&gt;イメージングの<em&gt; C.虫</em&gt;開発

Fast and low phototoxic imaging techniques are pre-requisite to study the development of organisms in toto. Light sheet based microscopy reduces ...

この手順の全体的な目的は、蛍光ライトシート顕微鏡を用いて C Allergan の成長をイメージングすることです。まず、正立顕微鏡と、ライトシートを生成するための少数の光学機械部品で構成されるライトシート顕微鏡をセットアップします。手順の2番目のステップは、胚をマウントすることです。最後のステップは、ライトシートを胚に合わせて調整し、その発育を記録することです。3Dおよびタイムラプスビデオの解析により、C. elegansの発育過程における蛍光標識タンパク質のダイナミクスを明らかにすることができます。共焦点顕微鏡などの他の既存の手法に対するライトシート顕微鏡の主な利点は、より低い光毒性で、より高速なイメージングが可能であることです。第三に、この手法はアザラシの発生に関する知見を提供できます。また、マウスやゼブラフィッシュなどの他の系にも適用可能です。本手順を実演することで、詳細を明確に示します。私の研究室のエンジニアであるShales氏と、van研究室のエンジニアであるPauline Linac氏です。このセクションではセットアップの組み立てについて説明しますが、これはすべての実験を通して組み立てたままにしておくことができます。レーザー、フィルター、望遠鏡、およびペリスコープをすべて光学定盤上に配置した後、円柱レンズを固定してライトシートを生成します。別のレンズでフォーカスを調整します。照明用対物レンズの焦点は、検出用対物レンズの物体焦点と一致している必要があります。次に、ビームを壁またはスクリーンに投影し、投影された輪郭が鮮明になるまで、照明用対物レンズをビーム軸に沿って移動させます。顕微鏡のセットアップに、クアッドラインエミッションフィルターとE-M-C-C-Dカメラを組み込みます。2番目の手動翻訳ステージを1番目のステージに対して垂直に固定します。このアセンブリを既存の顕微鏡ステージにネジで固定します。設定済みの円柱レンズ照明対物レンズを取り外した後、アセンブリを顕微鏡上に配置し、照明セットをステージに戻します。照明光路と検出光路が垂直に交差する位置にqveホルダーを取り付けます。ここで、ライトシートを確認します。ガラス製キュベットにフルオレセイン溶液を満たし、ステージ上のホルダーに設置します。ライトシートが見えることを確認してください。ライトシートは水平であり、検出対物レンズに対して中心に位置している必要があります。次に、シリンダーレンズを取り外します。照明対物レンズを3次元的に移動させてライトシートを最適化し、画像を取得してライトシートの厚さを測定します。この厚さは対物レンズの開口数に依存します。次に、必ずシリンダーレンズを交換してください。まず、厚さ1 mm、10 mm × 20 mmのガラス片を切り出します。ダイヤモンドカッターを使用してください。次に、スライドの一方に20 µLのポリLリシンを加え、乾燥後、2枚目のスライドと接するように並べます。固定した状態で、5%アガーを1滴加え、3枚目のスライドを上に置いてその重みで平らにします。アガーが乾燥した後、3枚目のスライドを取り除き、ポリLリシンを塗布していない方のスライド上で、残りの2枚のスライドの端から3 mmの位置でアガーパッドをカットします。次に、固定したスライドを取り出し、アガロースをはみ出させた状態にします。アガロースに 20 µL の poly L lysine を塗布し、乾燥させます。その後、解剖顕微鏡下で、M9 medium を満たした時計皿に GR 虫を入れます。メスでvulvaの高さで虫体を切断し、卵を放出させます。次に、目的の段階にある胚を同定し、マイクロキャピラリーピペットで回収します。胚を、準備したスライドの端のすぐ隣にあるアガールのオーバーハング部分に転移させます。この際、アガールの境界線上にならないようにしてください。次に、液体を除去しながら、マイクロキャピラリーピペットを用いて胚を整列させます。吸引することで、胚はポリリシンに付着します。良好な記録を得るためには胚を適切に配置することが非常に重要であり、そのためには適切な口径のキャピラリーが必要です。サイズが小さすぎると、胚を放出させるのが困難になります。逆に大きすぎると、漏出フローの厳密な制御や胚の整列が困難になります。シャーレ内でスライドをM nine mediumで覆い、拡大鏡を用いて胚が依然としてアガーに付着していることを確認してください。次に、胚を準備したスライドを、veteに適合するサンプルホルダーに固定します。ホルダーは、veteに適合するように設計された自作の器具です。次に、veteをPizo電動ステージに固定し、明視野照明下で胚を特定します。これで、acoustic optic tuneableを制御するソフトウェアパッケージを起動してください。カメラとステージのフィルタリングを行います。ここで使用しているソフトウェアは自社製ですが、フリーウェアのMicroManagerを使用することも可能です。まず、レーザーラインを選択します。次に、ライトシートが最も明るくなるまで、x軸に沿ってステージを調整します。その後、S/N比が最適になるまで、残りの2つの次元（YおよびZ）を調整します。この操作は、個々の胚ごとに行う必要がある場合があります。良好な記録を得るためには、S/N比を最適化することが重要であり、ステージの自由移動をサポートし、目的の排除と調整を行うことで、胚の正確なシミュレーションと最高のコントラストを得ることができます。次に、タイムラプス画像を取得します。胚の蛍光レベルと解析する生物学的プロセスの速度に応じて、レーザー出力、露光時間、ゲイン、および撮影間隔を設定してください。Zackによる。ヒストンGFP構築物を発現するc elganにおいて、スライス間の距離および開始・終了位置を撮影設定しました。2時間のタイムラプスイメージングを行い、37秒ごとに20枚のスライススタックを撮影しました。チューブリンGFP融合タンパク質およびヒストンmCherry融合タンパク質を発現する株では、細胞分裂が明確に観察されました。録画は105秒ごとに16分間行われました。3つの時点における3Dレンダリングを示します。紡錘体と凝縮した染色体が明確に観察でき、細胞分裂を通じて容易に追跡できます。3番目の株では、GFPと融合させたAPOリポタンパク質vit2を、mCherryによる細胞膜の標識とともにイメージングしました。13分間にわたり、27秒ごとに10スライスのスタック画像を取得しました。高速で移動するリポタンパク質粒子は容易に追跡できました。ここでは、より複雑な手法で形成されたライトシートを用いて作製します。空間分解能をさらに向上させるために、ライトシートを導入することが考えられます。

setting-up-simple-light-sheet-microscope-for-toto-imaging-c-elegans

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

イメージング C.エレガンス</em落射蛍光顕微鏡とオープンソースソフトウェアを使用して>胚

この記事では、線虫の胚発生の初期のイベントの可視化のための手法について説明...

の初期発生のタイムラプス顕微鏡線虫（Caenorhabditis elegans）

このプロトコルは、画像に線虫（Caenorhabditis elegans）の胚における組織内の細胞を分割する方法について説明します。いくつかのプロトコルは、初期胚の画像細胞分裂に、このプロトコルはどのように中期後期胚形成の間に開発し、組織内の細胞分裂像に説明して方法について説明している。...

中に神経芽細胞細胞質分裂を可視化する<em&gt; C.虫</em&gt;胚

透明な線虫の腸、「体内組織商工会議所「多細胞 tubulogenesis の中に apicobasal の膜と内腔の生合成単一セルおよび細胞内レベルでの勉強のためとして使用できます。このプロトコルでは、分子レベルでこれらのプロセスを分析するミクロ アプローチ、機能喪失遺伝的/RNAi...

細胞間腔の形態形成と単一細胞レベルでのIn Vivo偏光膜生合成のためのモデルとして線虫腸: 抗体の汚損、RNAi 損失の機能解析、イメージングによるラベリング

ここでは、 elegans胚における高分解能顕微鏡、計算ツール、および単一細胞標識法を用いて、neurodevelopment...

等方性光シート顕微鏡と自動細胞系譜分析による、細胞内分解能を Caenorhabditis elegans 胚発生

C.エレガンス胚発生を解析するセミハイスループットイメージング法とデータ可視化ツールキット

ここでは、 Caenorhabditis elegans胚を...

4D顕微鏡:ノマルスキ顕微鏡を用いた カエノラブディティス・エレガンス 胚発生の解明

蛍光標識End結合タンパク質を用いて 生体内で 動的微小管をイメージングするプロトコルが提示された。...

インビボカエノハブディティス・エレガンスニューロンにおける微小管動態と向きの評価

超解像顕微鏡は、減数分裂におけるシナプトン複合体内の成分の構成に関する詳細な洞察を提供することができます。ここでは、 カエノラブディティス・エレガンス ・シナプトン複合体の個々のタンパク質を分解するためのプロトコルを示します。...

カエノラブディティス・エレガンス生殖系列内のシナプトン複合体の超解像顕微鏡

mScarletと呼ばれる蛍光タンパク質を使用したEponの埋め込み後相関光および電子顕微鏡の詳細なプロトコルを紹介します。この方法では、蛍光と超微細構造を同時に維持できます。この技術は、さまざまな生物学的用途に適しています。...

Epon Post Embedding 相関光電子顕微鏡

このプロトコルは、マイクロ流体ベースの C.エレガンス...

すべての幼虫期にわたる高解像度 のC.エレガンス イメージング

学ぶライトシート顕微鏡の構築とC. elegans胚の生体内イメージング手法。高速・低光毒性で蛍光タンパク質の動態を3Dタイムラプスで観察し、細胞分裂と紡錘体の可視化が可能です。

のための簡単​​なシート光顕微鏡を設定する

さらに動画を探す

のための簡単なシート光顕微鏡を設定する