Name: プロシージャおよび自動キャピラリー電気泳動を用いた免疫測定法のためのキーの最適化戦略 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 32 s
Description: 学ぼう、自動キャピラリー電気泳動を用いた免疫測定法の最適化戦略。露光時間、タンパク質濃度、抗体希釈のパラメータ調整により、少量サンプルから迅速かつ再現性の高いタンパク質定量を実現する方法です。

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著者は、研究と開発研究の三角形公園 (ORD RTP) グラフィックとメディア チーム開発のための米国環境保護庁テーピングし、教育のビデオの編集のキース tarpley 氏に感謝したいと思います。またデータ.の最適化に関する役に立つ会話の ProteinSimple からデボラ ・ プリチェットを感謝したいと思いますJM Guynn は、科学教育研究/参加プログラム米国の環境保護庁のオークリッジ国立研究所によって支えられました。

注: 製造業者に従ってすべての試薬とサンプルが準備されていることを確認 &#39; s プロトコルは、以下の通り。この手順、ニトリル手袋、白衣、閉鎖つま先の靴、安全ゴーグルなどの中に適切な個人用保護具を着用してください。特定の材料、試薬や必要な機器のテーブルが個別に提供しています。あらかじめブラッドフォード法 11 のように溶解バッファーを使用すると互換性がある確立された方法論を使用してサンプルの総蛋白濃度を決定する必要があります。
 1 ですサンプルと試薬製造元によって提供された標準的なパックからの準備 <ol>ジチオトレイトール (DTT) の 400 mM の作業ソリューションを準備、透明なチューブを含むに 40 μ l の脱イオン水を追加する <li>、。メーカーから在庫を供給しました。ゆっくりと穏やかなピペットで溶液の混合によってソリューションに気泡を導入することを避けることが重要です</li>。
	<li>追加 20 μ L 10 X サンプルバッファーと 20 μ L 蛍光 5 X を含むピンクのチューブに準備された 400 mM DTT ソリューションのマスター ミックス (材料の表 を参照してください). 
	注: マスター ミックス (MM) ホイル カバーの製造元によって密封される、ピペット チップでピアスする必要があります。ピペットの DTT を水しぶきを避けるために低速ピペッティングで優しくミックス</li>。
	2 μ L のサンプル バッファー、および製造元によって提供白ビオチンはしご管準備の 400 mM DTT ソリューションの 2 μ L × 10 を指定、<li>は次に、16 μ L の脱イオン水を追加します。穏やかに混合し、変性剤濃度を 0.6 mL チューブに移す</li>。
	<li>X サンプルバッファー水とソリューションを 1: 100 X 付属の 10 を希釈して 0.1 準備。十分な 0.1 x すべてのサンプルを希釈するサンプル バッファーを準備します</li>。
	<li>は、最終的な目的総蛋白濃度に依存するサンプルに追加される 0.1 x サンプルバッファーの量を計算します。ミックス 1 パート 5 蛍光 MM x 4 つの部分では、目的最終的な蛋白質の集中を達成するためにサンプルを希釈しました。
	<ol><li>計算通りボリューム: (i) 蛍光 MM x 5 巻 (希望最終的なタンパク質濃度) = 5;/(ii) 蛋白質在庫量 = (必要な容量 x 希望最終的なタンパク質濃度)/蛋白質素材濃度;(iii) ボリューム 0.1 x サンプルバッファー合計ボリューム - 5 MM ボリューム x - 蛋白質の在庫数量を = します</li>。
	</ol></li></ol> 2。サンプルとはしごの変性 <ol><li>に用意された場所のサンプルと、95 ° C の熱ブロック、孵化直後後 5 分ボルテックス チューブをビオチン化はしご実行 〜 5 のスピン卓上遠心と氷の場所で s 
	注: いくつかの蛋白質は蛋白質の集合を防ぐために、キャピラリーのマトリックスに移行を向上させる穏やかな変化の条件 (例えば、70 o C で 10 分間) を必要があります。(たとえばビデオを見なさい) より高い分子量の重いスミアがある場合このオプションを検討してください</li>。
</ol> 3。抗体の調製 <ol><li>最適化によって決定される (代表結果 と ビデオ を参照)、指定された抗体一次抗体 (例えば、1:50、1: 100) の目的の dilution(s) を準備希釈 2. 
	注: 抗体より高い濃度ではより伝統的な西部のしみのためのキャピラリー ベース イムノアッセイの通常使用されます。指定された二次抗体は希釈せずに使用する準備ができています</li>。
</ol> 4。ルミノール-S と過酸化物の準備 <ol><li>ルミノール S と過酸化水素の 1:1 の混合物を準備します</li>。
	<li>ミックス、氷に格納して渦 
	注: この混合物を各実験の試金のために新鮮な用意があることが重要です。250ul 合計ミックスは完全な板を実行に必要な</li>。
</ol> 5。アッセイ プレートの作製 <ol><li> 図 1 で示すように、読み込むサンプルと試薬アッセイ プレートに上記準備します。行ごとに以下の詳細な手順を参照してください。井戸からの蒸発を抑えるようにプレート蓋が試薬の追加と置き換えられます</li>。
	<li>も A1 に A、ビオチン化はしごのピペット 5 μ L の行で。残りの行のピペットは A2 A25 の井戸にサンプル (各 5 μ L) を準備します 。
	注: それはカートリッジ最初の毛細血管は、この標準を実行するため最適化されているので A1 がよく、常にはしごを含まれていること不可欠です</li>。
	<li>B (B1-B25) を各ウェルに抗体希釈 2 ピペット 10 μ L の行にします</li>。
	<li>も C1 に行 C 抗体希釈 2 ピペット 10 μ L で。残りの行の C 井戸、一次抗体 (ウェルズ C2 C25) のピペット 10 μ L.</li>
	<li>も D1 に行 D、ストレプトアビジン-HRP のピペット 10 μ L で。残りの行で D 井戸、二次抗体 (ウェルズ D2 D25) のピペット 10 μ L.</li>
	<li>E (E1 E25) を各ウェルに作りたてのルミノール過酸化ミックスのピペット 10 μ L の行にします</li>。
	<li>は、最後に、各バッファーの井戸の上部 3 行に当たりコンパートメント 500 μ L 洗浄バッファーを追加します 。
	注意: 軽くピペッティングし、泡が毛細血管の読み込みを妨げるし、実行しない先端から最終巻を追放して気泡を最小限に抑えることが重要です</li>。
	<li>すべての井戸を読み込んだら、泡を削除し、井戸の底に液体が確実に部屋の温度で 5 分間 ~ 1000 × g でプレートを遠心分離機します。小ピペット チップまたは清潔な針で任意の目に見える気泡をポップ (例えば、25 ゲージ滅菌 &#34; 担当者トップ &#34; 針).</li>
</ol> <img alt="Figure 1"class="xfigimg"src="/files/ftp_upload/55911/55911fig1.jpg"/> 図 1 。アッセイ プレート ピペッティング テンプレート。色分け適切な試薬、アッセイ プレートに追加のサンプル (最大 24 合計) を表します。A25 まで井戸 A2 からサンプルを準備も A1 (オレンジ) にビオチン化はしごを追加 (水色)、B25 B1 と C1 の井戸に抗体希釈 2 (ライト グリーン)、井戸 C2 C25 (青)、ストレプトアビジン-HRP も D1 にまでに一次抗体 (濃いピンク) に二次抗体D25 まで D2 の井戸 (ダーク グリーン) と E25 (紫) まで E1 の井戸にルミノール過酸化ミックス。洗浄バッファーが大きい中間プレートの最初の 3 つの行に追加されます (紺) の井戸。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55911/55911fig1large.jpg"target="_blank"> この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
 6。 キャピラリーのイムノアッセイ装置の開始 <ol><li>楽器とそれに伴うコンピューターの電源がオンになっていることを確認します。ウォーム アップ時間は必要ありません</li>。
	<li>は、コンピューターで計測ソフトウェアを開きます。最初に、選択、&#34; アッセイ &#34; ウィンドウの右側にあるタブと &#34; 新しいアッセイ &#34; の下で、&#34; ファイル メニュー &#34; 左側。サイズ、サイズの範囲 (例えば、12 230 kDa)、およびカートリッジ選択特定のアッセイに使用された型 (例えば、25 キャピラリー). 
	注: 1 つ 5 月も入力アッセイ パラメーター希望場合蛋白質の集中、抗体の種類、希釈を含むがこれらは測定を開始する必要はありません</li>。
	<li>オレンジのパネルの上にボタンを押すことにより計測器のドアを開きます</li>。
	<li>は、パッケージからキャピラリー カートリッジを慎重に取り外します。ガラス管に触れることがなく、自分自身はカートリッジ ホルダーにカートリッジを配置します。インテリア光のオレンジ色から青色に変化を観察することによってカートリッジの座席を確認してください</li>。
	<li>は、プレートをベンチにしっかりし、プレートの下の部分から蒸発シールを慎重にはがします。Sm とこれらの分離行列の井戸に見られる任意の気泡をポップします。すべてのピペット先端部やきれいな針 (例えば、25 ゲージ滅菌 &#34; 担当者トップ &#34; 針).</li>
	<li>がしっかり確保するプレート ホルダーにアッセイ プレートを置き、計測器のドアを閉じます</li>。
	<li>をクリックして、&#34; 開始 &#34; ソフトウェアでボタンします 。
	注: [スタート] ボタンが表示されない場合、計測器との接続が失われました。トップ左側のメニューから計測器を選択し、接続します。機器のシリアル番号; とポップアップが表示されます。これは、[接続] をクリックします。[スタート] ボタンが表示されます</li>。
	<li>の実行が完了したときは、プレートを破棄します。カートリッジを取り外し、気泡をポップして使用された針と一緒に処分のため鋭利な容器に入れます。楽器が定期的に使用されている場合、接続の問題を避けるために力を残す (例えば、少なくとも毎週) です</li>。
</ol> 7。実験解析 <ol><li>分析前に、確認次の品質チェックが行われます。
	<ol><li>ことを確認を選択して蛍光標準、&#34; 表示基準 &#34; アイコン。基準がで正しく認識されていることを確認、&#34; グラフ ビュー &#34;] タブ。彼らは間違っている場合に行く、&#34; 単一のビュー &#34; 正しいピークを右クリックし、アイコン、&#34; 力標準 &#34;、または不適切なピークを右クリックし、選択 &#34; ない標準 &#34;。各新しい毛細血管にこのチェックを実行します</li>。
		クリックして <li>を確認ビオチンはしご、&#34; サンプル &#34; と &#34; 単一のビュー &#34; アイコン。[実験] タブではしごを選択します。ピークが正しく識別されていない、もし右クリックで &#34; グラフ ビュー &#34; を選択、&#34; 削除ピーク &#34;. 
		注: たとえば、12 230 kDa キット用ビオチンはしごする必要があります表示 12、40、66、116、180、および 230 の kDa のサイズのピーク。この手順を実行しない場合サンプルのピークのサイズが正しく計算されない、誤った結果を生成します</li>。
		<li>ビューおよびサンプル ピークを分析します。実験的計算に必要な信号対雑音 (S/N)、ピークの高さやピーク面積分子量を含むピーク テーブルからデータを取得します</li>。
	</ol>
	</li>
</ol>

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</ol>

著者は、彼らは競合する金銭的な利益があることを宣言します。この原稿が国立健康環境影響研究所によってレビューおよび承認します。コンテンツは、米国 EPA の見解を必ずしも反映しないも支持または推奨される使用法を構成する商号や商品の言及は。

何十年もがずっとあるキャピラリー電気泳動を用いた免疫測定法の開発で持続的な関心低いサンプルと試薬の支出のため、減少処理従来の方法と比較して時間と高い互換性手順4,15を自動化します。毛細血管、ふるい分けの電気泳動、動電、ポリマーと (それぞれ異なるプロパティによってタンパク質を分離、等電点方法などを利用して蛋白質の分離のための異なるプロトコルの数があります。静電気、分配平衡、ふるい分け分離マトリックス、および pH のプロパティ)16。ここでは、自動化されている分離をふるい高分子を用いた抗体ベース (または免疫測定法) のキャピラリー電気泳動法と商業的に採用された3について述べる。このシステムの利点は、使用の操作、標準化された市販試薬と少ない試薬と西部のしみなど伝統的な蛋白質の試金と比較してサンプルを必要とする信頼性の高い、高感度測定の容易さ酵素免疫測定法、その他は、3,4,5を書式設定します。それは、利用可能な分離行列4、しかし最近の製品は 440 kda17 2 から測定可能な範囲を拡大しているによって評価することができます蛋白質のサイズの範囲が制限されており、この技術の以前の評価で指摘されています.さらに、いくつかの溶解バッファーは、18のアッセイに対応する知られている、したがって使用実験試薬の選択考慮されなければならない事前。
市販のコンポーネントを持つ自動化されたプロシージャの主な利点は、標準化された方法と試薬を使用して結果の一貫性です。これはプロシージャ内で重要なステップを自動化してアッセイの失敗のチャンスを最小化します。しかし、キャピラリー電気泳動を用いたイムノアッセイに関する問題を最小限に抑えるためのプロトコル間に特定の慣行が守られなければならないことに注意する重要です。まず、平板載荷の前に新鮮なすぐをルミノール-S/過酸化水素混合物準備は重要です。一貫したタイミングは、一貫性のある発光アッセイ後特定の抗体アッセイの一貫性のある測定値になります、酸化剤を追加した後で発生します。さらに、酸化剤の効力に影響を与える主に試薬の期限切れでないが使用されることが重要です。また、その他の試薬、抗体、サンプルの読み込み順序が (図 1参照) を従うこと厳密に重要です。場違い戻どの試薬は、アッセイの失敗と無駄な実行になります。
これらの重要な手順に加え手法で発生した主な問題は一般的に、最適化によって克服します。確かに、これらの条件はモデル システム/抗体の組み合わせごとに固有であり、したがって各の新しいアッセイの経験的決定する必要があります。この記事で私たちは 3 つの一般的な最適化の手順に焦点を当てる: 露光時間、ライセート滴定および一次抗体希釈。測定可能な結果を生成する能力は、いつルミノール基板はない急速に減らされて、信号の損失で基板の枯渇の結果として露光時間の解析に依存します。ライセートの滴定は、同じ蛋白質ターゲットのための異なった抗体と同様に、別のモデル システムと異なることがそれぞれのアッセイの線形ダイナミック レンジを決定します。抗体希釈濃度を飽和状態に近い選択は無料抗体の不足によって、利用できる蛋白質ターゲット エピトープの異なる量によってのみ、信号の変化は影響しないを確認します。抗体培養時間とスタッキング/サンプル読み込み時間最適化プロセス中にその他の考慮事項があります。ほとんどの場合は、楽器の既定の設定は、解像度と感度の最適なバランスを提供しています。ただし、いくつかの場合、貧しい人々 の解像度や感度を改善できますこれらのパラメーターを調整することによって。
キャピラリー電気泳動を用いた免疫測定法は、高速で効率的、かつ再現性のある蛋白質測定を提供します。一方、これらのメソッドは、研究・開発の設定で主に利用されている、これらの技術の一貫性は、規制と臨床アプリケーションの潜在的なユーティリティと。たとえば、病気の進行と環境毒性や患者に影響を受けやすい集団の同定は、血液、尿、唾液などのアクセス可能な行列の測定蛋白質バイオ マーカーに基づくことが。試薬と操作コスト ドロップ数のサンプルと同時に評価の増加をすることができますターゲットと多分キャピラリー電気泳動を用いたイムノアッセイ法アプリケーションのこれらの種類の使用を見る。

キャピラリー電気泳動イムノアッセイ サイズまたは電荷分離システムを使用してセル lysates の蛋白質の表現を測定し、従来免疫上のいくつかの利点を提供します。たとえば、ゲル、転送デバイス、必要西部のしみと比較して、自動キャピラリー ベースのプロシージャがなくなり、マニュアルを洗います。さらに、必要なタンパク質の絶対量が約 10 倍小さくなりますので毛細血管系稀または限られたサンプル1,2での使用に最適。結果は自動システムを使用して 3 時間ほどで得られるし、以前より定量的で従来の西部よりも再現性が示されている手順3,4、5のしみ。サイズに基づく試金のためのプロセスはドデシル硫酸ナトリウム (SDS) ジチオトレイトール (DTT) のサンプルをロードで構成され、分子量マーカーをスタッキングと分離行列を含むキャピラリーカラムに蛍光ラベルします。毛細血管への電圧はサイズにより試料中のタンパク質を分離し、UV 光が毛細血管壁に分けられた蛋白質を固定化します。毛細血管は、ターゲット固有一次抗体と西洋わさびペルオキシダーゼ (HRP) に免疫をプローブ-共役二次抗体。ルミノール及び過酸化物触媒化学発光の光生成電荷結合素子 (CCD) カメラによる測定は、蛋白質を量的に分析をします。
相対的な容易さ、自動キャピラリーを用いた電気泳動イムノアッセイ プラットフォームの速度にもかかわらず、蛋白濃度、抗体の希釈、露光時間など測定条件の最適化は、正確で再現性を得るため重要結果。一般に、これらのシステムの分析を最適化するために次の手順を実行する必要があります。
1) 画面を実行して、評価し信号の蛋白質ターゲットに特異的抗体を選択ください。の特異性を評価する場合は、浄化された蛋白質またはターゲット エピトープを使用できますただし、総蛋白質モデル システムから供給の潜在的な非固有の信号を評価することが重要です。
2) 次に、測定のダイナミック レンジを決定する必要があります。理想的な状況で、サンプル濃度を倍増; として観察は信号倍増 (ピーク領域を使用して測定される)ただし、実習では、予測可能な方法を (例えば、線形フィット) で入力信号に比例して変化はプロテインの定量のために十分。さらに、この最適化はタンパク質濃度高信号ですがまだ実験的モデルの線形の範囲内を定義します。
3) 固定タンパク質濃度の最適化手順 2 で選択したを使用して最適な抗体濃度を決定します。抗体の濃度が増えると、それは彩度で高原まで信号が増加します。この飽和レベルに近い抗体濃度のタンパク質濃度の正確な測定に必要です。
ベアス-2B、気管支変形 SV 40 人間から分離された全細胞抽出物を用いたタンパク質濃度、抗体希釈液、自動キャピラリーによるサイズ測定6露出時間を最適化するために使用するプロセスを示す上皮細胞線。細胞や組織の抽出物からの蛋白質の隔離公開プロトコル7,8,9の数を使用して実行することができます、ここでは説明しません。最適化された条件を使用して実験の結果は合計の報告、リン酸化 1.2 にドキソルビシン (10細胞アポトーシスを誘導する一般的な化学療法剤) に公開される文化 (セリン 15、セリン 20) p53、1.8 と収穫前に h 4 の 2.4 μ g/mL メディア。P53 のピーク面積は、ɑ-チューブリン、ローディング コントロールとして使用する正規化されます。

<table><tbody><tr><td>Wes instrument</td><td>ProteinSimple (Santa Clara, CA)</td><td>004-600</td><td></td></tr><tr><td>P53 DO-1 一次抗体</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.</td><td>sc-126</td><td></td></tr><tr><td>リン酸化p53 (SER 15) 一次抗体</td><td>細胞シグナル伝達技術</td><td>9286</td><td></td></tr><tr><td>リン酸化p53 (ser 20) 一次抗体</td><td>細胞シグナル伝達技術</td><td>9287</td><td></td></tr><tr><td>α-チューブリン一次抗体</td><td>細胞シグナル伝達技術</td><td>3873</td><td>ローディング制御として使用</td></tr><tr><td>Compass Software</td><td>ProteinSimple (カリフォルニア州サンタクララ)</td><td></td><td>Wes</td></tr><tr><td>12-230 kDaマスターキット</td><td>ProteinSimple(カリフォルニア州サンタクララ)に付属&nbsp;</td><td>PS MK02 (新しいキット#と交換されたため)</td><td></td></tr><tr><td></td><td>www.proteinsimple.com/consumables_sw_wes.html</td><td>部品番号: Wash Buffer (60 mL) 042-202 10X Sample Buffer (440 &mu;L) 042-195 プレフィルドマイクロプレート (8) PS-PP01 キャピラリーカートリッジ (8) PS-CC01 抗体希釈液 II (20 mL) 042-203 ルミノール-S (1.5 mL) 042-233 過酸化物 (1.5 mL) 042-234 ストレプトアビジン-HRP (132 &mu;L) 042-414 Standard Pack (8): ビオチン化ラダー、蛍光5Xマスターミックス、DTT、空0.6mLチューブ PS-ST01 抗ウサギ二次抗体 042-206 or 抗マウス二次抗体 042-205</td><td></td></tr><tr><td>Name&nbsp;</td><td>Company</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>Cell culture, treatment, and harvest (ベンダー推奨のプロトコルを使用、原稿に含まれていないプロトコル)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BEAS-2B cells</td><td>American Type Culture Collection (ATCC, Manassas, VA)</td><td>CRL-9609</td><td></td></tr><tr><td>ケラチノサイト増殖培地、KGM Gold</td><td>Lonza Ltd (バーゼル、スイス)</td><td>192152</td><td>細胞培養用</td></tr><tr><td>ケラチノサイト基礎培地、KBM Gold</td><td>Lonza Ltd (バーゼル、スイス)</td><td>192151</td><td>化学投与用無血清培地</td></tr><tr><td>ドキソルビシン</td><td>Sigma-Aldrich (ミズーリ州セントルイス)</td><td>D1515</td><td></td></tr><tr><td>Coomassie Blue Bradford Assays</td><td>ThermoFisher Scientific (Waltham, MA)</td><td>23200</td><td>タンパク質定量用</td></tr><tr><td>核抽出物キット</td><td>アクティブモチーフ (カリフォルニア州カールスバッド)</td> <td>D1515</td><td>全細胞溶解物</td></tr><tr><td></td><td></td>の調製に使用 <td>含まれるもの:</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>溶解バッファー AM1</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>1M ジチオスレイトール (DTT)</td><td></td></tr> <tr><td></td><td></td><td>プロテアーゼ阻害剤カクテル</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>10X PBS&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>ホスファターゼ阻害剤</td><td></td></tr></tbody></table>

プロシージャおよび自動キャピラリー電気泳動を用いた免疫測定法のためのキーの最適化戦略

Procedure and Key Optimization Strategies for an Automated Capillary Electrophoretic-based Immunoassay Method

キャピラリーを用いたイムノアッセイを活用する新しい技術は、伝統的なイムノアッセイと比較してより速くより定量的なタンパク質評価をお約束します。他の抗体を用いた蛋白質の試金と同様に、タンパク質濃度、抗体希釈露光時間などの毛細血管に基づく免疫パラメーターの最適化は、意味のある、信頼性の高いの世代に重要な前提条件データ。測定は、信号の変化、溶解濃度の変化に直接比例アッセイの線形の範囲内でなければなりません。ひと気管支上皮細胞ライン、ベアス-2B の適切な溶解液濃度、抗体希釈液と露光時間の選択のプロセスは、ここに示されています。アッセイの直線性は、p53 および α-チューブリン抗体と全細胞抽出タンパク濃度の範囲で表示されます。信号燃え尽き症候群の例が長い露光時間で最高濃度に見え、彩度を示す α-チューブリン抗体希釈曲線が表示されます。さらに、実験結果の例は、ドキソルビシン治療細胞最適化されたパラメーターを使用して報告されます。

露光時間-決定信号バーンアウト
信号燃え尽き症候群は、ルミノール及び過酸化基質がなくなるとすぐに発生します。これは、異なる化学発光の露光時間でデータを調べることによって決定できます。解析ソフトウェアで「編集-&#62;-&#62; 画像解析」に行きます。露光範囲は 480 に 5 s。レーザービームの y 軸は、それぞれの露出からのデータと同様の信号/時間係数を持つ必要がありますので信号/時間を報告します。この係数が小さくなる順に長い露光でルミノールを使い尽くすと場合、p53 は 1 抗体 (図 2) で見る。基質の枯渇のためこのアッセイを 5-30 の露出でのみ 0.2 μ g/μ L の濃度まで測定可能で検討できます。したがって、この例では、15 で s は p53 の最適なデータ解析露光時間を決定しました。
ライセートの滴定-線形動的な範囲を決定します。
測定はピーク面積で測定された信号の変化がサンプルの蛋白質の量の変化に比例して各アッセイの線形ダイナミック レンジ内で撮影することが重要です。15 s の選択の最適な露出時間を使用して前のセクションで p53 と ɑ チューブリンのアッセイの直線性を実演上濃度 (図 3) の 15-fold の範囲を超える。我々 の経験の R2値で &#62;、線形回帰の 0.9 と見なされます許容既知量 (場合の試金は絶対定量) またはサンプルの精製タンパク質の希釈範囲の不明なターゲット蛋白ライセート (場合アッセイ相対定量測定は、)。
抗体希釈の最適化
飽和濃度で抗体を使用する測定信号の変化が蛋白量の変化だけによるものであることを確認できます。例として 2 つと 2 b セルライン全細胞抽出 (アッセイに読み込まれる 0.2 μ g/μ L 総蛋白) は希釈した ɑ チューブリン抗体濃度が 1:25 - 1:800 (図 4) に至るプローブされました。化学発光信号 (ここでは、ピーク面積として測定) 抗体希釈に対してプロットしました。彩度は、1:50 近く観察された希釈曲線が顕著な高原を開始します。
実験的試み - ベアス 2 b 細胞におけるドキソルビシンの治療
ベアス 2 b 細胞培養はドキソルビシンの 3 つの異なる濃度の扱われた最適化されたアッセイ条件を使用して、(1.2、1.8 と 2.4 μ g/mL) 4 時間 (図 5、表 1)。翻訳後修飾による p53 の活性化は、細胞周期の停止、老化、アポトーシス12など、いくつかの細胞応答を仲介します。具体的には、15 のセリンのリン酸化は、ドキソルビシン治療13後アポトーシスの結果、p53 の転写活性化に起因しています。このデモでは、ɑ チューブリンはピーク領域は、コントロールの倍として表示を正規化します。興味深いことに、3.5 p53 リン酸化セリンで 4 倍増にドキソルビシンに 4 時間暴露後 20 セリンのリン酸化 p53 のレベル 15 と 2 倍増加がみ。これらの結果を示す p53 の活性化しかし、用量-反応は見られなかった選択濃度 (逆に、低用量のテストでは、最高の応答が誘発される)。総 p53 このモデル システムでは、明確な治療に対する反応を示さなかった。我々 は以前14亜鉛処理と 2 b の細胞で p53 がない場合は同様の条件で総 p53 の増加レベルのリン酸化の活性化を観察しました。
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55911/55911fig2v3.jpg"> 
図 2.露出画像比較信号バーンアウトを検出します。レーン表示 1: 500 希釈で p53 は 1 抗体プローブ ベアス 2 b 溶解液のタンパク質濃度を減少します。化学発光信号係数、計測器ソフトウェアのピーク高さとして報告を重畳しています。ピーク高さとは異なりビジュアル バンド強度が自動的に生成され、バンドとは別に 1 つのパネルから匹敵するの表示を支援する装置によって調整します。信号と消失しつつある (スプリット ピーク) 基質の枯渇を示す 2 つの長い露出で露出時間が増加し、化学発光シグナルの低下を注意してください。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55911/55911fig2v3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55911/55911fig3v3.jpg"> 
図 3.ライセートの滴定がレーンのビューを表示します。車線を示す溶解液の滴定は、ベアス-2 b 1: 500 p53 は 1 または 1:50 ɑ-チューブリン プローブされるときライセートの(A)を表示します。ピーク面積の値とは異なりビジュアル バンド強度が自動的に生成され、バンドとは別に 1 つのパネルから匹敵するの表示を支援する装置によって調整します。線形回帰分析 (B) は、アッセイは、テスト、0.20 μ g/μ L と 0.025 から 0.40 μ g/μ L, R2値 0.999 の 0.985、0.01 からそれぞれ全範囲にわたって線形を確認します。線形範囲の真ん中に総蛋白濃度は、どちらの方向 (例えばα-チューブリンの 0.2 μ g/μ L) の潜在的なターゲット蛋白質バリエーションに合わせて選ばれました。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55911/55911fig3v3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55911/55911fig4.jpg"> 
図 4.2 lysates の別ベアス 2 b タンパク質とベースライン正規化なしの α-チューブリン抗体希釈曲線します。明確な発車直線性からトゥーレは、1:50 (0.02) で見られて希釈、彩度を示します。1:50 したがって、この抗体の希釈として選ばれました。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55911/55911fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55911/55911fig5.jpg"> 
図 5。セリンに 4 h ドキソルビシン (DXN) 治療の効果は、ベアス 2 b 細胞の p53 蛋白発現をリン酸化します。ピーク面積は α-チューブリンに正規化され、コントロール (CTL) の倍としてプロットします。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55911/55911fig5large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Table 1" src="/files/ftp_upload/55911/55911tbl1.jpg"> 
テーブル 1。セリンに 4 h ドキソルビシン (DXN) 治療の効果は、ベアス 2 b 細胞の p53 蛋白発現をリン酸化します。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55911/55911tbl1large.jpg" target="_blank">この表の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

総蛋白製剤からの薬物の標的タンパク質を測定する商用プラットフォームを用いたキャピラリーを用いた免疫測定法が示されています。さらに、露光時間、タンパク質濃度と抗体希釈アッセイ パラメーターは、細胞培養モデル系に最適です。

New technologies that utilize capillary-based immunoassays promise faster and more quantitative protein assessment compared to traditional immunoassays. ...

この手順の目的は、市販のプラットフォームを用いたキャピラリー電気泳動免疫測定法を実演することです。このプラットフォームにより、細胞培養組織や生体試料から得られる生物学的サンプル中の標的タンパク質を識別し、定量します。本プロセスでは、2から440 kilodaltonsの範囲のサイズに基づいてタンパク質を解析します。ウェスタンブロットなどの従来の手法と比較して、この自動化された手順の利点は、キャピラリー電気泳動免疫測定法により、ゲル、転写装置、および手動での洗浄が不要になることです。また、必要とされるタンパク質の絶対量は約10分の1で済むため、希少な細胞型やサンプル量が限られている場合に理想的な手法となります。さらに、自動化システムを使用することで、わずか3時間で結果を得ることができ、従来のウェスタンブロットの手順よりも定量性と再現性が高いことが示されています。製造元の製品説明書に従い、サンプルバッファー、ジチオスレイトール、蛍光マスターミックス、およびビオチン標識ラダーを含むキットのサンプルおよび試薬を調製します。任意の単離方法を用いてタンパク質サンプルを調製してください。本手順では、BEAS-2B細胞培養物から全細胞抽出物を単離しました。タンパク質サンプルをサンプルバッファーで希釈します。5倍濃度の蛍光マスターミックス1部に対し、希釈したサンプル4部を混ぜ合わせ、目的の最終タンパク質濃度にします。以下に、1.2 µg/µLのタンパク質ストック濃度から、最終濃度0.2 µg/µLの溶液を70 µL調製する場合の計算例を示します。マスターミックスは全量の1/5とし、本例では14 µLとなります。必要なタンパク質ストック溶液の量を算出するには、目的の最終濃度に全量を掛け、それをタンパク質ストック溶液の濃度で割ります。全量からマスターミックス量とストック溶液量を差し引いて、サンプルバッファーの量を算出します。調製したサンプルとラダーを95 °Cで5分間加熱し、変性させます。注意点として、一部のタンパク質では、タンパク質の凝集を防ぎ泳動性を向上させるために、例えば70 °Cで10分間といったより緩やかな変性条件が必要になる場合があります。高分子量領域に激しいスメアリングが見られる場合は、このオプションを検討してください。提供された希釈液を用いて、目的の抗体を所定の濃度に希釈して調製します。なお、キャピラリーベースの免疫測定では、従来のウェスタンブロッティングよりも一般的に高濃度の抗体が使用されます。ルミノールと過酸化物の1:1混合物を、使用直前に調製します。テンプレートに示された量に従い、サンプルと試薬をアッセイプレートにピペッティングしてください。色分けは、アッセイプレートへの試薬およびサンプルの適切な分注位置を示しています。ウェルA1にビオチン標識ラダーを、ウェルA2からA25に調製したサンプルをピペッティングします。ウェルB1からB25およびウェルC1に、提供された抗体希釈液を添加します。ウェルC2からC25に一次抗体を添加します。ウェルD1にStreptavidin HRPを添加します。ウェルD2からD25に二次抗体を添加します。ルミノール-過酸化水素混合液をウェルE1からE25に加えます。大型の中間プレートウェルの最初の3行に洗浄バッファーを加えます。キャピラリー免疫測定装置の電源を入れ、付属のソフトウェアを開きます。製造元の指示に従ってキャピラリーカートリッジとアッセイプレートを装置にセットし、ランを開始します。ランの完了後、蛍光標準物質が正しく識別されているかを確認し、必要に応じて修正してください。さらに、ビオチン標識ラダーが使用したキットの正しいサイズピークを示していることを確認してください。詳細については、製造元のクイックリファレンスガイドまたは製品マニュアルを参照してください。正確で再現性のある結果を得るためには、露光時間、タンパク質濃度、抗体希釈率などのアッセイ条件の最適化が重要です。これらの条件は、各モデルシステムおよび抗体の組み合わせによって異なるため、新しいアッセイを行うたびに経験的に決定する必要があります。定量的結果を得るための能力は、ルミノール基質が急速に枯渇しない露光時間の解析に依存します。基質の枯渇は、信号の消失や信号の飽和（バーンアウト）を招くためです。これは、図2に示すように、異なる化学発光露光時間におけるデータを検討することで決定できます。使用した装置での露光時間は5秒から480秒の範囲でした。1:500に希釈したp53 DO-1抗体でプローブしたBEAS-2B抽出物のレーン像では、タンパク質濃度の減少が示されました。装置ソフトウェアでピーク高さとして報告された化学発光シグナルの係数が重ねて表示されています。視覚的なバンド強度は装置によって自動調整されており、パネル間での比較はできません。ルミノールが枯渇すると、ここに見られるように、露光時間を順に長くするにつれて信号係数が低下します。最も長い2つの露光時間では、信号が消失し始め、ピークが分かれています。そのため、データ解析には15秒という短い露光時間が選択されました。総タンパク質の投入量についても、個々の特定のアッセイおよびモデルシステムに合わせて最適化する必要があります。定量的な評価を行うには、各アッセイの線形ダイナミックレンジ内で測定を行う必要があります。これは、ピーク面積で測定される信号の変化が、サンプル中のタンパク質量の変化に比例する場合を指します。溶解物タイトレーションでは、1〜500 pgのp53 DO-1抗体または1〜50 pgのα-Tubulin抗体を用いてプローブしたBEAS-2B溶解物のレーンビューを示しています。線形回帰分析により、アッセイがテストした全範囲にわたって線形であることが確認されました。ターゲットタンパク質の変動がどちらの方向にも起こり得ることを考慮し、線形範囲の中央の全タンパク質濃度を選択しました。最終的な最適化の検討事項として、適切な一次抗体の希釈率を評価する必要があります。抗体を飽和濃度で使用することで、測定されたシグナルの変化がタンパク質量の変化のみに起因することを確実にできます。青色とオレンジ色の点で示される2つのBEAS-2Bタンパク質サンプルを、段階希釈したalpha-Tubulin抗体でプロービングしました。ピーク面積として測定した化学発光シグナルを抗体希釈倍率に対してプロットしました。1:50の希釈付近で飽和が観察され、曲線が顕著なプラトーに達し始めました。したがって、この抗体の最適希釈倍率として1:50を選択しました。このビデオを視聴することで、ProteinSimple Wes キャピラリーベース免疫測定装置を用いたサンプルの調製、ロード、および解析の操作に習熟することができます。この手順をマスターすれば、25個のサンプルを用いて全工程を3時間で完了させることが可能です。解析を行う際は、各キャピラリーおよびサンプルについて品質管理を実施することが重要です。これには、ビオチン化ラダーにおける蛍光標準の確認が含まれます。ピークが誤って識別されている場合は、解析ソフトウェアを使用して、主に正しいピークを特定し、誤って識別されたピークを排除してください。研究室におけるすべての分子生物学的手法と同様に、自身とサンプルを保護するために適切な個人用保護具を着用してください。これには、白衣、手袋、保護メガネ、およびつま先の閉じた靴が含まれます。測定する新しい標的ごとに、あるいは異なるサンプルソースを使用する場合に、最適化を行う必要があることに留意することが重要です。バリデーションおよびフォローアップの手順には、精製タンパク質またはエピトープを用いて抗体の特異性とシグナルを評価することが含まれます。一連のサンプル希釈系列を用いてアッセイのダイナミックレンジを検証し、抗体濃度の範囲にわたるシグナルの飽和度を評価することで、抗体希釈率を最適化します。最適化されたこのキャピラリー免疫法は、ウェスタンブロットなどの従来の手法と比較して、生物学的サンプル中の標的タンパク質をより迅速かつ定量的に測定する手法を提供します。

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

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ヒト末梢血の免疫表現型分析のための抗体のカクテルを準備する半自動のアプローチ

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タンパク質キャピラリー等電点焦点法によるアイソ フォームの高感度・定量的検出

ここで開発および単一分子配列デジタル ELISA 法、人間のサンプルですべての IFN-α サブタイプの超高感度検出を可能にする検証を記述するプロトコルを提案する.

超高感度単一分子の開発と検証配列人間のインターフェロン-α のデジタルの酵素免疫測定法

詳細なプロトコルは、分離、同定、キャピラリー ゾーン電気泳動-エレクトロ スプレー イオン化タンデム質量分析法 (CZE-ESI MS/ミリ秒) を使用して蛋白質のサンプルの proteoforms の特性に記述されています。単純な蛋白質のサンプルの proteoforms の高分解能特性と複雑なプロテオーム サンプルで proteoforms...

キャピラリー ゾーン電気泳動タンデム質量分析法による大規模なトップダウン プロテオミクス

エレクトロウェッティングベースのデジタルマイクロ流体は、マイクロリットル体積液滴の見かけの接触角の電圧駆動変化を利用して、その操作を容易にする技術です。これを機能化された磁気ビーズと組み合わせることで、酵素結合免疫測定アッセイ(ELISA)を用いた複数の実験ユニット操作を組み合わせて、サンプル調製と病原体の同定を可能にします。...

酵素結合免疫吸着アッセイ用エレクトロウェッティングベースのデジタルマイクロ流体プラットフォーム

大規模な臨床研究を実施するためには、神経変性疾患の血液ベースのバイオマーカーが不可欠です。信頼性と検証済みの血液検査は、少量のサンプル量を必要とするだけでなく、より低侵襲のサンプリング方法、手頃な価格、再現性が必要です。本論文は、ハイスループットキャピラリー電気泳動免疫アッセイが、潜在的なバイオマーカー開発の基準を満たしていることを実証する。...

ヒト血小板における筋萎縮性側索硬化症の潜在的バイオマーカーを探索するためのキャピラリー電気泳動免疫学的研究法の使用

Ugi反応は迅速に化合物の多様なライブラリを作成する便利な方法であることが証明されている。それは、アミンとの反応、アルデヒド、カルボン酸と室温でメタノールで一般的にイソニトリルを伴います。このビデオでは、我々は、48スロットのメトラートレドMiniBlockろ過チューブを装備し、メトラートレドMiniMapper自動化された液体ハンドラが試薬と溶媒を配信するために使用されたことを利用しています。興味のあるパラメータは、濃度、溶媒組成や試薬のいくつかの過剰であった。...

パラレル合成と自動液体ハンドリングを使用してUgi反応の最適化

ルミネックス社のXMAPのミクロスフィア技術を使用して、我々は様々な実験動物種のserosurveillanceの多重蛍光イムノアッセイ（MFIA）を開発しました。 MFIAは、抗原、組織制御や免疫グロブリンが共有結合し、色分けされたポリスチレン微小球にリンクされているサスペンションマイクロアレイである。...

多重化された蛍光イムノアッセイテスト方法とトラブルシューティング

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プロシージャおよび自動キャピラリー電気泳動を用いた免疫測定法のためのキーの最適化戦略

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