Name: 三次元培養細胞遊走を特徴付ける傷の環境 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-08-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 10 s
Description: 学ぶ三次元フィブリン基質内の細胞遊走解析法。新生児皮膚線維芽細胞を用いた傷治癒研究で、繊維ネットワーク構造の変化が細胞移動に与える影響を評価する再現性の高い手法です。

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この仕事のための資金は、アメリカ心臓協会 (16SDG29870005) およびノースカロライナ州立大学研究とイノベーションのシード資金を提供されました。

1 です一日 1: セルと試薬調製 注: 生物学的安全キャビネットのサンプルの汚染を防ぐためにすべてのセルと試薬の準備を行わなければならない。。
<ol><li>暖かいフィルター ダルベッコ &#39; s 修正イーグル &#39; s 媒体 (DMEM)、ウシ胎児血清 (FBS)、L-グルタミン、37 ° C の水浴のペニシリン/ストレプトマイシン</li>。
	<li>10 %fbs、1% ペニシリン/ストレプトマイシン、1% と DMEM を温めて準備新生児ひと真皮線維芽細胞 (HDFn) メディアを補うことで L-グルタミン</li>。
	<li>は、凍結保存培地を取り除き冷凍の HDFns と 200 x g で 8 分間、遠心分離のバイアルを解凍します。T-75 培養用フラスコに 1 x 10 6 セル/mL と種子の密度で準備された HDFn メディアで細胞を再懸濁します</li>。
	<li>(37 ° C、5% CO 2) 細胞増殖を許可するインキュベーターで場所フラスコ</li>。
	<li>ストア HDFn のメディアで 4 ° C</li>
	<li>必要に応じてプロおよび反 migratory 試薬を準備します</li>。
</ol> 2。3 日目: 回転楕円体準備 <ol><li>サンプルの汚染を防ぐために文化フードで以下を実行します</li>。
	<li>電池が 80% の confluency に達するときメディアを吸引し、0.25 %5 mL を加えてトリプシン-EDTA。ストア フラスコ フラスコ表面から細胞を完全にデタッチするのには 5 分の 37 ° C のインキュベーターで</li>。
	<li>、トリプシンを中和するためにフラスコに暖められたメディアの 5 mL を追加します</li>。
	<li>遠心チューブ ミックス トリパン ブルーの 10 μ L と細胞懸濁液の 10 μ L.</li>
	<li>200 x g に 8 分の元の細胞懸濁液を遠心分離</li>
	<li>細胞懸濁液を遠心分離されているが、一方、検定にトリパン ブルー細胞懸濁液の 10 μ L を追加し、セル数を数えるためです</li>。
	<li>以下の遠心分離、細胞ペレットをずらすことがなくメディアを吸引します。1.25 x 10 5 セル/mL の濃度で細胞ペレットを再懸濁します</li>。
	<li>10 cm 回転楕円体成長の間に水和環境を維持するためにシャーレの底に滅菌リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) 5 mL を追加します</li>。
	<li>は、シャーレの蓋を反転します。シャーレの蓋の内側の面に細胞懸濁液の 20 μ L を数滴を追加します</li>。
	<li>はすぐに蓋を再び反転、ハングの低下が外れないように注意しながら、皿の底に置きます。 図 1 が正常に形成されたハングの低下を示しています</li>。
	<li>慎重に 37 ° C の定温器皿を配置でき、吊りで成長する回転楕円体 72 h の期間文化をドロップ</li>
</ol> 3。6 日目: 3 D マトリックスへの回転楕円体の埋め込み <ol><li>サンプルの汚染を防ぐために文化フードで以下を実行します</li>。
	<li>最初のフィブリンの層の形成は、血栓のソリューションとして多くの井戸の井戸あたりの 100 μ L を追加する十分なボリュームの血栓ソリューションを作成 (ウェルあたり 1 回転楕円体) 必要です。血栓は、0.1 U/mL 人間 α トロンビン、2 mg/mL フィブリノゲン量 (250 mM HEPES、1500 mM の NaCl、50 mM CaCl 2、pH 7.4) によってバッファーの 10 X HEPES 10% ので構成されます。血栓ボリュームの残りの部分は、純水で構成されています。
	<ol><li>追加トロンビン最後かつ迅速にソリューションを追加 48 ウェル プレートに希望の井戸井戸に追加される前に重合から血栓を防ぐためにします</li>。
	</ol></li> <li>優しくシェイク/タップ フィブリン血栓の混合物は全体をよく、コーティングはようにウェル プレートと重合する底凝固層を許可するように 1 h のためのインキュベーターのウェル プレートを配置。ウェル プレート バブル形成を誘導するのに十分なハードを手ふれしません。単に必要に応じてプレートをロックまで井戸の全体をコーティングします。大量の血栓を使用している場合この手順は必ずしも必要です</li>。
	<li>フィブリン層に回転楕円体を転送します。
	<ol><li>削除もプレートと絞首刑の回転楕円体を含むペトリ皿インキュベーターから文化をドロップし、顕微鏡下で回転楕円体を調べます。文化フードに料理を配置します</li>。
		<li>慎重にアクセスを許可するシャーレのふたを反転吊りする文化にドロップします</li>。
		<li>1 mL の注射器に付いている 21 G 針を使用して慎重に井戸の底をコーティング重合フィブリン層を穴をあけるように注意して、各井戸の中心に逆蓋から一滴を転送します。ドロップを効率的に転送するには、針の中にドロップをゆっくりと引き出します。戻るとすぐに針の内部全体のドロップは、プランジャーを取得を停止します。ドロップをあまりにも遠くに引いて効果的な回転楕円体の転送または後続のイメージングを混乱させることができます空気の泡を引き起こす可能性があります</li>。
		<li>回転楕円体が必要なすべての井戸に正しく転送されるようにするには顕微鏡下でウェル プレートを調べます</li>。
	</ol></li> <li>2 番目のフィブリンの層の形成、最初フィブリン層 (ステップ 3.2) の作成については、上記と同じ準備を使用して別の血栓ソリューションを作成します。慎重に各回転楕円体を含むドロップに 100 μ L のピペットし、再び回転楕円体がそのまま残っているし、井戸の端にプッシュされていないことを確認するには顕微鏡下で調べています</li>。
	<li>インキュベーターにウェル プレートを返し 1 h. の重合に 2 番目の層を許可します。</li>
</ol> 4。6 日目: プロ渡り鳥や抑制因子添加 <ol><li>37 暖かい HDFn メディア ° C</li>
	<li>の汚染を防ぐためにフードで次の手順を実行します</li>。
	<li>評価されるプロ/反 migratory エージェントの適切な濃度を含む各グループのメディアを準備します</li>。
	<li>インキュベーターと文化フードの場所からウェル プレートを削除します</li>。
	<li>回転楕円体群の各ウェルに標準的なメディアの追加 500 μ L、回転楕円体の移行抑制グループの各ウェルに抑制メディアの 500 μ L と移行が強化された回転楕円体グループの各ウェルに pro 渡り鳥メディアの 500 μ L.</li>
	<li>ウェル プレートをインキュベーターに戻ります</li>。
	<li>変化媒体ごとの 48 h.</li>
</ol> 5。日 6-9: 評価の細胞の遊走や増殖 72 h オプションのメディア (0 h) と 24 h に、添加直後に明視野顕微鏡を用いた <ol><li>画像回転楕円体: 各時点で z スタックのイメージを取る場合を決定するために移行は、焦点の主な区域の外の平面で発生しています。我々 の経験では、この問題は発生しません。しかし、これはすべての実験の場合ことを確認すると便利です</li>。
	<li>連続時間の各ポイントで各回転楕円体のセルの枠線をトレースして各回転楕円体の面積のパーセントの増加を分析することにより各ウェルの細胞伸長を決定する使用 ImageJ、&#34; 測定 &#34; 領域を取得します</li>。
</ol>

<ol><li>Chester, D., Brown, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+biophysical+properties+of+provisional+matrix+proteins+in+wound+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Matrix+Biol%22%5BJournal%5D)">The role of biophysical properties of provisional matrix proteins in wound repair.</a> Matrix Biol. , (2016).</li>
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<li>Bartosh, T. J., Ylostalo, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+anti-inflammatory+mesenchymal+stem%2Fprecursor+cells+%28MSCs%29+through+sphere+formation+using+hanging+drop+culture+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Stem+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Preparation of anti-inflammatory mesenchymal stem/precursor cells (MSCs) through sphere formation using hanging drop culture technique.</a> Curr Protoc Stem Cell Biol. 28, Unit-2B.6 (2014).</li>
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</ol>

著者が明らかに何もありません。

このプロトコルでは、創傷治癒過程で細胞の移動の検討は、生体外で3D モデルを Ecm を関連付けられているをことができます。プロシージャの適切な実行の重要なステップは、線維芽細胞のスフェロイドの適切な開発2,500 セル/ドロップの初期濃度を与える細胞濃度の準備中に最適化されたフォームに回転楕円体を 72 時間の潜伏期間を確実にできます。細胞の数が少ないを使用する場合、回転楕円体は効果的に集約されない場合があり、分解される時に転送され、フィブリンの層に埋め込まれています。異なる種類の細胞を使用すると、初期菌体濃度および/または回転楕円体の成熟時間は安定したスフェロイドの形成を得るために調整するかもしれません。線維芽細胞よりもゆっくりと増殖する細胞の種類、はるかに高い初期細胞濃度は 72 時間の範囲内で適切なスフェロイドの形成を確保する必要あります。セルは吊りのままにしてはならない文化文化中回転楕円体上のメディアを変更することができないのため 72 h 以上をドロップします。初期回転楕円体サイズの違いも懸念されている固有の生物学的変動;スフェロイドの形成から始まる一貫した可能な限り多くのサイズの違いを最小限に抑えるため細...

創傷治癒、組織の整合性の損傷の修復に起因する複雑なプロセスです。このプロセス ステージに分割されます 4 重複止血、炎症、増殖、改造に包まれたそれぞれ規制されている水溶性キューと、細胞マトリックスの相互作用、細胞間コミュニケーションの複雑な組み合わせで。1,2これらの手がかりのオーケストレーションは、創傷治癒など、重要なは、細胞の移動における細胞応答の多数を制御します。3,4細胞の遊走、細胞表現型と細胞外マトリックスの環境の生化学的および生物物理学的特性に依存して非常にダイナミックなプロセスです。5セル連続プローブ-インテグリンを介する経路; を介して細胞外マトリックス環境このプロセスでは、地形、剛性、閉じ込めなどマトリックス プロパティの広い範囲を感知する細胞をことができます。細胞遊走の二次元 (2 D) 解析は、移行がアクチン フィラメント バンドルの世代を通じてリーディング エッジでケラトサイト形成によって駆動されることを示します。前縁、後縁の収縮と収縮を駆動アクトミオシンとの組み合わせで焦点接着斑の形成は、セルを突き動かします。6三次元 (3 D) 細胞の移行は現在よくわかっていない, しかし、最近の研究は示す 3 D 移行は著しく異なること、船首に 2 D のメカニズムを説明し、変化をもたらすメカニズムによって駆動される可能性が高い。たとえば、ピートリーらによる最近の研究。ECM のプロパティ、に応じて 3 D マトリックス内のセルと切り替えることが lamellipodium 移行のメカニズムを駆動 lobopodium を示した。7細胞の遊走は創傷治癒応答の重要な要素は、細胞遊走の 3 D モデルは創傷治癒過程における様々 な刺激に対する生理反応を理解すること重要です。3 D マトリックスの移行とは大きく異なる 2D サーフェス上セル回遊行動を示されている、創傷治癒過程、老舗のスクラッチ アッセイを含む中細胞遊走の最新の in vitroモデル利用 2 D単層培養。5,6,7,8,9,10,11,12,13,14より最近開発されたアッセイ 3 D マトリックスを利用してきたが、まだこうして本当に細胞環境の立体感を再現する能力を制限、マトリックス上に単層細胞の培養体内。15
記載方法の目的は、応用刺激に関連付けられている移行反応のより堅牢な理解を得るために細胞遊走 2D サーフェスではなく生理学的関連性の高い 3 D モデルを勉強することです。このメソッドは、アクティブ化または細胞の移動に関連付けられている経路を阻害する要因の存在下で 3 D フィブリン血栓マトリックス内の細胞の移動の評価できます。創傷治癒の初期段階で重要な役割フィブリンによるこのメソッドの選ばれたフィブリン マトリックス次の傷害、フィブリン血栓が血液の損失を食い止めるため創傷環境で形成される組織の修復と改造の間に初期の細胞浸潤の足場として提供しています。2,16,17,18,19,20はまた、フィブリンが外科シーラントとして臨床的に使用され、シーラントの組成は細胞遊走と究極の成果を癒しに縛られています。コックスらによる前の調査。さまざまなフィブリンと、フィブリンの最適化を目的としてトロンビン濃度フィブリン血栓を線維芽細胞の移行を検討しました。これらの研究では、プラスチック製の食器にフィブリン血栓から細胞の移動の定量化を行った。20ここで 3 D フィブリン環境内で細胞の移動の定量化できる方法を紹介します。具体的にはこのプロトコルで記述されているメソッドは、フィブリンを使用して、このモデルはコラーゲンや他の 3 D の行列など、必要に応じて代替マトリックス材料を使用する簡単に変更できます。さらに、このアッセイで線維芽細胞スフェロイドの使用は, 傷ベッドに線維芽細胞の移行が最も重要な細胞外マトリックスの合成と組織修復/改造するので.ただし、修理中にプロセスの好中球はマクロファージが続く傷のベッドに移行する最初のセルの種類です。線維芽細胞は、約 48 時間後に外傷、創傷治癒過程の増殖期の初めに傷環境に侵入を開始します。19のこのアッセイは、好中球、マクロファージ、フィブリン血栓構造の変化によるこれらの細胞型の移行の影響を査定する他の細胞型などに簡単に修正できます。21
このアッセイを実装するには、最初に、線維芽細胞スフェロイド形成幹細胞培養のために紹介した方法の変更を使用しています。22は線維芽細胞スフェロイド、3 D フィブリン マトリックスに転送後、伸長する簡単に監視し、数日間定量化します。このプロトコルは、フィブリン マトリックス内 3 D 細胞スフェロイドを埋め込むことによって考慮に生理学的システムの 3 D は中にもたらされるモデル回遊行動に細胞膜の 2次元成長表面を使用して、関連性の制限を避けるため、まだ厳しく体外環境における細胞挙動の評価が可能。

<table><tbody><tr><td>Materials</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dulbeccoの変更されたワシの媒体、4.5 g / Lグルコース、w /ピルビン酸ナトリウム、W /アウトL-グルタミン</td><td>VWR</td><td>VWRL0148-0500</td><td>DMEMは、すでにL-グルタミンを含んで</td></tr>いる<tr><td>100mm組織培養皿、未処理、滅菌、非発熱性</td><td>VWR</td><td>10861-594</td><td>も使用することができますどんなサイズの皿でも吊るすドロップカルチャーに使用できます&nbsp;</td></tr><tr><td>USDA承認国からのウシ胎児血清、熱不活性化、滅菌ろ過、細胞培養試験</td><td>済み Sigma-Aldrich</td><td>12306C-500ML</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>ICN1680149</td><td>すでにL-グルタミンが含まれているDMEMを使用する場合は必要ありません&nbsp;</td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン溶液を安定化、滅菌ろ過、10,000ユニットのペニシリンと10mgのストレプトマイシン/ mL</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4333-100ML</td><td></td></tr><tr><td>ヒト皮膚線維芽細胞、新生児</td><td>サーモフィ</td><td>ッシャーC0045C</td><td>は、関心のある他の細胞タイプと交換することができます</td></tr><tr><td>21 G x 1 1/2 '針</td><td>BD&nbsp;</td><td>305167</td><td>22 G x 1 1/2針も機能します</td></tr><tr><td>1 mLシリンジ</td><td>VWR</td><td>89174-491</td><td>任意の容量のシリンジを使用できます</td></tr><tr><td>細胞培養マルチウェルプレート、ポリスチレン、Greiner Bio-One (個別に包まれている) (48 ウェル)</td><td>VWR</td><td>82051-004&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>ヒトフィブリノーゲン - プラスミノーゲン、フォン・ヴィレブランド因子およびフィブロネクチン</td>枯渇<td>酵素研究所</td><td>FIB 3</td><td>関心のあるマトリックスタンパク質に置き換えることができる</td></tr><tr><td>ヒトアルファトロンビン</td><td>酵素研究所</td><td>HT 1002a</td><td>関心のあるマトリックスタンパク質によっては必要ないかもしれません</td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BSL2 細胞培養フード</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>細胞培養インキュベーター</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>倒立顕微鏡、10倍対物</td><td></td><td></td><td></td></tr>レンズ <tr><td>遠心分離機、15mLチューブ</td><td></td><td></td><td></td>付き</tr></tbody></table>

三次元培養細胞遊走を特徴付ける傷の環境

Characterizing Cell Migration Within Three-dimensional In Vitro Wound Environments

現在のほとんどの生体外モデルは傷の治癒、老舗スクラッチ アッセイなど、2次元の表面上のセルの移行および創傷閉鎖の勉強を含みます。しかし、どの生体内で創傷治癒が行われる生理学的な環境は二次元ではなく三次元です。セルの動作が大幅に異なることはますます明確になっている二次元三次元環境対したがって、傷の閉鎖の細胞移行挙動を勉強してもっと生理学的関連性の in vitroモデルの必要性があります。記載方法より以前に確立された二次元スクラッチ アッセイより生理学的条件を反映した三次元モデルの細胞移動の調査のためことができます。このモデルの目的は、プロまたは反 migratory 因子存在下でフィブリンのマトリックスに埋め込まれた回転楕円体ボディから細胞遊走の検討を通して細胞伸長を評価することです。このメソッドを使用して、三次元マトリックスの回転楕円体ボディから細胞伸長を観察し、明視野顕微鏡および回転楕円体の本体領域の解析による時間の経過とともに容易に定量化できないです。セル移動に及ぼすプロ渡り鳥あるいは阻害要因は、このシステムでは評価できます。このメソッドは、関連付けられている三次元傷行列の in vitro細胞移動分析の単純なメソッドを持つ研究者を提供します、このように体外の関連性を高める細胞研究生体内で動物を使用する前にモデル。

正常にプロおよび反渡り鳥エージェントの体外線維芽細胞に及ぼす影響を評価する回転楕円体文化を利用できます。 72 h (図 1) の期間にわたってドロップ文化をぶら下げを介して 3 D 線維芽細胞スフェロイドを形成できます。培養期間が過ぎると、回転楕円体は、血栓のマトリックスに埋め込まれ、対物レンズ (図 2) を使用してイメージを作成します。回転楕円体 (白の枠線で囲まれたエリアとしての図に描かれている) の初期の区分は、ImageJ を使用して決定されたおよび回転楕円体ボディからのそれに続くセル伸長度を決定するための参照ポイントとして使用します。スフェロイドの初期平均面積が 4.3 × 104 μ m2 ± 1.1 × 104 μ m2制御回転楕円体、4.4 × 104 μ m2 ±...

このプロトコルの目的は、三次元フィブリン マトリックス内の細胞の移動に及ぼすプロおよび反 migratory 因子を評価するためです。

Currently, most in vitro models of wound healing, such as well-established scratch assays, involve studying cell migration and wound closure on ...

この手順の全体的な目的は、3次元の創傷関連フィブリン足場における細胞遊走に対し、関心のある特定の処理が及ぼす影響を観察することです。この手法は、繊維ネットワーク構造の変化が細胞遊走や創傷部位のフィブリン血栓にどのように影響するかという、創傷治癒分野における重要な疑問への回答に役立ちます。本手法の主な利点は、3Dフィブリン血栓内での細胞遊走を分析するための、簡便で再現性の高い方法を提供することです。一般的に、この手法に不慣れな方は、スフェロイドの転移が困難であるため、苦労することがあります。まず、凍結保存された新生児ヒト真皮線維芽細胞のバイアルを37 °Cの恒温水槽で加温します。細胞が解凍された直後に遠心分離で回収し、ペレットを新鮮な新生児ヒト真皮線維芽細胞培地を用いて1 x 10⁶ cells/mLの濃度で再懸濁します。その後、細胞をT75培養フラスコに播種し、37 °C、5% CO2条件下で72時間培養します。培養細胞が80%コンフルエントに達したら、5 mLのtrypsin EDTAを用いて細胞を剥離させます。37 °Cで5分間置いた後、加温した培地5 mLでtrypsinを中和し、40 µLの細胞懸濁液とtrypan blueを1:1の比率で混合します。細胞計数用に10 µLのアリコートを分取して保持しておきます。遠心分離により細胞を回収し、ペレットを1.25 x 10⁵ cells/mLの濃度で再懸濁します。次に、10 cmペトリ皿の底に5 mLの滅菌PBSを分注します。その後、ペトリ皿の蓋を反転させ、蓋の内表面に細胞懸濁液を20 µLずつ複数滴下します。すべての液滴を滴下した後、吊り下げ液滴をずらさないように注意しながら蓋を皿に戻し、皿を37 degree celsiusのインキュベーターに静かに置いて72時間培養します。培養終了後、48ウェルプレートの各ウェルのスフェロイド1個あたり100 microlitersの凝血溶液を加え、プレートを静かに揺すって叩き、フィブリン凝血混合液がウェル全体を覆うようにします。その後、プレートをインキュベーターに1時間置いてください。凝固層が重合したら、光学顕微鏡下で吊り滴培養中のスフェロイドの存在を確認し、48ウェルプレートと吊り滴培養用ディッシュを細胞培養フード内に移動させます。ペトリ皿の蓋を慎重に反転させて吊り滴培養にアクセスし、21ゲージの針を装着した1 mLシリンジを用いて、フィブリンコートされた各ウェルに1滴ずつ移します。スフェロイドの吸引と播種には細心の注意を払います。このプロセスにおいて最も困難で重要なステップは、スフェロイドを破壊せずに転移させることだからです。顕微鏡下でプレートを観察し、スフェロイドが適切なウェルに正しく播種されていることを確認する。新鮮に調製した凝固溶液100マイクロリットルを、スフェロイドを含む各液滴の上に静かに重層し、再び顕微鏡下でスフェロイドを観察して、それらが依然として損なわれておらず、各ウェルの中心にあることを確認する。その後、48ウェルプレートをインキュベーターに戻し、2層目のフィブリンを重合させる。1時間後、各ウェルに各スフェロイド実験群に応じた適切な培地を500 µL添加し、プレートを37 °Cのインキュベーターに戻します。明視野顕微鏡を用いて24〜72時間ごとにスフェロイドの画像を撮影し、Zスタックを用いて3D細胞培養の連続的な断面を観察します。その後、適切な画像解析ソフトウェアで、各時点における各スフェロイドの細胞境界をトレースし、計測機能を用いて各スフェロイドの面積増加率を算出します。目的の促進剤または抑制剤を用いて培養した後、明視野顕微鏡イメージングによってスフェロイドの初期領域を特定し、これを基準として、各時点におけるスフェロイド本体からのその後の細胞遊出度を決定することができます。この代表的な実験では、遊走促進剤に曝露させたスフェロイドは、遊走抑制剤または対照剤に曝露させたスフェロイドと比較して、元のスフェロイド本体から離れる遊走度が有意に増加しました。逆に、遊走抑制剤に曝露させたスフェロイドは、対照処理したスフェロイドと比較して、元のスフェロイド本体から離れる遊走度が有意に減少しました。この手法を習得し、適切に実施すれば、細胞培養時間を除いて2時間半で完了させることができます。このビデオを視聴することで、3次元in vitro細胞遊走アッセイに向けて、細胞スフェロイドをどのように培養し、包埋させるかについて十分な理解を得ることができるはずです。この手順に続き、組織学的解析や免疫組織化学などの他の手法を行うことで、血栓内のフィブリンネットワーク構造やスフェロイド細胞内のアクチン配向が、細胞遊走の増加または減少にどのように対応しているかという追加の疑問を明らかにすることが可能です。細胞培養や針の取り扱いは極めて危険であるため、本手順を行う際は、適切な保護具の着用や無菌培養フード内での作業など、常に十分な予防策を講じてください。

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Bioengineering

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本稿では培養上皮細胞は、どのように切開のような病変便利なモデルの傷癒しの in...

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学ぶ三次元フィブリン基質内の細胞遊走解析法。新生児皮膚線維芽細胞を用いた傷治癒研究で、繊維ネットワーク構造の変化が細胞移動に与える影響を評価する再現性の高い手法です。

三次元培養細胞遊走を特徴付ける傷の環境

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