Name: スキンマイクログラフト世代の新しい脱凝集法後の組織性状 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 30 s
Description: 学ぶ 皮膚マイクログラフトの新規脱凝集法。バイオプシーパンチで採取した皮膚組織の上皮層を除去し、生理食塩水と混合して即座に使用可能な自家組織片を作成する技術です。創傷治癒や再生医療の現場で細胞生存性を維持しながら迅速に適用できます。

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著者らは、フローサイトメトリー分析を行う研究に貢献するためのおかげで博士フェデリカZanzotteraしたいです。

倫理文：プロトコルの臨床応用は、患者の皮膚自家組織の使用を必要とするため、in vitroでの特性評価が収穫に関する国家規則のガイドライン以下のエミリア・ロマーニャ地方のスキン銀行での相同皮膚組織に臨床使用の前に行われた、処理および移植のための組織（2013 CNT）を配布します。 臨床応用のための1.バイオコンプレックスビル注：このプロトコルは、臨床的にRigeneracons（組織破砕）とRigeneraマシン（組織破砕システム）（ 図1A）の使用に基づいています。組織破砕は、約50ミクロンのカットオフと六角形のブレードおよびフィルタリング細胞と細胞外マトリックスの成分により提供されるグリッドを使用して、組織の小片を破壊することができるヒト組織の生物医学的攪乱物質です。 <ol><li>双を通して患者のskinsamplesを収集opsyパンチ（ 図1B）とは、自己ミクロ移植片6,7,9を取得する毎に生理食塩液1mlを添加脱凝集（またはステップ2.1参照します）。 </li><li>臨床応用に使用する（ 図1C）toformバイオ複合コラーゲンスポンジにマイクログラフトの1ミリリットルを置きます。 </li><li>培養物を5％CO 2の加湿雰囲気中、37℃で10％ウシ胎児血清を補充したDMEM培地6mlの存在下でのコラーゲンスポンジの微小移植片のさらに1 mlです。 </li><li> 3日間の培養に続いて、室温で10分間、0.3％パラホルムアルデヒドでバイオ複合体を固定してください。サンプルの上に直接、特定のディスペンサーとパラフィンを注ぎます。厚さ5μmのミクロトームでスライスを取得し、スライドガラスに直接置きます。 </li><li> 20ミリリットルキシレン（市販 - - o-キシレン（65％）、p-キシレン（20％）、20％ - m-キシレン（40のミックス15を含む、組織学的分析のためにガラスに5ミクロンのパラフィン切片を浸し）とETH3分間、 - （20％6）、トルエン、トリメチルベンゼン、フェノール、チオフェン、ピリジンおよび硫化水素の痕跡）イルベンゼン。 </li><li>脱パラフィンし、次いで脱イオン水（1時間、1時間80％エタノール、70％エタノールで1時間のために1時間100％エタノール、95％エタノール）のエタノール減少等級内のスライス（100％〜70％）を浸しそして、セクションを再水和。 </li><li> 1のための1グラム/ L Ematoxylinの2ミリリットル - - 1でセクションを染色し、2分間、続いて任意のEmatoxylin黒字を除去するために水で洗い流してください。 </li><li>エタノール70％と混合し、水で希釈した濃度の1％エオシンYアルコール溶液で5分間 - 4のためのセクションを染色します。 </li><li>各スライドセクションのエオシンYの2ミリリットル、ランニング水道水で洗い流し - 1を使用してください。 </li><li>エタノールの増加グレードのセクションを浸し（ステップ1.6を参照）、最終的には、1時間のためにキシレン中で経過した後、ベースの取り付けとカバーガラスmediumand 100X倍率（ 図1D）の光顕微鏡下で観察します。 </li> &lt;/ OL&gt; 2.コレクション、脱凝集および組織のインビトロ分析<ol><li>デルマトームを使用すると、それぞれ0.6ミリメートル、1ミリメートルまたは4つの異なる多臓器および/またはマルチのトランクエリアから厚さ2mmの独立した皮膚組織、乳頭デepidermized真皮（デッド）または真皮網状層（真皮）を取ります収穫、加工、移植のための組織を配布に関する国家規則（CNT 2013）は、次の40〜55歳の範囲内組織ドナー、。 <ol><li>ゆっくり5分間オービタルシェーカー上皿にそれらを入れて、0.9％NaCl溶液中のすべてのサンプルをすすいでください。 </li><li> 5 mmの生検パンチを使用して、皮膚組織から直径が均一であるサンプルを作成し、デッドと真皮と分解する前に、すべての組織標本の重量を量ります。 </li><li>分解のために食塩溶液1.5mlを添加すること、組織破砕で、それぞれ8個3つまたは​​4つの均一な皮膚組織サンプル、デッドまたは真皮挿入。 </li><li>別の実行すべての組織サンプルの分解の時間は、 表1に示します。 </li><li>対照として、無傷の組織サンプル由来のパンチ生検の特派員番号を使用してください。 </li><li>機械的解離後、マイクログラフトを含む生理食塩水を吸引し、12ウェルプレートの1ウェルに個別に各サンプルを配置します。無傷の制御パンチ生検のために同じプロトコルを実行します。 </li><li>各試料に、10％ウシ胎児血清（FBS）および抗生物質を補充したRPMI 1640培地を1mlを加えます。 </li><li>すぐに細胞生存率を評価します。各ウェルにMTTの0.5 mg / mlで（3- [含む培地を1mlを加える（皮膚組織、それぞれデッドまたは真皮8、3つまたは​​4つの均一なサンプルの同時分解によって得られる）、マイクログラフトを含みます4,5-ジメチルチアゾール-2-イル] -2,5-ジフェニルブロマイド）溶液および5％CO 2 /空気の雰囲気中で37℃で3時間インキュベートします。無傷の制御のために同じプロトコルを実行します生検パンチ。 </li><li>インキュベーション後、全ての培地を含有するMTTを除去し、10分間、各試料1mLのジメチルスルホキシド（DMSO）に加えます。 </li><li>キュベット中の各試料とDMSOを転送し、分光光度計を用いて570nmでの光学密度（OD）で読み取りました。 570 nmの吸光度の比と分解する前に使用した組織のグラム重量（グラム）として細胞生存率を計算します。無傷の制御パンチ生検のために同じプロトコルを実行します。 </li></ol></li><li>機械的解離後、皮膚組織、単一ドナーのデッドと真皮サンプル由来のマイクログラフトを含む生理食塩水を吸引します。 <ol><li> 12ウェルプレートの1ウェルに、またはそれぞれの細胞生存率試験および形態素解析のための培養フラスコ内で個別に各サンプルを置きます。 </li><li> 5％CO 2 / Alの雰囲気中、37℃で、10％FBSおよび抗生物質を補充したRPMI 1640培地1mlの（12ウェルプレート）または5ミリリットル（培養フラスコ）を添加培養マイクログラフト24時間または7日間R。 </li><li> （リピートが2.1.8-2.1.10ステップ）、24時間または7日後に細胞生存率を評価します。 </li><li>フラスコ中での培養の24時間と7日後に光学顕微鏡で細胞懸濁液の存在を評価する形態素解析を実行します。 </li><li> FACS分析6によるCD146、CD34およびCD45抗原を含む間葉系および造血細胞マーカーに陽性のために真皮のサンプルを分析します。 </li><li>層流フードシード下で完全に脱凝集しない各組織試料の対応する小断片（皮膚組織、それぞれデッドまたは真皮8、3つまたは​​4つの均一なサンプルの同時分解によって得られた）各マイクログラフト（&gt;大きさ50ミクロン脱凝集処理後の）5％ヒツジ血液培養液100μLを含むコロンビア寒天プレート上。 </li><li>無菌11を評価するために、三日間37℃でプレートをインキュベートし、コロンビア寒天プレート上の微生物学的分析を行います。 </li></ol></li></ol>

<ol><li>Sen, C. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+skin+wounds%3A+a+major+and+snowballing+threat+to+public+health+and+the+economy%5BTitle%5D)+AND+%22Wound+Repair+Regen%22%5BJournal%5D)">Human skin wounds: a major and snowballing threat to public health and the economy.</a> Wound Repair Regen. 17, 763-771 (2009).</li>
<li>Ellis, E. III, Sinn, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+homologous+bone+grafts+in+maxillofacial+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22J+Oral+Maxillofac+Surg%22%5BJournal%5D)">Use of homologous bone grafts in maxillofacial surgery.</a> J Oral Maxillofac Surg. 51, 1181-1193 (1993).</li>
<li>Nguyen, A., Pasyk, K. A., Bouvier, T. N., Hassett, C. A., Argenta, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+study+of+survival+of+autologous+adipose+tissue+taken+and+transplanted+by+different+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Sur%22%5BJournal%5D)">Comparative study of survival of autologous adipose tissue taken and transplanted by different techniques.</a> Plast Reconstr Sur. 85, 378-389 (1990).</li>
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<li>Graziano, A., Carinci, F., Scolaro, S., D'Aquino, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Periodontal+tissue+generation+using+autologous+dental+ligament+micro-grafts%3A+case+report+with+6+months+follow-up%5BTitle%5D)+AND+%22AOMS%22%5BJournal%5D)">Periodontal tissue generation using autologous dental ligament micro-grafts: case report with 6 months follow-up.</a> AOMS. 1 (2), 20(2013).</li>
<li>Brunelli, G., Motroni, A., Graziano, A., D'Aquino, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sinus+lift+tissue+engineering+using+autologous+pulp+micro-grafts%3A+A+case+report+of+bone+density+evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Indian+Soc+Periodontol%22%5BJournal%5D)">Sinus lift tissue engineering using autologous pulp micro-grafts: A case report of bone density evaluation.</a> J Indian Soc Periodontol. 17 (5), 644-647 (2013).</li>
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</ol>

著者アントニオ・グラツィアーノは、生成しRigeneraシステムを販売している人間の脳波SRLの科学ディレクターです。著者レティツィアTrovatoは、人間の脳波SRLの科学部門の協力者であります

この予備的研究では、既に他の臨床用途において報告されているように、このプロトコルによって得られる微小移植片は微小移植片インプラント9、10の有効性を最適化するために、コラーゲンスポンジと組み合わせることができることを示した。特に、この研究は、生体の能力を報告し-complexes、臨床応用から30日後の足病変の創傷治癒をアジュバント、微小移植片およびコラーゲンスポンジで構成される。さらに、in vitroでの結果はすぐに機械的解離後も24時間と7日間の培養後の両方でかなりの細胞生存率を維持し、三つの異なる皮膚組織を脱凝集するために、このプロトコルの有効性についての証拠を提供します。 均質化のこの種の後の細胞生存率の維持は、大規模な操作を避けて、1つのステップだけ無菌自家マイクロ移植片で得ることができます。この証拠は、一致していますin vitroでのこのプロトコルの有効性は骨膜、心臓の心房と眼球5の外側直筋の生検を含め、組織の他のタイプでも試験され...

近年では、いくつかの新しい方法は、急性および慢性の皮膚病変のための一段階の治療を提供するために、手術中に自家細胞懸濁液を得るために、バイオテクノロジーの分野で開発されてきました。また、外傷、糖尿病、感染症、および他の原因から生じる急性が、主に慢性創傷の管理は、依然として厳しいです。慢性創傷は、世界中の医療システム1に莫大な財政負担を引き起こし、深刻な世界的な健康問題となっていることを証拠があります。 皮膚病変の治療の成功率を高めるために、（セルラ強化を含む）広範囲操作の有無および無菌状態の維持は、直ちにの損傷領域に塗布することができる細胞懸濁液を作成するために、不可欠です患者は、それによって、このようなセルファクトリーとしてクリーンルームでの長い処理を回避することができます。セント小さ ​​な皮膚生検、粉砕、遠心分離および他の分離法（ 例えば、酵素的または機械的な）からarting、しばしば増殖培地で培養することができる細胞懸濁液を得るために使用されます。これらの方法の全ては、一般に、細胞構造を強調し、細胞生存率の低下につながる、実行に長い時間を必要とします。別の重要な態様は、損傷領域を修復するために、例えば、臨床医によって使用される準備ができた自己細胞懸濁液を得ることです。さらに、十分に自家組織移植片は、最終的に誘導および伝導2、3の原則によって、受信者サイトで生き残るために転送手順を生き残ることが確立されています。理想的な移植片組織は、容易に入手でき、低抗原性およびドナー部位の罹患率4を持つ必要があります 。 これらの証拠に基づき、本研究の最初の目的は、適した自家バイオ複合体を作成することでした組織修復における臨床応用。この目的のために、我々はこのプロトコルによって脱凝集された皮膚組織から始まる自家マイクログラフトを得るための新しい方法を説明します。ケースの提示はまた、本明細書中にコラーゲンスポンジと組み合わせて、このプロトコルによって得られた自己ミクロ移植の臨床応用として記載されています。このアプローチは、既にヒト組織5の機械的分解に効率的であることが報告されていて、それが移植片および皮膚組織6,7の再生のためだけでなく、口腔顎顔面外科手術8-10における結合組織の再生治療のために臨床的に使用されています。 また、本研究の第二の目的は、このプロトコルによるそれらの分解後の皮膚組織の生物学的特徴づけました。この目的のために、皮膚組織の異なる相同サンプルは、異なる多臓器の胴体領域に由来しますおよび/またはマルチ組織のドナーは、エミリア・ロマーニャ地方スキンバンクでの移植のための組織（CNT 2013）を収穫、加工に関する国家規則に従い、配布処理しました。 症例提示： 車の事故に起因する複雑な外傷を示す35歳の女性患者は、アンコーナ病院の集中治療室に入院しました。患者は、オープン傷や外部固定で安定化化合物の破壊に起因する脚に感染を示しました。二つのラジカルデブ​​リドマンを行い、傷が負圧治療（VAC療法）の後にクリーンになったと骨膜が健康に見えたとき、我々は回復から2ヶ月後のプロトコルを適用しました。このシステムで分解した後、得られた微小移植片は、その後、病変の修復に対するそれらの効果を調べるために移植されたコラーゲンスポンジを用いてバイオ複合体を作成するために使用されました。

<table><tbody><tr><td>Rigenera マシン</td><td>ヒューマン ブレイン ウェーブ</td><td>79210R</td><td></td></tr><tr><td>リジェネラコンズ</td><td>ヒューマン ブレイン ウェーブ</td><td>79450S</td><td></td></tr><tr><td>MTT</td><td>ロシュ ダイアグノスティック GmbH</td><td>11465007001</td><td></td></tr><tr><td>RPMI ミディアム</td><td>PBI インターナショナル</td><td>733-2292</td><td></td></tr><tr><td>DMEM ミディアム</td><td>PBI インターナショナル</td><td>F 0415</td><td></td></tr><tr><td>抗生物質</td><td>バイオロジカルインダストリーズPBI</td><td>03-038-1 &nbsp;&nbsp;&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>FACS分析用抗体</td><td>eBiosciences</td><td>コード12-1469 CD146-P; コード17-0349&nbsp; CD34-APC用&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>コロンビア寒天</td><td>BioMerieux Company</td><td>43041</td><td></td></tr><tr><td>Condress&reg;</td><td>アビオジェン・ファーマ</td><td></td><td>バイオコンプレックス用コラーゲンスポンジ</td></tr><tr><td>DMSO&nbsp;</td><td>Bioniche Pharma USA LLC、Lake Forest、IL</td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaCl溶液</td><td>Fresenius Kabi、バートホンブルク、ドイツ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>キシレン&nbsp;</td><td>カルロ・エルバ</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

スキンマイクログラフト世代の新しい脱凝集法後の組織性状

Tissue Characterization after a New Disaggregation Method for Skin Micro-Grafts Generation

いくつかの新しい方法は、急性および慢性の皮膚病変のための1つのステップの処理を提供するために、手術中に自己の細胞懸濁液を得るために、バイオテクノロジーの分野で開発されてきました。また、外傷、糖尿病、感染症や他の原因から生じる慢性だけでなく、急性創傷の管理は、依然として厳しいです。本研究では、単一の患者とその臨床応用の皮膚組織から自家マイクロ移植片を作成するための新しい方法を説明します。また、皮膚、脱epidermized真皮（デッド）および多臓器及び/又は多組織ドナーの真皮に由来する皮膚組織のインビトロでの生物学的特性評価も実施しました。全ての組織は、私たちは実行可能なマイクログラフトを得ることができるように、この新しいプロトコルによって解離させました。特に、我々は、この革新的なプロトコルは、自己ミクロ移植片および皮膚病変に適用する準備ができたコラーゲンスポンジで構成バイオ複合体を作成することができることを報告しました。 clini足の病変に対する自家バイオ複合体のcalの適用はまた、両方の再epitalizationプロセスの改善と病変の柔らかさを示し、報告されました。さらに、我々のインビトロモデルは、このシステムの機械的解離後の細胞生存率は、培養物の最大7日間の時間にわたって維持されることを示しました。我々はまた、解離から得られた細胞のプールが高い再生能のために、組織再生および修復のプロセスにおいて重要な役割を発揮する間葉系幹細胞を含むいくつかの細胞型で構成されていることを、フローサイトメトリー分析によって、観察しました。最後に、我々は寒天皿で培養したときに、この手順は、マイクロ移植片の無菌性を維持することをin vitroで実証されました。要約すると、我々は、臨床医は、実行可能な無菌かつ最も一般的な生物学的scaffoで単独または組み合わせて適用することができるマイクログラフトを使用する準備ができて1ステップで取得するために、この新しい回生アプローチが有望なツールとなり得ると結論しますLDS。

この予備的研究では、最初の目的は、使用する準備ができてバイオ複合体を生成するために、コラーゲンのような生物学的支持体と結合したヒト自家マイクロ移植片の能力を調査することでした。これらのバイオ複合体は、患者に移植しました。 自動車事故（ 図2A）によって引き起こされる足の病変と30日（ 図2B）後の組織修復に関連した完全な再上皮で観察されました。また、臨床フォローアップを5ヶ月（ 図2C）の後、損傷領域の良好な質感及び柔軟性を示した。臨床応用に並行して、 インビトロ研究はまた、皮膚組織のような異なる皮膚組織の細胞生存率を評価しました、このシステムによる分解前後のデッドと真皮。具体的には、アカウントに組織の各タイプ、8のしきい値の異なる厚さを取って、皮膚組織、デッドと真皮のための単一工程で処理することができる4および3生検は、それぞれ、設立されました。 <...

プロトコルは、ヒト組織を脱凝集し、コラーゲンスポンジと合わせ、自家マイクログラフトを作成するには、皮膚病変の治療に使用する準備ができて、人間の生体複合体を生じさせる新しい方法を説明します。さらに、このシステムは、機械的解離後の異なる時点で、マイクロ移植片の細胞生存率を維持します。

Several new methods have been developed in the field of biotechnology to obtain autologous cellular suspensions during surgery, in order to provide one ...

この外科的発明の全体的な目的は、創傷治癒のために同一の手術内で直ちに利用可能な自家皮膚マイクログラフトを作製することです。この手法は、慢性創傷の治癒、火傷、外傷後潰瘍など、再生医療および皮膚組織工学分野における重要な疑問への回答に寄与します。この技術の主な利点は、特別な技術を持たない医師でも非常に容易に使用でき、迅速かつ低コストであることです。まず、バイオプシーパンチを使用して患者から皮膚サンプルを採取します。次に、上皮層を取り除いて廃棄します。各組織サンプルを1 milliliterの生理食塩水と混合し、自家マイクログラフトを作成します。臨床応用に向けたバイオコンプレックスを調製するには、マイクログラフト溶液1 milliliterをコラーゲンスポンジに移行させます。直ちに、そのバイオコンプレックスを患者の患部に適用してください。in vitroで、バイオコンプレックスの生存能を試験します。3日間の培養後、0.3%ホルマリンをバイオコンプレックスに直接注ぎ、室温で10分間固定します。ミクロトームを用いて厚さ5 µmの切片を作成し、ガラススライドに直接貼り付けます。その後、切片を15～20 mLのキシレンに3分間浸漬させます。次に、スライスを濃度の低い順のエタノール溶液にそれぞれ1時間ずつ浸し、その後、脱イオン水に入れることで、切片の脱パラフィン化および再水和を行います。続いて、1 g/Lのヘマトキシリンを1〜2 mL使用し、1〜2分間切片を染色します。その後、水に移して染料を洗い流します。1% エオシンYと70%エタノールの混合液を1〜2 mL用い、水で希釈して、切片を4〜5分間染色します。その後、流水でスライドを洗浄します。切片を段階的に濃度を上げたエタノールにそれぞれ1時間ずつ浸し、最後にキシレン中で1時間インキュベートします。最後に、カバーガラスをかける前に、塩基性封入剤をサンプルに塗布します。その後、光学顕微鏡を用いて100倍の倍率で観察します。採取に関する国家規定に従い、40歳から55歳の多組織ドナー4名の体幹部から、皮膚切断機を用いて、それぞれ厚さ0.6 mm、1 mm、または0.2 mmの乳頭層、角質層、または真皮のサンプルを採取します。サンプルを0.9%NaClに入れ、オービタルシェーカーで5分間揺らし、組織を緩やかに洗浄します。5mmの生検パンチを用いて、皮膚組織（表皮および真皮）から直径が均一なサンプルを作成し、すべての組織検体の重量を量ります。次に、組織破砕機に皮膚組織（表皮または真皮）の均一なサンプルを、それぞれ8個、3個、または4個投入し、分散させるために1.5mLの生理食塩水を加えます。この表に従って、すべての組織サンプルの分散処理を行います。対照として、無傷の組織サンプルから得られた同数のパンチ生検試料を使用してください。機械的な分散処理後、マイクログラフトを含む生理食塩水を吸引し、各サンプルを12ウェルプレートの個別のウェルに分けて配置します。10% FBSおよび抗生物質を添加したRPMI-1640培地を1 mLずつ各サンプルに加える。細胞生存率を評価するため、各ウェルに0.5 mg/mLのMTT溶液を含む培地を1 mL加え、37 °C、5% CO2条件下で3時間インキュベートする。インキュベーション後、MTT培地を除去し、1 mLのDMSOに置換する。10分間インキュベートした後、DMSOに溶解した各サンプルをキュベットに移し、分光光度計を用いて570 nmにおける吸光度を測定します。細胞生存率を、570 nmにおける吸光度と、細胞分散前の組織重量（g）の比として算出します。次に、単一ドナーの皮膚組織から生理食塩水を吸引した後、表皮および真皮の各サンプルを、細胞生存率試験用の12ウェルプレートの各ウェル、または形態学的解析用の培養フラスコにそれぞれ個別に分注します。12ウェルプレートに10% FBSおよび抗生物質を含むRPMI-1640を1 mL、または培養フラスコに5 mL加え、それぞれ37 °C、5% CO2条件下で24時間または7日間培養します。24時間後、光学顕微鏡を用いて細胞懸濁液の有無を評価し、形態学的解析を行います。7日目にも同様の操作を繰り返します。FACS解析を用いて、CD146、CD34、CD45などの間葉系および造血系細胞マーカーに基づき、真皮サンプルの解析を行う。分散させた細胞に培地を加え、37°Cで3日間インキュベートする。その後、既述の方法に従って微生物学的解析を行い、組織の無菌性を評価する。ここに示すように、コラーゲン支持体に即座に載せたヒト自家微小移植片を、脚部の病変部位に移植しました。その結果、30日後に組織修復に伴う完全な再上皮化が観察されました。さらに、5ヶ月後の臨床フォローアップでは、損傷部位の質感と柔軟性が良好であることが示されました。本表に示した通り、1回のステップで処理可能な生検検体の閾値を8個、4個、および3個に設定し、良好な細胞生存率を維持するための最適な分散条件を特定するため、4つの異なる時間で組織の分散を行いました。このビデオで実演している機械的分散では、無傷の組織と比較して異なる時間で評価した際、表皮および真皮を含むすべての皮膚サンプルにおいて平均30%の細胞生存率が維持されています。このグラフは、培養開始から24時間後または7日後において、培養中のホモジナイズ時における皮膚組織サンプルの細胞生存率に、開始時と比較して実質的な変動が見られなかったことを示しています。しかしながら、培養開始時と比較して、死細胞サンプルの生存率は培養24時間後に低下していることが観察されました。一方で、培養7日後には細胞生存率が回復しました。真皮においても同様の結果が観察されました。この手法を習得し、適切に実施すれば、5分で完了させることができます。この手順を行う際は、皮膚から上皮層を取り除くことが重要です。この処置に続き、骨組織の分散などの他の手法を行うことで、骨の治癒メカニズムといった別の課題を検証することが可能です。本技術の開発により、再生医療および組織工学分野の研究者が、患者における組織治癒を探索することが可能となりました。このビデオを視聴することで、このマイクログラフト処置の実施方法を十分に理解できるはずです。組織を扱う際は、極めて危険な場合があることに留意してください。また、本手順を実施する際は、保護メガネの着用などの安全対策を常に講じてください。

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この論文の目標は、表皮のケラチノサイトと非活性化されたヒトの真皮から遺伝子組み換えヒトの器官型皮膚を生成する方法について、包括的かつ詳細なプロトコルを提供することです。...

失活ヒト真皮を用いて遺伝子組換え器官皮膚培養物の生成

我々は、高分子crowders（MMC）を使用して、細胞外マトリックスタンパク質に富む細胞由来のマトリックスを得るためのプロトコルを提示します。また、我々は、コンストラクトの成熟度を維持しながら、培養時間を減少させる3D器官型皮膚共培養世代でMMCを組み込むプロトコルを提示します。...

2Dと3Dの肌の改善<em&gt;インビトロ</em分子クラウディングの使用&gt;モデル

ここで収穫を生産するためのプロトコルを説明ドナーを引き起こすことがなく全層皮膚組織を収集するために使用することができます針サイト瘢痕します。針は、大量収穫を達成するために単純なコレクション...

配向柱状組織を採取するための装置

これらのケラチノ サイトと線維芽細胞を用いた誘導多能性幹細胞由来ケラチノ サイトと線維芽細胞を区別し、3 D 肌 organoid を生成する方法を示すプロトコルを提案します。このプロトコルには、ヒト化マウス...

臍帯血由来から 3 D 肌 Organoid の生成誘導多能性幹細胞

本研究の目的は、火傷治癒のマウスモデルを開発することであった。熱熱熱は、予熱された真鍮テンプレートを使用してマウスの後部皮膚に誘発された。焼失した組織は、遺伝的に類似したドナーマウスの尾から採取した皮膚移植片で破片化され、重ね合わせた。...

同種異系皮膚移植片で再建された火傷のマウスモデル

本プロトコルは、非肥満糖尿病(NOD)-scidインターロイキン-2ガンマ鎖受容体(NSG)マウスにヒト皮膚を移植する方法を記載している。移植のためのヒト皮膚の準備、移植のためのマウスの準備、分割厚さのヒト皮膚の移植、および移植後の回復手順の詳細な説明がレポートに含まれています。...

in vivoでヒト免疫応答を操作するための異種移植片皮膚モデル

学ぶ 皮膚マイクログラフトの新規脱凝集法。バイオプシーパンチで採取した皮膚組織の上皮層を除去し、生理食塩水と混合して即座に使用可能な自家組織片を作成する技術です。創傷治癒や再生医療の現場で細胞生存性を維持しながら迅速に適用できます。

スキンマイクログラフト世代の新しい脱凝集法後の組織性状

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