Name: ショウジョウバエ幼虫神経筋接合部のシナプス電流の焦点 Macropatch 録音 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-25T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 1 s
Description: 学ぶショウジョウバエ幼虫神経筋接合部の焦点マクロパッチ録音法。視覚化されたシナプスボタンからシナプス電流を記録し、シナプスタンパク質変異がシナプス伝達に与える影響を調査する。

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1 記録電極の作製 電極引き手の <ol>ガラス電極を引いて <ol><li>次を使用 </li><li>プロトコル (材料の表 を参照してください): <ol><li>ライン 1: 熱。510 プル - 速度 30 時間 250;2 行目: 熱 490 プル - 速度 30 250 時間します 。
			注: 時間の単位は 1 単位当たり 0.5 ms に対応します。他のユニットは相対的です。ランプのテストが実行された後、すべてのフィラメントの熱の値を調整する必要があります</li>。
		</ol></li> <li>に確実に ( 図 1 a) 7-10 μ m の範囲で引っ張られた電極内径顕微鏡 (35 倍) を使用します。塵の蓄積を防ぐために密閉容器に毛細血管を格納します</li>。
	</ol> <li>火研磨 <ol><li>火ポーランド毛細血管 (1 〜 2 秒の最大熱値の 80-90%) マイクロ フォージを使用して (材料の表 を参照してください)。洗練された電極の最終の内径が 5 μ m ( 図 1 a) 27 を確認します</li>。
	</ol></li> <li>曲げ 注: 2 つのベンドが高倍率の目的の下に筋肉の上に電極を配置するために作られています。
	<ol><li> 図 1 b に示すように装置の使用。マニピュレーターに電極を修正し、それを触れていないフィラメント上の先端の位置</li>
		<li>セット値を最大の 60-70% を熱し、1 〜 2 秒のためマイクロ フォージのペダルを押す (材料の表 を参照)、フィラメントを加熱します。L 字の針を使用すると、電極 ( 図 1 b の拡大) の先端をそっと引き下げます。約 90 o ( 図 1) に曲げることを確認します</li>。
		<li>鉗子を使用して手作業でトーチの炎で、電極を保持し、最初曲げから 7-10 mm の距離で、約 120 o ( 図 1) の角度で 2 つ目のベンド</li>。
	</ol></li></ol> <img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56493/56493fig1.jpg"> 図 1。マイクロ ピペット作製の最終手順です。(A) 電極の引っ張ってくると火の研磨後ヒントします。(B.1) 先端曲げのセットアップ。(B.2) ボックスの領域は、右に拡大表示されます。電極とフィラメントは、電極先端がワイヤーの少し上位置とない感動が固定されます。(C.1) 記録電極。(C.2) ボックスの領域は、右に拡大表示されます。約 90 ° の角度であり、最初のベンドと電極の先端間の距離である約 1 mm スケール最初曲げバー = 3 mm. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56493/56493fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
 2 準備手順を追加 <ol><li>(mM) の準備 heamolymph のような (HL3) ソリューション: 5 70 塩化ナトリウム、KCl、20 MgCl 2、10 NaHCO 3、5 トレハロース、115 スクロース, 5 HEPES, 1 mM CaCl 2; 7.3 - に pH を調整。7.4. 冷蔵庫でソリューションを維持し、毎週新鮮な。</li>
	<li>が同じ記録方法ガラス刺激 pipets pipets、作る以外にそれらを曲げる必要はありません 。
	注: 刺激電極の作製は、 28 と 27 の詳細で説明されます。最終的な直径 5-7 μ m の範囲にする必要があります火災研磨後</li>。
	<li>注射器に接続されている電極ホルダーに刺激ピペット挿入します</li>。
	<li>小さなシャーレ 35 x 10 mm) シリコーン ゴム エポキシでコーティングから製造解剖板 (材料の表 を参照) 28 の説明に従って 。
	注: シリコーンゴムを使用する前に完全に硬化する必要があります</li>。
	<li>放浪の 3 齢幼虫をピックアップし、前述の 27 , 28 , 29 , 30 で解剖します 。
	注: ボタンを表示するに使用フライひずみ CD8 GFP (材料の表 を参照してください) <ol><li>使用鉗子 (材料の表 を参照してください)、バイアルから 3 rd 幼虫をピックアップします</li>。
		<li>幼虫は、最初の端子を後部に配置することをピンし、別ピン前方 (口フックに近い).</li>
		<li>追加 HL3 ソリューションです</li>。
		<li>はさみを使用して春 (材料の表 を参照) 上のピンから 1 つ下に幼虫の背側にカットを作成します</li>。
		<li>幼虫の左右に 2 の追加ピンを配置すること、幼虫のフィレ肉をピンします</li>。
		<li>勇気と気管鉗子を使用してを削除します</li>。
		<li>春のはさみを使用して腹側神経索外だけ神経をカットします</li>。
	</ol></li></ol> 3。EJCs の電気録音 <img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56493/56493fig2.jpg"> 図 2。レコーディングの設定。サンプル NMJ 落射蛍光機能、高倍率の目的および 2 つのマニピュレーターを搭載した直立の化合物顕微鏡の可動式ステージ上にコーティングされたペトリ皿 (矢印) が置かれたシリコンに固定されています。顕微鏡は防振テーブルに駐留しています。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56493/56493fig2large.jpg" target="_blank"> この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<ol><li>記録 <ol><li>顕微鏡ステージ ( 図 2) で準備とシャーレの場所。お風呂に参照電極を挿入します</li>。
		<li>は、HL3 ソリューションと記録電極をご記入ください。10 倍を目的として (材料の表 を参照)、電極をお風呂に浸すし、筋肉が 6、7 の 2、3、または 4 のマニピュレーターを使用して腹部のセグメント上に配置 (参照 材料表) ( 図 3A.1 と A.2).</li>
		<li>は、60 x に目標を切り替える (材料の表 を参照してください)。エピ蛍光または DIC 光学を使用して関心のある分野に焦点を当てます。シナプスブートン ( 図 3 B.1 3) の上に電極の先端を配置します</li>。
		<li>は、筋肉に非常にやさしく電極を押します。過度の圧力が略記を損傷したり、シナプス活動の増加を誘発します。電極の先端は詰まっている - 場合は、それを置き換えることを確認</li>
		<li>アンプ、A/D ボード、およびコンピューターのスイッチします</li>。
		<li>アンプの電圧クランプ モードを選択します</li>。
		<li>集録ソフトウェアを起動し、選択、' のギャップ フリー ' モード</li>。
		<li>コンピューターの画面に mEJCs の外観を観察</li>。
		<li>、MEJCs の振幅は 0.2 - の範囲であることを確認 0.7 na という 
		注: より小さい EJCs を示す記録電極が欠陥を持っていることまたはそのは正しく配置されません</li>。
	</ol></li></ol> <img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56493/56493fig3.jpg"> 図 3。シナプス研究の視覚化。ヘミ セグメント x 倍率 (A.1) と 6 と 7 の筋肉を示すボックスの面積を拡大 10 未満の A (A) 明視野イメージ (A.2、矢印マークの記録電極)。スケールバー = 50 μ m。 (B) シナプス研究は、遺伝子にエンコードされた神経細胞マーカー (CD8-GFP) と ショウジョウバエ ラインで可視化エピ蛍光イメージング (B.1) または DIC 光学 (B.2) を使用します。画像は撮影目的と GFP 用フィルター キューブ x 60 (材料の表 を参照してください)。Synaptic ボタンは矢印の付いたマークされ、B.3 に蛍光と DIC イメージのオーバーレイが表示されます。スケール バー = 10 μ m. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56493/56493fig3large.jpg" target="_blank"> この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<ol start="2"> <li>刺激 <ol><li>腹部セグメント 2-4 を支配する軸索に近い刺激電極を置くビジュアル コントロールの下で、マニュピュレーターを使用しています</li>。
		<li>電極 ( 図 2) の内側軸索が引っ張られるように注射器のピストンを引いて負圧を適用が電極ホルダーに接続されています</li>。
		<li>刺激をオン。アイソレーション ・ ユニットのノブ (材料の表 を参照) をゼロの電流を設定し、ゆっくり増加、EJCs が表示されるまで (またはしきい値に達するまで).</li>
		<li>現在の刺激閾域における刺激増加約 2 回、EJCs の観測のしきい値と比較して実行します 。
		注: 我々 の経験でこのような刺激の強度は活動電位の障害や活動電位の発火を避けるために最適です。たとえば、0.2 の刺激電流で表示されます EJCs mA、0.4 の電流を使用して、実験を通して mA</li>。
	</ol></li> <li>シール抵抗 <ol><li>に増幅器の電極抵抗スイッチを回して録音 macropatch 電極のシール抵抗を測定 " テストをシール " 位置。GΩ シール抵抗の値が表示されることを確認、" 現在 " ウィンドウ</li>。
		<li>シール抵抗は 0.5 - 2 M の範囲にあることを確認 Ω。この範囲外の値を示す電極が正しく研磨または適切に位置しないこと</li>。
		<li>シール抵抗録音データ全体を監視し、それを確かめる実験を通じて一定します</li>。
	</ol></li></ol> 4。解析 解析のためのソフトウェアをカスタマイズ <ol><li>分析録音を採用 (材料の表 を参照してください). 
	注: 当研究室は、社内ソフトウェア Quantan 31, EJCs と mEJCs 塊状を記録した ( 図 4) の検出のためにカスタマイズされるを使用します。このソフトウェアは、ガウスのデジタル フィルターが含まれていて、量子多量子イベント ( 図 4 a) の重複ピークの検出が可能します。他のアプローチは 17 で説明します</li>。
</ol> <img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56493/56493fig4.jpg"> 図 4。量子解析。 の mEJCs (A) と EJCs (B) Quantan ソフトウェアによって検出します。イベント エリアは緑色でマークされますが、ピークは赤い矢印で示されます。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56493/56493fig4large.jpg" target="_blank"> この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

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<li>Melom, J. E., Akbergenova, Y., Gavornik, J. P., Littleton, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous+and+evoked+release+are+independently+regulated+at+individual+active+zones%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Spontaneous and evoked release are independently regulated at individual active zones.</a> J Neurosci. 33 (44), 17253-17263 (2013).</li>
</ol>

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ショウジョウバエでは、シナプス伝達の研究に有利なモデル生物を表します。いくつかの録画設定は、シナプス電位、2 つの電極電圧クランプ33,34, 焦点の macropatch とシナプス電流の録音の細胞内の録音を含む、幼虫 NMJ で使用されています。ここで説明したシナプス電流の録音。後者の手法では、可視化研究でシナプス伝達の正確な定量をことができます。
記述されていたプロトコルの成功は批判的に関心のある分野を明確に視覚化し、電極の作製をカスタマイズする能力に依存します。したがって、品質 DIC の光学系、長い作動距離、火災研磨と電極の曲げのためのカスタマイズされた装置と高倍率の水浸対物レンズ、非常に重要です。
このアプローチの利点は、記録電極の下には、いくつかのシナプスの活動を監視できます。注意してください、ただし、電極の縁の近くに位置する研究は、記録された活動へも一因かもしれません。そのため...

ショウジョウバエは、シナプス伝達を制御する分子機構を研究するエクセレント モデル システムです。ショウジョウバエの神経筋システムは、グルタミン酸とグルタミン酸作動性のリリースの保存の機能を勉強したがってショウジョウバエの神経筋接合部 (NMJ) を使用できます。以来 1 月および 1 月の研究1、3 齢幼虫は興奮性接合電位 (EJPs) または (EJCs) の流れを監視することによって誘発と自発的なシナプス伝達を研究に広く使用されています。EJPs はよく鋭いガラス微小電極を細胞内に記録され、彼らは特定の筋線維のシナプスを作るすべてのボタンを含む全体の NMJ の活動を反映しています。
対照的に、神経やシナプス下肢近くマイクロ ピペット チップを配置することで先んじて、リリースのサイトの限られた数のアクティビティを記録できます。この手法がカッツと Miledi2、採用された当初と焦点細胞外記録が正常にカエル3,4、5マウス6を含むいくつかの NMJ 製剤で採用されています。,7,8甲殻類9,10、11,12,13,14,15,16, ショウジョウバエ17,18,19,20,21,22,23。このアプローチは、記録電極24,25macropatch に最適化した Dudel によってさらに開発されました。Dudel の実装では、この手法の方が、緩いパッチ クランプ法26を一致しました。
ショウジョウバエ幼虫 NMJ、明確なシナプス研究と遺伝的コード化神経細胞蛍光タグ (材料の表を参照) と形質転換線がすぐに利用できます。これらの利点は、EJCs と選択したシナプスブートン20,21,22mEJCs を記録することができました。ここでは、このテクニックの詳細をについて説明します。

<table><tbody><tr><td>サッター P-97</td><td>サッター装置</td><td>P-97</td><td>マイクロ電極プーラー</td></tr><tr><td>成重 MF-830</td><td>成重</td><td>MF-830</td><td>マイクロフォージ</td></tr><tr><td>WPI MF200</td><td>WPI</td><td>MF200</td><td>マイクロフォージ</td></tr><tr><td>ガラスキャピラリー</td><td>WPI</td><td>B150-86-10</td><td>ガラスキャピラリー</td></tr><tr><td>マイクロトーチ 1WG61</td><td>グレイナー</td><td>1WG61</td><td>マイクロトーチ</td></tr><tr><td>シルガード184 シリコーンエラストマーキット</td><td>ダウ コーニング</td><td>SYLGARD 184</td><td>解剖用プレート準備用シリコーン</td></tr><tr><td>解剖用ピン</td><td>アマゾン</td><td>B00J5PMPJA</td><td>幼虫の位置決め用ピン</td></tr><tr><td>ピン</td>セット <td>WPIINC</td><td>500342</td><td>ピンを配置し、腸や気管を取り外すためのピンセット。</td></tr><tr><td>はさみ</td><td>WPIINC</td><td>501778</td><td>幼虫や神経のクチクラを切るためのはさみ。</td></tr><tr><td>オリンパスBX61WI</td><td>オリンパス</td><td>BX61WI</td><td>正立顕微鏡</td></tr><tr><td>オリンパス Lumplan FL N 60x</td><td>オリンパス</td><td>UPLFLN 60X</td><td>顕微鏡対物レンズ 60X</td></tr><tr><td>オリンパス UPlan FL N 10x</td><td>オリンパス</td><td>Uplanfl N 10X</td><td>顕微鏡対物レンズ 10X</td></tr><tr><td>成重マイクロマニピュレーター</td><td>成重</td><td>MHW-3</td><td>3軸水油圧マイクロマニピュレーター</td></tr><tr><td>npi Electronic GmbHELC-03XS</td><td>npi Electronic GmbH</td><td>ELC-03XS</td><td>電気生理学的増幅器</td></tr><tr><td>A.M.P.I Master 8</td><td>A.M.P.I.</td><td>マスター8</td>電気<td>刺激装置</td></tr><tr><td>A.M.P.I Iso-Flex</td><td>A.M.P.I.</td><td>Iso-Flex</td><td>Stimulus アイソレータ</td></tr><tr><td>TMC 防振テーブル</td><td>TMC</td><td>63-9090</td><td>防振テーブル</td></tr><tr><td>TMC ファラデーケージ</td><td>TMC</td><td>81-333-90</td><td>ファラデーケージ</td></tr><tr><td>Digidata 1322A</td><td>Axon Instruments</td><td>Digidata 1322A</td><td>Digidata</td></tr><tr><td>Computer</td><td>Dell</td><td>Dimension 5150</td><td>Win XP OS</td></tr><tr><td>電極ホルダー</td><td>WPI</td><td>MEH3SW</td><td>電極ホルダー</td></tr><tr><td>光学フィルター</td><td>オメガ光学</td><td>XF 115-2</td><td>緑色蛍光タンパク質(GFP)検出用フィルターキューブ</td></tr><tr><td>pCLAMP 8</td><td>Axon Instruments</td><td>8.0.0.81</td><td>信号記録用ソフトウェア</td></tr><tr><td>Quantan</td><td>社内ソフトウェア</td><td>-</td><td>信号処理用ソフトウェア</td></tr><tr><td>Canton-S (Wildtype)</td><td>Bloomington Stock Center</td><td>64349</td><td>コントロールフライライン</td></tr><tr><td>cpx SH1</td><td>J.T. Littleton-Complexinの寛大な贈り物</td><td></td> ノック<td>アウトフライライン 自然発生的なエキソサイトーシスの増加</td></tr><tr><td>CD8-GFP</td><td>ブルーミントンストックセンター</td><td>5137</td><td>ニューロン蛍光(GFP)タグ付きフライライン</td></tr></tbody></table>

ショウジョウバエ幼虫神経筋接合部のシナプス電流の焦点 macropatch 録音

Focal Macropatch Recordings of Synaptic Currents from the Drosophila Larval Neuromuscular Junction

ショウジョウバエ神経筋接合部 (NMJ) はグルタミン酸作動性シナプス伝達を研究するエクセレント モデル システムです。ショウジョウバエ幼虫 NMJ で可視化研究からシナプス電流の焦点の macropatch 録音の手法について述べる。この方法で高倍率、長距離水浸対物レンズ、差動干渉の対照 (DIC) の光学、蛍光顕微鏡と同様に、マイクロ ピペット、記録のカスタマイズ加工を必要添付ファイル。記録電極は選択したシナプスブートン DIC 光学、エピ蛍光、あるいは両方に可視化の上に配置されます。この方法の利点は、リリースのサイトの限られた数のシナプスの活動を監視できます。記録電極は直径数ミクロン、および電極縁外に配置されるリリース サイト記録電流に大きな影響はないです。記録された性シナプス電流高速キネティックがあるし、容易に解決することができます。これらの利点、または非同期の自発的なシナプス活性の増強と突然変異のはえ系統の研究のため特に重要です。

焦点距離 macropatch の録音は、選択したシナプス ボタン (図 5) からシナプス アクティビティの監視を有効にします。シナプスブートン (図 5 a, サイト 1) の上に電極を配置すると、記録された mEJCs (図 5サイト 1) は騒音レベルを大幅に上回る振幅があるし、上昇の段階 (サブ ミリ秒の範囲) でシャープします。とき記録電極に移動されます、シナプスブートンから数ミクロン (図 5 aサイト 2)、記録された mEJCs 減少の振幅によってほぼノイズ レベル (図 5 bサイト 2)。記録された EJCs はノイズとほとんど区別できるし、彼らは上昇の段階 (図 5サイト 1 とサイト 2) 長...

ショウジョウバエ第 3 齢幼虫神経筋接合部シナプス ボタンの可視化から塊状性シナプス電流を記録できます。この手法は、単一のシナプスブートンのアクティビティを監視できます。

ショウジョウバエ幼虫神経筋接合部のシナプス電流の焦点 Macropatch 録音

Drosophila neuromuscular junction (NMJ) is an excellent model system to study glutamatergic synaptic transmission. We describe the technique of focal ...

この手法の全体的な目標は、ショウジョウバエの幼虫の神経筋接合部で視覚化されたシナプスボタンのシナプス活動を監視することです。遺伝子操作に容易に修正できる優れたモデルシステム。この手法は、あなたの科学における重要な問題に対処することができます。例えば、シナプスタンパク質の突然変異がシナプス伝達をどのように調節するかなどです。この手法の主な利点は、限られた数の放出部位の活動を監視し、高速動力学の電流を記録でき、簡単に解決できることです。実験を開始するには:微小電極プーラーを準備します。35倍の倍率で顕微鏡を使用して、引っ張られた電極の内径が7〜10マイクロメートルの範囲にあることを確認します。毛細管は、ほこりの蓄積を防ぐために密閉容器に保管してください。次に、マイクロフォージを使用して研磨されたキャピラリーを発射します。研磨された電極の最終的な内径が5マイクロメートルであることを確認してください。次に、曲げに移ります。電極をマニピュレーターに固定し、先端をフィラメントに触れないように上に置きます。熱量を最大の60〜70%に設定し、マイクロフォージのペダルを1〜2秒間押してフィラメントを加熱します。L字型の針で電極の先端をやさしく引き下げ、約90度に曲げます。手でトーチの炎の上に電極を持ち、最初の曲げから7〜10ミリメートルのところで、約120度の角度で2回目の曲げを行います。血リンパ様溶液、またはHL3溶液を調製します。溶液を冷蔵機に保管し、毎週新鮮にします。刺激ピペットは、ガラスピペットを曲げずに記録するのと同じように準備します。次に、シリンジに接続された微小電極ホルダーに刺激ピペットを挿入します。シリコーンゴムエポキシでコーティングされた小さなペトリ皿から製造された解剖プレート。次に、鉗子を使用して、バイアルからさまよう3番目の幼虫を選びます。幼虫をピンで留め、最初のピンを後部に配置し、別のピンを口のフックの近くに配置します。HL3 ソリューションを追加します。幼虫の背側では、上部のピンから下部のピンまでスプリングハサミを使用して切り込みを入れます。幼虫のフィレをピンで留め、幼虫の左側と右側に2つの追加のピンを配置します。鉗子を使用して腸と気管を取り除きます。腹側神経索のすぐ外側の神経をスプリングハサミで切断します。調製したシャーレを顕微鏡ステージに置きます。参照電極をお風呂に挿入します。記録電極にHL3溶液を充填します。10X対物レンズの下で電極をお風呂に浸し、マイクロマニピュレータを使用して2、3、または4の腹部のsegementsの筋肉6と7の上に置きます。次に、対物レンズを60Xに切り替え、エピ蛍光またはDIC光学系を使用して対象領域に焦点を合わせます。電極の先端をシナプスブートンの上に置き、過度の圧力がNMJを損傷したり、自発的なシナプス活動の増加を誘発したりする可能性があるため、電極を筋肉に非常に優しく押し付けます。次に、アンプ、ADボード、コンピューターのスイッチを入れます。次に、電圧を選択しますamp アンプのモード。集録ソフトウェアを起動し、ギャップフリーモードを選択して、コンピュータ画面上のMEJCの外観を観察します。MEJCの振幅が0.2〜0.7ナノアンペアの範囲にあることを確認します。視覚制御下でマイクロマニピュレーターを使用して、刺激電極を腹部セグメント2〜4を神経支配する軸索の近くに配置します。電極ホルダーに接続されたシリンジのピストンを引っ張って、軸索が電極の内側に引っ張られるようにして負圧を加えます。次に、刺激装置の電源を入れます。アイソレーションユニットのノブを回してゼロ電流を設定し、EJCが現れるまで、またはしきい値に達するまでゆっくりと増やします。スーパースレッショルド領域で刺激を行います。刺激電流は、EJCの観察の閾値と比較して約2倍に増加します。アンプの電極抵抗スイッチをシールテスト位置に回して、記録マクロパッチ電極のシール抵抗を測定します。現在のウィンドウに表示されるシール抵抗(ギガオーム)の値を確認します。フォーカルマクロパッチレコーディングにより、選択したシナプスボタンからのシナプス活動をモニタリングできます。電極がシナプスボタンの上に配置されている場合、記録されたMEJCはノイズレベルを大幅に超える振幅を持ち、サブミリ秒の範囲で急激な上昇位相を示します。記録電極をシナプスボタンから数ミクロン離すと、レコーダーMEJCの振幅はノイズレベルまでほぼ低下します。記録されたEJCはノイズとほとんど区別できず、立ち上がりフェーズが長くなります。フォーカルレコーディングにより、複合体およびノーム変異体中のMEJCの正確な検出が可能になります。一方、この変異体からの細胞間記録は、重複して確実に検出できないイベントを放出します。エレクトロチップの角度の調整は、電極の位置決めにとって重要です。この手順に従って、個々のリリースイベントのイメージングを確認するなどの他の方法を実行して、個々のアクティブゾーンのアクティビティの統合などの追加の質問に答えることができます。

focal-macropatch-recordings-synaptic-currents-from-drosophila-larval

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JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

ここでは、ショウジョウバエの幼虫の神経筋接合部でシナプス伝達を測定するための電気生理学的方法を説明します。誘発放出は、運動ニューロンの軸索を刺激することによって人工的に開始され、NMJの透過は、筋肉に誘発シナプス後応答によって測定することができる。...

ショウジョウバエの幼虫のNMJからシナプス電位を記録するための電気生理学的方法

アクセス可能なシナプスの電気生理学のアプリケーションでは、シナプス変異体の分析に有用なシナプス活性の定量的な尺度を提供しています。この記事では、神経筋接合部（NMJ）のを公開するために使用される解剖の方法を説明します...

解離性とC. elegansの神経筋接合部から録音する

の電気生理学的記録ショウジョウバエ胚

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ショウジョウバエ神経筋接合部(NMJ)の定量化:シナプスの形態と機能を評価する方法

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胚ゼブラフィッシュマウスナー細胞からパッチクランプ記録

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学ぶショウジョウバエ幼虫神経筋接合部の焦点マクロパッチ録音法。視覚化されたシナプスボタンからシナプス電流を記録し、シナプスタンパク質変異がシナプス伝達に与える影響を調査する。

ショウジョウバエ幼虫神経筋接合部のシナプス電流の焦点 Macropatch 録音

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