Name: ショットガンプロテオミクスにある深さの特徴付けのためLERLIC-MS / MSおよびグルタミンの定量化およびアスパラギン脱アミド (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-09T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 1 s
Description: 学ぶ LERLIC-MS/MS法によるショットガンプロテオミクスでグルタミンとアスパラギンの脱アミド化アイソフォームを定量化・特徴付ける手法。長さのあるイオン交換カピラリーカラムを用いてイソマー分離能力を最大化し、複雑なプロテオームにおける生化学的プロセスを解明する。

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シンガポール国立医学研究評議会（NMRC-OF-IRG-0003から2016）、およびNTU-NHGエイジング研究助成（：この作品は、一部には教育のシンガポール省（/ 15 ARC9を付与ティア2）からの助成金によってサポートされていましたグラントARG / 14017）。私たちは感謝の意を表したいと親切に博士アンドリュー・アルパートとポリICチームに最も誠実な感謝は、この研究を可能にした梱包資材を提供してくれました。

ロング丈陰イオン交換（LAX）キャピラリカラムをパッキング1 （注：LAX列は家庭内、我々はこのプロトコルで説明したように充填し、LAX列も市販されていることができるが、詳細については材料および試薬の表を参照のこと）。 <ol><li>スラリーを調製するために緩衝液 （ 表1） パッキングの3.5 mLの弱い陰イオン交換充填物質50mgを停止します。 </li><li>メス - メス金具、フェルールと雌ナットを使用して、 - キャピラリーカラム（200μmの内径（ID）チュービング長さ50cm）の端部を組み立てます。メス - メス継手内部の1ミクロンの細孔サイズの画面1/16&quot; ODを置きます（注：ここで使用し、画面からの材料の漏れを防止するために梱包材の粒子径よりも小さな細孔径を持っている必要がありますカラム）。 </li><li> 4,500 psiで作動圧ポンプを用いてスラリーを毛細管を詰めます。 （注意：coluを梱包MN充填材がカラムのエントリに表示されるまで）。 </li><li>点1.2に記載されているように、キャピラリカラムのもう一方の端を組み立てます。 </li></ol> 2.試料の調製このプロトコルは、モデルプロテオームとしてヒト脳組織を分析するためにLERLIC-MS / MSのアプリケーションの概要を示します。 （注：他の組織又はプロテオミクスサンプルを使用する場合には、サンプル調製手順を適合させるべきです。） <ol><li>組織均質化： A。三回5分間、1×リン酸緩衝溶液で洗浄脳組織（50から100mg）。 B。 1：1の組織をホモジナイズ2.5組織/金属ビーズ/ SDC均質化緩衝液 （ 表2）の比（W / w / v）の組織ホモジナイザーを使用して、最大強度で安全ロック管中、4℃で5分間。 （注：以前3に示すようにSDC均質化緩衝液は、プロテアーゼ阻害剤を含んでいてもよいです） C。あちこち得られ、組織ホモジネートを遠心10,000×gで、10分間、4℃で、前のステップを、mおよび新しい1.5mlチューブに上清を集めます。 D。残りのペレットのためのBCの手順を繰り返し、何のペレットが観察されなくなるまで、必要に応じて何度でも上清を兼ね備えています。 （注意：あなたが2倍以上のBCの手順を繰り返している場合は、遠心分離工程中にサンプルの損失を防ぐために、新たな安全ロックチューブにサンプルとビーズを移動させます）。 電子。ビシンコニン酸アッセイ（BCA）12により得られたホモジネートのタンパク質濃度を定量します。 </li><li>デオキシコール酸ナトリウム（SDC）は、脳ホモジネートの溶液内トリプシン消化13を -assisted。 A。タンパク質ジスルフィド結合の還元を開始するために得られたホモジネートに（ 表3の溶液5に示されているストック溶液を使用して）、10mMのジチオスレイトール（DTT）の最終濃度を加えます。 B。浴中で30分の間、ホモジネートをインキュベート60°Cで予備設定。 C。ホモジネートを、表4の液7に示されているストック溶液を用いて20mMのヨードアセトアミド（IAA）の最終濃度を加えます。 D。 45分間暗所で室温でIAAを含有ホモジネートをインキュベートします。 電子。脳ホモジネート希釈緩衝液を用いた2折り目（ 表3の溶液6）を希釈します。 F。 37℃で30分の間に第2還元工程のためにサンプルをインキュベートします。 グラム。 （w / w）のタンパク質対酵素比1：50で表2の溶液2中に溶解し、配列決定グレードの修飾トリプシンを加えます。 時間。 30°Cで一晩インキュベートすることによりトリプシンでホモジネートを消化。 私。ギ酸（FA）の0.5％の最終濃度を添加することにより、翌日に酵素消化をクエンチします。 （注意：FAの添加は酸性条件下でSDC塩の沈殿の原因となります。） J。ゆっくりSDC precipiを含むサンプルをボルテックスtates。 K。 10分の間、12,000×gでサンプルを遠心分離することにより、SDC塩をダウンペレット4°C。 リットル。上清を収集し、きれいな新しいチューブに液体を移します。 （注：していない再懸濁および/またはSDCペレットから塩を収集するために、この段階のピペット操作の際に注意してください。） メートル。 1分間激しくボルテックス下SDC再溶解バッファー （ 表5）におけるSDCペレットを再溶解させます。 n個。手順を繰り返し、沈殿したペプチドを回収し、上清を組み合わせることが二回JL。 （注：セラら見るここに適合SDC支援溶液内トリプシン消化プロトコルに関するさらなる詳細については、2016年13。）。 </li><li>トリプシンの脱塩は、サンプルを消化しました。 A。 1グラムC-18カートリッジを用いて消化した試料の脱塩を行います。 （注：独立してサンプル中の残りのSDC塩の保証適切な洗浄前に得られたタンパク質の量の大きな体積カートリッジ（5 mL）を使用しLC-MS / MSに注入します。） B。アセトニトリル5ml（ACN）と1グラムC-18カートリッジのコンディショニングを行います。 C。残りの有機溶媒を除去するために条件付け1グラムC-18カートリッジによりクリーンアップバッファ （ 表6）を5mLを渡します。 D。 1グラムC-18カートリッジにサンプルをロードします。 電子。 クリーンアップバッファ 5mLの各ステップを使用して、1グラムC-18カラムで試料に5クリーンアップ手順- 3を実行します。 F。 溶出緩衝液の5mLの（ 表7）を使用して1グラムC-18カートリッジから脱塩したペプチドを溶出させます。 グラム。真空濃縮で溶出されたペプチドを乾燥させます。 C。 溶出緩衝液の200μLの最終体積で乾燥サンプルを再構成します。 （注：完全に注入緩衝液中で乾燥したペプチドを再懸濁するために30分の間、超音波処理浴内の後続の超音波処理に続いて使用活発と長い（&gt; 10分）ボルテックスします。） D。 ANAにLERLIC-MS / MSのための試料の注入量を調整しますタンパク質の1〜3μgの間lyze。 </li></ol> 3.一次元LERLIC-MS / MS分離<ol><li>液体クロマトグラフィー条件： 移動相： A：水中の0.1％FA（ 表8）。 B：0.1％ACNでFA（ 表9） 流量：0.4μL/分 コラム：LAXのキャピラリカラム（長さ50cm - 200μmのID） A。 - 434分間、85％のB、85から522分間、70％B、70から124分間、35％B 35 - 45分間、3％B 40分95％B、95：次の1200分の勾配を使用し、5分間、3％B、3での定組成 - 7分かけて95％Bおよび23分間、95％Bでの定組成保ちます。 B。セラ・Gallart-パラオらに示されているようにLAXキャピラリーを用いたペプチドの分離を行います。 3超高圧液体クロマトグラフィーを用いて。 </li><li>質量分析計の設定： A。 betweを交互にデータ収集を実行するためにスキャンイベントの詳細を設定しますENフルフーリエ変換質量分析（FT-MS）及びフーリエ変換 - タンデム質量分析（FT-MS / MS）を以下のパラメータで： A.1。データ取得モード：正 A.2 FT-MSパラメータ： 質量範囲：350 - 2000メートル/ Z 解像度：60,000 マイクロスキャン：スペクトルあたり1 自動ゲイン制御：1×10 6 A.3 FT-MS / MSパラメータ： 断片化モード：高エネルギー衝突解離（HCD） A.4質量範囲：150 - 2000メートル/ Z A.5解像度30,000 10：トップNイオンA.6 マイクロスキャン：スペクトルあたり1 状態を充電してください：&gt; 2+ 分離幅：2ダ A.7自動ゲイン制御：1×10 6 B。 1.5キロボルトで働くナノエレクトロスプレーイオン源を備えたオービトラップ質量分析計を用いて3に示されるように、ペプチドの質量分析検出を行います。 </li></ol> 4.データ解析<ol><li> proteを実行しますLERLIC-MS / MSにデータベース検索で特定プロテオミクスソフトウェアを使用して、以下のパラメータを使用してデータを得た：（注：詳細については3を参照）。 A。イオン許容度：10 ppmの B。フラグメントイオンの許容範囲：0.05ダ C。偽発見率（FDR）：1％ D。データベース：UniProtの人間のデータベース 電子。修正された修正：CysでのCarbamydomethylation F。可変修飾（ソフトウェアにより必要な場合）：酸化（MET）、脱アミド化（AsnおよびGlnの）。 </li><li>自信特性とLERLIC-MS / MSデータで異性脱アミド産物の定量： A。分析のためのspreedsheetソフトウェアにLERLIC-MS / MSからエクスポートしたデータベースの検索結果。 B。脱アミド化ペプチドおよびその非脱アミド化対応のリスト全体を検索して抽出します。 C。参照として得られたペプチドのリストを使用して、質量公差の5 ppmのappropiateソフトウェアを使用して、これらのペプチドのイオンクロマトグラム（XICs）を抽出します。 （注意：XICsの抽出に使用されているソフトウェアの更なる詳細については3を参照してください。） D。視覚的に示されている3などの異性体生成物の分離された二重ピーク溶出を識別するために、得られたXICsを調べます。 （注：MS / MSレベルで同定されたペプチドの異性体生成物を容易にデータベース検索結果内の2つの異なる保持時間の存在によって導か見出すことができます。） 電子。各脱アミド化部位/ペプチドからの異性体生成物の相対的定量化は、得られたXICsで識別された各異性体のピーク面積に基づいて行わなければなりません。 </li></ol>

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</ol>

著者は、開示することは何もありません。

このビデオ記事では、LERLIC-MS / MS 3、深い特徴付けを実行し、正確タンパク質脱アミド化の程度およびこのタンパク質の修飾に関与する酵素プロセスを決定するための方法のステップバイステップのプロトコルを提示します。 LERLIC-MS / MSは、静電反発-親水性相互作用クロマトグラフィー（ERLIC）27の原理の下で長尺（50センチメートル）LAXの使用に基づいています。我々の研究3に示すように、長尺カラムの使用は、それらの等電点27に係る別ペプチドにERLICの可能性を最大化します。 LERLIC-MS / MSは、新規ショットガン一次元分離戦略3に示されるように、それは非常に複雑なプロテオームにおける最適な結果を得るために1200分の勾配を必要とするが、サンプル処理中に時間オン手を保存ワークフローを表します。 60分gradien...

脱アミド化は、タンパク質の翻訳後修飾アスパラギン（ASN）および/またはグルタミン（Glnの）残基1の変形を介してタンパク質主鎖に負電荷を導入する（PTM）です。 2：1の比率のAsn残基に影響を与える一方、この変形は、一般的な3で異性体生成物イソアスパラギン酸（isoAsp）およびN -アスパラギン酸（ASP）を生成します。それにもかかわらず、この比率は、修復酵素のL-イソアスパルチルメチルトランスフェラーゼ（PIMT）3、4の介入によって改変することができます。同様のGln残基の脱アミド化が期待1に異性体-γ-グルタミン酸（γ-Gluで）およびα-グルタミン酸アイソフォーム（α-Gluの）を生成する：7比3、 図5に示すように、この比は、の作用によってシフトさせることができますユビキタス酵素トランスグルタミナーゼ2及び他のトランスグルタミナーゼを含むトランスグルタミナーゼ1、E脳6の細胞外小胞に関連付けられているようnzyme最近同定されました。 脱アミド化の起点が自発的または酵素的のいずれかであることができ、前者は、トランスグルタミナーゼたのGln残基で特に一般的であり、他の酵素は、アミド交換を介して、内/分子間架橋を媒介する（いくつかの慢性中のGlnアミド交換とその影響について詳細については3を参照致命的なヒト疾患）。したがって、脱アミド化は影響を受け分子4、7、8の構造および機能に重大な波及を有し、9老化の分子時計としてのサービスなど、多様な生化学的結果に照らして、深い化学的特性3を必要とPTMであります。 アスパラギン残基の脱アミド化はされているが<html>比較的ボトムアップショットガンプロテオミクスによって十分に特徴付け1、10、のGln残基の脱アミド化は、依然として電子系ラジカルフラグメンテーション11によってモデル化合物の困難な分析を越えて適切な特徴付け方法を持ちません。我々は最近、1回の分析で複雑な生物学的サンプルとモデル化合物からのGlnおよびAsn脱アミド化アイソフォームの分離を可能にする新規な一次元ショットガンプロテオミクス戦略（LERLIC-MS / MS）3を開発しました。 LERLIC-MS / MSは、長尺（50センチメートル）静電反発 - 親水性相互作用クロマトグラフィー（ERLIC）モードで作業イオン交換カラム（LAX）を用いてトリプシン消化ペプチドの分離に基づいており、タンデム質量分析に連結されています（LC- MS / MS）。この新しい分析戦略を特徴づけると、比較的人間の脳組織内の各脱アミド残基の度合いを定量するために使用されてきましたF &quot;&gt; 3。それにもかかわらず、ここで説明したプロトコルは、関心の生化学的文脈においてタンパク質脱アミド化の特殊性を研究することを目的としたLERLIC-MS / MSのビデオ画像を提供します。 倫理STATEMENT このプロトコルのすべての手順は、シンガポールのナンヤン工科大学の施設内倫理委員会によって承認されていると制度のガイドラインに基づいて行われてきました。

<table><tbody><tr><td>ポリキャット3 & マイクロ;メートル100-&Aring;(バルク材)</td><td>PolyLC株式会社</td><td>特注</td><td></td></tr><tr><td>長尺イオン交換キャピラリーカラム 50 cm - 200 & micro;m ID</td><td>PolyLC株式会社</td><td>特注</td><td></td></tr><tr><td>PEEKsil チューブ 1/16" OD x 200 & マイクロ;m ID x 長さ50 cm</td><td>Trajan Scientific AustraliaのSGE分析科学&nbsp;</td><td>620050</td><td></td></tr><tr><td>1/16 インチ OD チューブ用メス - メス フィッティング</td><td>アップチャーチ サイエンティフィック</td><td>UPCHF-125</td><td></td></tr><tr><td>マイクロフェルール</td><td>アップチャーチ サイエンティフィック</td><td>UPCHP-416</td><td></td></tr><tr><td>マイクロフェルール</td><td>アップチャーチ サイエンティフィック</td><td>UPCHF-132</td><td></td></tr><tr><td>圧力爆弾 ナノボーム</td><td>ウエスタン フルイズ エンジニアリング</td><td>SP-400</td><td></td></tr><tr><td>島津製作所 プロミネンス UFLC島</td><td>津</td>製作所製 <td>プロミネンス UFLC</td><td></td></tr><tr><td>バレットブレンダー</td><td>ネクストアドバンス</td><td>BBX24</td><td></td></tr><tr><td>セーフロック管</td><td>エッペンドルフ&nbsp;</td><td>T9661-1000EA</td><td></td></tr><tr><td>ステンレス製ビーズ 0.9 &ndash; 2.0 mm. 1 lb. 非滅菌。</td><td>Next Advance</td><td>SSB14B</td><td></td></tr><tr><td>卓上型遠心分離機&nbsp;</td><td>Hettich Zentrifugen</td><td>Rotina 380 R</td><td></td></tr><tr><td>Standard Digital Heated Circulating Bath, 120VAC</td><td>PolyScience 8006 6L</td><td>8006A11B</td><td></td></tr><tr><td>Sep-pack c18 脱塩カートリッジ 50 mg</td><td>Waters</td><td>WAT020805</td><td></td></tr><tr><td>Vacumm concentrator</td><td>Eppendorf&nbsp;</td><td>コンセントレータプラスシステム</td><td></td></tr><tr><td>Dionex UltiMate 3000 UHPLC&nbsp;</td><td>Dionex</td><td>UltiMate 3000 UHPLC&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Orbitrap Elite質量分析計</td><td>Thermo Fisher Scientific Inc.</td><td>ORBITRAP ELITE</td><td></td></tr><tr><td>Michrom Thermo CaptiveSpray&nbsp;</td><td>ミクロム・ブルカー(株)</td><td>TCSI-SS2</td><td></td></tr><tr><td>インキュベーター INCUCELL&nbsp;</td><td>MMM Group</td><td>INCUCELL111</td><td></td></tr><tr><td>シーケンシンググレードの修飾トリプシン</td><td>Promega</td><td>V5111</td><td></td></tr><tr><td>プロテアーゼ阻害剤カクテル錠</td><td>Roche</td><td>11836170001 (ROCHE)</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝液 10 倍 (1 倍に希釈)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>P5493</td><td></td></tr><tr><td>酢酸アンモニウム</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A1542</td><td></td></tr><tr><td>デオキシコール酸ナトリウム</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D6750</td><td></td></tr><tr><td>ジチオスレイトール</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D0632</td><td></td></tr><tr><td>ヨードアトアミド</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>i6125</td><td></td></tr><tr><td>ギ酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F0507 (HONEYWELL)</td><td></td></tr><tr><td>水酸化アンモニウム</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>338818 (HONEYWELL)</td><td></td></tr><tr><td>アセトニトリルHPLCグレード</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>675415</td><td></td></tr><tr><td>イソプロパノールHPLCグレード</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>675431</td><td></td></tr><tr><td>ウォーターHPLCグレード</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>14263</td><td></td></tr></tbody></table>

ショットガンプロテオミクスにある深さの特徴付けのためlerlic-ms / msおよびグルタミンの定量化およびアスパラギン脱アミド

LERLIC-MS/MS for In-depth Characterization and Quantification of Glutamine and Asparagine Deamidation in Shotgun Proteomics

タンパク質脱アミド化の特性は、人間の病理および他の生化学的文脈におけるこのタンパク質の翻訳後の改変（PTM）の役割（複数可）と潜在的可能性を解読することが不可欠です。タンパク質の脱アミド化の特徴付けを行うために、我々は最近、グルタミン（Glnで）およびアスパラギン（ASN）アイソフォームを分離することができる新規な長尺静電反発力、親水性相互作用クロマトグラフィー - タンデム質量分析法（LERLIC-MS / MS）法を開発しました高度に複雑な生物学的サンプルにモデル化合物から脱アミドの製品。 LERLIC-MS / MSは、従って、Glnの脱アミド化アイソフォームの分離および定量のための最初のショットガンプロテオミクス戦略です。我々はまた、ここで概説試料処理プロトコルはLERLIC-MS / MSによって、その特徴付けを可能スクシンイミド中間体を安定化すること、ノベルティとして、実証します。この動画の記事に示されているようLERLIC-MS / MSの応用は、現在unknowを解明するのに役立つことができますタンパク質の脱アミドのN分子アレイ。また、LERLIC-MS / MSは、異なる生物学的背景に脱アミド化を包含する酵素反応のさらなる理解を提供します。

GlnおよびAsn残基の脱アミド化は、いくつかの慢性および致命的な病気14に関与する変性タンパク質修飾（DPM）であると考えられます。このPTMは、人体と同様の生物学的背景1、15に抗体および他の分子の半減期および分解状態を予測できることが実証されています。タンパク質脱アミド化の重要性は、実際には、生物医学的な文脈を超え、したがって、この変更は、17の多様なプロテオーム16中に存在し、いくつかの研究は、絵画や遺跡18の正確なデートを実行する時に脱アミド化の可能性を実証してきた、19 。重要性と多様な背景中のタンパク質脱アミド化の機能は、長い時間のために確認されているが、再ごく...

ここでは、長尺の静電反発力 - 親水性相互作用クロマトグラフィー - タンデム質量分析（LERLIC-MS / MS）方法のステップバイステップのプロトコルを提示します。これは、ショットガンプロテオミクスによってグルタミンとアスパラギン脱アミド化アイソフォームを初めて定量および特徴付けのために有効に小説の方法論です。

ショットガンプロテオミクスにある深さの特徴付けのためLERLIC-MS / MSおよびグルタミンの定量化およびアスパラギン脱アミド

Characterization of protein deamidation is imperative to decipher the role(s) and potentialities of this protein posttranslational modification (PTM) in ...

本手順の全体的な目的は、ショットガンプロテオミクスを用いて、複雑なプロテオーム中の内因性グルタミンおよびアスパラギン脱アミド化生成物を特性評価および定量することです。この手法は、グルタミンおよびアスパラギンの脱アミド化によるアイソマー生成物に対する、自発的および非酵素的なプロセスの影響など、生化学における重要な疑問への回答に役立ちます。この手法の主な利点は、グルタミン脱アミド化アイソマーが長尺のイオン交換キャピラリーカラムで分離されるため、等電点によるペプチドの分離能が最大化されることです。カラム作製を開始するには、50 milligramsの弱陰イオン交換充填剤を3.5 millilitersの90%イソプロパノール（水溶液）に懸濁させます。内径200 micrometers、長さ50 centimeterのPeak製チューブの一端に、メス-メス継手（マイクロフェルール）とメスナットを固定します。マイクロフェルールの内側にあるチューブの末端に、孔径1 micrometerの1/16インチスクリーンを装着します。4,500 psiに設定したプレッシャーポンプを使用し、アニオン交換樹脂をキャピラリーに充填し、上端に材料が見えるまで詰めます。充填したキャピラリーの反対側の端に、別のメス-メス継手、マイクロフェラル、およびメスナットを取り付け、カラムの組み立てを完了させます。50〜100 mgの組織を、リン酸緩衝生理食塩水で5分間洗浄します。この洗浄を2回繰り返し、洗浄した組織を安全キャップ付きのチューブに入れます。各チューブに、組織重量と同量のステンレスビーズと、1% sodium deoxycholateを含む100 millimolar 酢酸アンモニウム水溶液を容量比で2.5倍量加えます。4°Cで最大強度にて5分間、組織をホモジナイズします。次に、均質液を10,000 x g、4 °Cで10分間遠心分離します。上清を1.5 mLチューブに移します。組織ペレットの均質化と遠心分離を繰り返し、ペレットが観察されなくなるまで、毎回上清を回収して合わせます。BCA法を用いて、合わせて得られた上清中のタンパク質濃度を定量します。次に、サンプル中のジチオスレイトール濃度が10 mMになるように、100 mM酢酸アンモニウムに含まれる1 Mジチオスレイトール溶液をホモジネートに添加します。ホモジネートを60 °Cのウォーターバスで30分間インキュベートします。ホモジネートに、サンプルのヨードアセトアミド濃度が20 mMとなるように、100 mM酢酸アンモニウムに含まれる1 Mヨードアセトアミド溶液を加えます。ホモジネートを遮光し、室温で45分間インキュベートします。その後、100 mM酢酸アンモニウムに含まれる10 mMジチオスレイトール溶液を、ホモジネートの2倍量の体積で加えて希釈します。ホモジネートを37°Cで30分間インキュベートします。サンプル中のタンパク質と酵素の重量比が1:50になるように、100 mM 酢酸アンモニウムに含まれるシーケンシンググレードの修飾トリプシンを十分な量、ホモジネートに添加します。サンプルを30°Cで一晩インキュベートし、ホモジネートを消化させます。サンプル重量の0.5%のギ酸を加えて消化反応を停止させ、デオキシコール酸ナトリウム（SDC）塩を沈殿させます。SDC塩を含むサンプルを穏やかにボルテックスし、次いで12,000 x g、4 °Cで10分間遠心分離します。SDC塩のペレットを乱さないように注意しながら、上清を新しいチューブに移します。塩を0.5%（容量比）の水酸化アンモニウム水溶液に再溶解し、激しくボルテックスします。1 gのC-18吸着剤カートリッジに5 mLのアセトニトリルを、続いて0.1%トリフルオロ酢酸水溶液5 mLを流してコンディショニングします。その後、消化したサンプルをカートリッジにロードします。0.1% TFAを5 mLずつ用いて、サンプルを3〜5回洗浄します。次に、ペプチドを75%アセトニトリルおよび0.1%ギ酸の水溶液5 mLで希釈します。真空濃縮機で液体を乾燥させます。残渣に0.1%ギ酸含有75%アセトニトリルを200 µL加えます。混合物を10分間以上ボルテックスし、その後、乾燥したペプチドを再溶解させるために30分間以上超音波処理を行います。注入されるサンプルに1〜3 µgのタンパク質が含まれるように、必要に応じてサンプルを希釈します。LAXキャピラリーカラムを超高圧液体クロマトグラフィー装置に接続します。水およびアセトニトリルで0.1%ギ酸溶液を調製します。流速を0.4 µL/minに設定し、1,200分のグラジエントランをセットアップします。フルフーリエ変換質量分析とフーリエ変換タンデム質量分析の間でデータ収集を交互に行うように、質量分析計のスキャンイベントを設定します。LERLIC MS/MSを実行して、ペプチドの分離および特性解析を行います。得られたデータとプロテオミクスソフトウェアを使用して、タンパク質データベース検索を行います。データベースの検索結果をスプレッドシートソフトにエクスポートします。脱アミド化されたペプチドのリストと、それに対応する非脱アミド化ペプチドを特定し、抽出します。これらの各ペプチドについて、質量許容範囲を5 ppmとしてイオンクロマトグラムを抽出します。抽出イオンクロマトグラムを確認し、異性体生成物による二重ピークの錯覚が分離していないか検査します。LERLIC MS/MSを用いて、タンパク質試料からグルタミンおよびアスパラギンの脱アミド化アイソフォームを2つの異なる保持時間で分離し、同定しました。また、反転したγ-αグルタミル比を示す、トランスアミダーゼ反応により酵素的に修飾された中間体グルタミン残基を同定しました。この手法を用いて、アスパラギン残基におけるコハクイミド中間体も同定されました。緩やかな酸性の試料処理条件が、コハクイミド中間体を安定化させるためです。このことは、LERLIC MS/MS法が、プロテオーム全体にわたるコハクイミド中間体の研究に適用可能であることを示唆しています。この技術の開発により、生化学の研究者は、考古学から生物医学研究に至るまで、さまざまな文脈におけるタンパク質の脱アミド化を特性評価することが可能となりました。

lerlic-msms-for-depth-characterization-quantification-glutamine

Research

JoVE Journal

Biochemistry

生物化学

キャプチャ化合物は、光架橋および精製に続いて​​機能的な可逆小分子 -...

メチルトランスフェラーゼのプロファイリングおよびその他の S -アデノシル- L</subキャプチャの複合質量分析法（CCMS）別> -ホモシステイン結合タンパク質

出典:Wulf, M., et.al.ニューロメラニン顆粒のプロテオミクスプロファイルのLC-MS / MS分析のためのレーザーマイクロダイセクションベースのプロトコル。J. Vis.

ヒト脳組織から単離されたニューロメラニン顆粒のプロテオミクスプロファイルのLC-MS/MS分析

還元ジメチル化（REDIラベリング）によるペプチドの安定同位体標識は、正確な質量分析に基づく定量的プロテオミクスのための迅速、安価な戦略である。ここでは、ほぼすべてのサンプルタイプに適用することができるのRediアプローチを使用してタンパク質混合物の調製および分析のためのロバストな方法を示す。...

安定同位体標識するための還元ジメチル化を用いた定量的プロテオミクス

このプロトコルは、選択された反応モニタリングを使用して、複雑な生物学的サンプル内の標的タンパク質の絶対定量アッセイを実行する方法を説明しています。これは、マウスマクロファージ走化性シグナル伝達経路のタンパク質を正確に定量するために使用されました。標的ペプチドの選択、アッセイ開発、定性的および定量的アッセイについて詳しく説明します。...

絶対タンパク質定量のための質量分析法を選択反応モニタリング

血漿中のプロテオミクスとグライコミクスの精製、およびLC-MS/MS定量を組み合わせたハイスループットプロトコルが開発されました。N-結合型グリコシル化モチーフの脱アミド化解析は、脱グリコシル化部位に特異的でした。糖鎖ヒドラジドタグ法による標識では、フィルターを用いたN型糖鎖分離と個別性標準化を組み合わせることで、N型糖鎖の正確な定量が達成されました。...

定量的グライコミクスおよびプロテオミクス複合精製戦略

ここでは、ラベルフリーの定量的質量分析法を用いたタンパク質相関プロファイリングに続く親和性タンパク質複合体の精製と青ネイティブPAGEによるそれらの分離のためのプロトコルを提示します。この方法は、異なるタンパク質複合体へのインタラクトームを解決するのに便利です。...

ブルーネイティブPAGEおよびタンパク質相関プロファイリングによってアフィニティー精製タンパク質複合体の解決

正確に高分解能質量分析計を接続した液体クロマトグラフィーによる定圧ラベリング、広範な分別、バイオインフォマティクス...

定圧ラベリング、豊富な液体クロマトグラフィー、質量分析法、およびソフトウェアによる定量化して深いプロテオームをプロファイリング

記載されたプロトコルは、ラベルベースとラベルフリー定量の2つのアプローチを用いて、組織サンプルの最適化された定量プロテオミクス分析を提供します。ラベルベースのアプローチは、より正確なタンパク質定量の利点を有する一方で、ラベルフリーアプローチはより費用対効果が高く、コホートの何百ものサンプルを分析するために使用されます。...

組織サンプルの質量分析ベースのショットガンプロテオミクスの包括的ワークフロー

タンパク質アルギニン(R)-メチル化は、複数の生物学的経路を調節する広範な翻訳後修飾です。質量分析は、修飾ペプチド濃縮のための生化学的アプローチと組み合わせると、R-メチルプロテオームをグローバルにプロファイリングするための最良の技術です。ここでは、ヒト細胞における全体的なR-メチル化を高信頼で同定するために設計されたワークフローについて説明します。...

質量分析に基づくプロテオミクスアプローチによるグローバルで信頼性の高いタンパク質R-メチル化分析

ここでは、レーザーマイクロダイセクションを介してヒトの死後黒質緻密組織から神経メラニン顆粒を分離するための堅牢なプロトコルを示します。この改訂および最適化されたプロトコルは、サンプル収集に必要な時間を大幅に最小限に抑え、必要なサンプル量を削減し、LC-MS/MS分析によるタンパク質の同定と定量を強化します。...

ニューロメラニン顆粒のプロテオミクスプロファイルのLC-MS/MS分析のためのレーザーマイクロダイセクションベースのプロトコル

ここでは、ヒト人工多能性幹細胞由来ニューロンにおける動的リソソーム微小環境を特徴付けるために、ニューロンリソソーム近接標識プロテオミクスプロトコルについて説明します。リソソーム膜タンパク質およびリソソームと相互作用するタンパク質(安定または一過性)は、生きたヒトニューロンにおいて優れた細胞内空間分解能でこの方法では正確に定量することができる。...

近接標識プロテオミクスを用いたニューロンリソソームインタラクトームの特性評価

学ぶ LERLIC-MS/MS法によるショットガンプロテオミクスでグルタミンとアスパラギンの脱アミド化アイソフォームを定量化・特徴付ける手法。長さのあるイオン交換カピラリーカラムを用いてイソマー分離能力を最大化し、複雑なプロテオームにおける生化学的プロセスを解明する。

ショットガンプロテオミクスにある深さの特徴付けのためLERLIC-MS / MSおよびグルタミンの定量化およびアスパラギン脱アミド

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