Name: 喀痰誘発および実験室の処理のための方法論 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-12-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 28 s
Description: 学ぶ喀痰誘発法と実験室処理のプロトコル。気道閉塞性疾患や肺線維症の研究に有用な非侵襲的サンプリング技術です。細胞解析と上清液収集の詳細な方法を解説します。

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この作品は、リエージュ大学病院 (チュー リエージュ) によって支えられました。我々 はビデオ生産のための「瞬間プロダクション」を認めます。我々 はまた、セドリック フランソワ、映画に登場した患者を認めます。

このセクションで説明するすべてのメソッドは、リエージュ大学病院の倫理委員会によって承認されているし、すべての健常者が参加の書面によるインフォームド コンセントを与えた。
1. 喀痰誘発
<ol>
	<li>前と後の気管支拡張剤のスパイロメトリー
	<ol>
		<li>スパイロメトリーを実行 (1 秒 [fev 社1] の強制 expiratory ボリュームと肺活量 [FVC] 操縦) アメリカ胸部学会 (ATS) によると/欧州呼吸器学会 (ERS) 標準条件12。</li>
		<li>スペーサー デバイスを介してメーター用量吸入器 (MDI) から 400 μ g 吸入サルブタ モールを管理します。 注: 大人、吸入サルブタ モールの有害事象は振戦、頻脈の13を含みます。</li>
		<li>スパイロメトリー (fev 社1と FVC 操縦) 15 分後で繰り返す、ATS/ERS 基準12によると。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>超音波ネブライザーの準備 注意: ネブライザーする必要があります徹底的に洗浄・消毒製造元の指示に従い、各使用する前に。<ol>
		<li>推奨レベルまで蒸留水でネブライザー室を埋めます。</li>
		<li>ネブライザー室にクリーン カップを置きます。</li>
		<li>適切なふた付きカップをカバーします。</li>
		<li>後気管支拡張剤 fev 社1患者の高張生理食塩水 (5%) のいずれかの 50 mL のカップを埋める &#62; 65% 予測または 50 mL の等張生理食塩水 (0.9%) 後気管支拡張剤 fev 社1≤65% 予測患者の。</li>
		<li>カップにサルブタ モール硫酸塩溶液 (5 mg/mL) の 1.75 mL を追加します。</li>
		<li>チューブとバルブ製造元の指示に従って接続します。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>ネブライザーと喀痰のコレクション 注: は、医療監督の下で技術を実行します。<ol>
		<li>患者への手順を説明します。</li>
		<li>鼻クリップを使用する患者をお願いします。</li>
		<li>噴霧器をオンし、エアロゾルとファンの設定の最下位のレベルを選択します。</li>
		<li>5 分の呼吸法とマウスピースを介してエアロゾルを吸入する患者をお願いします。 注: 患者の耐性に応じてエアロゾルとファンの設定を増加可能性があります。<ol>
			<li>耐え難い咳や吐き気、場合の手順を中止し、1.3.5 の手順に進みます。</li>
			<li>胸の圧迫感や呼吸苦、1.3.8 のステップに移動します。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>噴霧器をオフにします。</li>
		<li>鼻クリップを削除し、水で口をすすぎ、シンクにそれを破棄する前に 2 回うがい患者をお願いします。 注: 唾液細胞が痰のサンプルを汚染して使用できなくなるサンプルに 。</li>
		<li>プラスチックの容器に痰を咳をする患者をお願いします。</li>
		<li>Fev 社1を測定するスパイロメトリー (強制呼出) を実行します。</li>
		<li>Fev 社1秋を次のように評価: (fev 社1は 3.8 [mL] のステップで測定される) - (1.3 [mL] のステップで測定後気管支拡張剤 fev 社1 )/(1.3 [mL] のステップで測定後気管支拡張剤 fev 社1 ) * 100。<ol>
			<li>Fev 社1後気管支拡張剤値から 20% 以上該当する場合は、手順を中止します。Fev 社1再び 10 分後を測定します。Fev 社1には、20% 以上が該当する場合は、噴霧イプラトロピウム臭化物 (0.25 mg/2 mL) を管理し、医療観察下の患者に医師を求めます。1.3.10 手順に進みます。</li>
			<li>Fev 社1が後の気管支拡張剤の値から 20% 以上でない場合、手順 3.2 〜 3.9 1 ~ 3 回 10 〜 20 分の合計ネブライザー時間に到達します。 注: 合計ネブライザー時間は痰のサンプルの量と質 (プラグまたは粘性部品の存在) になります。サンプルの質や量が悪い場合ネブライザーの 10 分後、手順を拡張して、15 〜 20 分の合計ネブライザー時間に到達する必要があります。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>冷蔵処理まで痰のサンプルを保ちます。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 喀痰処理
注: 最適な細胞生存率のサンプリングの 3 時間以内、喀痰を処理します。
注意: は、白衣、防護手袋、ゴーグルを着用します。
<ol>
	<li>予備の準備
	<ol>
		<li>滅菌蒸留水 10 mL を製造元の指示に従って、6.5 ミリメートルのソリューションを取得する集中ジチオトレイトール ソリューション (粘液溶解剤) の 10 倍希釈を行います。 注: 集中ジチオトレイトール ソリューション周囲の空気との混合を防ぐために、ソリューションから撤退バイアル滅菌注射器と針で。開いたら、濃縮液バイアルを室温で保管し、5 日以内に使用する必要があります。希釈した溶液を毎日用意しています。 注意: 目や皮膚の炎症の危険性のため保護具 (衣類、手袋とゴーグル) を着用します。</li>
		<li>ダルベッコ Phosphate-Buffered 生理食塩水 (DPBS) 0.08% 解を得るためトリパン ブルー溶液 (0.4%) の割増希釈を行います。この希釈液を室温で維持し、2 週間以内に使用します。 注意: 発癌性の危険のため保護具 (衣類、手袋、ゴーグル) を着用します。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>喀痰培養上清のコレクション
	<ol>
		<li>50 mL コニカル下部のプラスチック製のチューブで全体の喀痰を転送し、サンプルの重量を量る。</li>
		<li>DPBS ソリューションの 3 倍の重量を追加します。</li>
		<li>ゆっくりと渦 30 サンプル s。</li>
		<li>遠心 800 x g、4 ° C で 10 分間します。</li>
		<li>滅菌ガーゼの 2 層を通して試料をフィルター処理し、50 mL コニカル下部のプラスチック製のチューブに上清を収集します。</li>
		<li>分注 2 mL プラスチックの上澄みチューブ、-80 ° C で保存 注: 清サンプル、喀痰流体相コンポーネントを試金するために役立ちます。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>喀痰孟
	<ol>
		<li>必要に応じて、細胞懸濁液 5 mL の容量に到達する細胞ペレットに DPBS を追加します。</li>
		<li>6.5 mM ジチオトレイトールが 1 つのボリュームに細胞懸濁液を希釈します。ベンチ ロッカーを使用して、室温で 20 分間細胞懸濁液をロックします。<ol>
			<li>DPBS と少なくとも 3 回を繰り返します。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>550 x g と 10 分のための 4 ° C で希釈した細胞懸濁液を遠心します。</li></ol></li></ol>上清を捨てます。
		<li>DPBS 約 1 mL の細胞ペレットを再懸濁します。</li>
	
	
	<li>検定数によって痰のサンプル (細胞濃度、扁平上皮細胞の汚染、トリパン ブルー排除法による生存率) の質的特性の評価
	<ol>
		<li>評価し、細胞懸濁液の正確な量を記録します。</li>
		<li>0.08% トリパン ブルー溶液を 50 μ l 添加に細胞懸濁液 50 μ L を追加し、均質化します。</li>
		<li>検定 (トーマ部屋) の coverslip の下でサンプルを入れて光学顕微鏡 (400 倍) の下に置きます。</li>
		<li>扁平上皮細胞、非扁平上皮細胞 (未塗装細胞) と死んで非扁平上皮細胞を数える (青色塗装のセル)。 注: 場合低すぎるか高すぎる細胞密度、集中し、または細胞懸濁液を希釈、手順 2.4.1-2.4.3 を繰り返します。</li>
		<li>細胞濃度懸濁液、扁平上皮細胞の割合、非扁平上皮癌細胞の割合を評価します。 注: 計算結果喀痰の総非扁平上皮細胞数/g: 細胞懸濁液 (ステップ 5.4) の濃度 * 細胞懸濁液 (ステップ 4.8) のボリューム * % 非扁平上皮細胞の/重量の痰のサンプル (ステップ 2.2.1)。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>ステンド グラス cytospin の準備が必要な場合細胞懸濁液の残留細胞のストレージとスライドします。 注: 細胞懸濁液に扁平上皮癌の 80% 以上が含まれている場合サンプルのセルと見なされます貧しい品質と cytospin スライド14には不向き。その場合は、処理を中断し、失敗したこのサンプルを検討します。<ol>
		<li>細胞懸濁液 500,000 セル/mL の細胞懸濁液の少なくとも 350 μ L を取得する DPBS の因数を希釈します。</li>
		<li>製造元の指示に従って、セルのコンセントレーターを組み立てます。</li>
		<li>この細胞懸濁液を 100 μ l 添加でセル コンセントレーターの 3 コンパートメントの各を入力します。</li>
		<li>収集で 150 x g と常温で 2 分間スピンします。培養上清を捨てます。</li>
		<li>製造元の指示に従って、セルのコンセントレーターを逆アセンブルします。</li>
		<li>乾燥空気にスライドを許可します。 注: この段階で残留セル格納できます十分なバッファー内のさらなる実験に必要な場合。</li>
		<li>商業染色スライド キット (材料の表を参照)、製造元の指示に従って汚れ。</li>
		<li>メディアを適切なマウントとカバー スリップ、スライドをマウントします。</li>
		<li>オイルの液浸と光学顕微鏡 (600 X) の下でスライドを配置します。</li>
		<li>少なくとも 500 の非扁平上皮細胞をカウント: 好中球、好酸球、マクロファージ、リンパ球、上皮細胞。 注: 差動細胞数は通常 1 つだけが実行または 2 つは専用判定不一致を制限するオブザーバーを訓練を受けた。</li>
		<li>レコードの絶対値と各セルのパーセンテージを入力します。</li>
	</ol>
	</li>

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</ol>

著者が明らかに何もありません。

誘発喀痰法は、気道のコンパートメントを勉強する役に立つツールです。この手法のいくつかの用途があります。最初に、それは免疫細胞と様々 な呼吸器疾患に関与するメカニズムについての知識が向上します。たとえば、この方法は、患者の大規模コホートで気道炎症の調査を許可している、喘息患者の約半分が、気道の異常好酸球性炎症15,によって特徴付けられることが示されています。16,17, COPD 患者は通常発生した喀痰中の好中球を展示中は、18 をカウントします。この手法は、特発性肺線維症患者における気道炎症のより良い評価してこの病19に貢献するかもしれない証拠調停にも貢献しています。第二に、誘発喀痰法は治療への反応を予測する役に立つかもしれません。たとえば、喀痰中好酸球の割合が異常の存在はステロイド反応性11,18の予測マーカーに示されています。喘息や COPD、11 現在臨床ガイドラインに従って治療を調整するよりも増悪の減少に効果的であることが示された喀痰中好酸球の割合を正規化するコルチコステロイドの投与量を調整 ,20,21。第三に、喀痰分析はターゲットを絞った治療法の開発に役立つことがあります。たとえば、COPD と気管支喘息患者の喀痰中好中球の異常な数の存在は、antineutrophilic 治療11の開発につながっています。第四に、技術は、診断で役割を果たす可能性があります。たとえば、喀痰中好酸球の存在は非喘息好酸球性気管支炎11の診断をする必要です。
差動細胞数を取得するには、ほか喀痰を誘導する手法は、喀痰培養上清または喀痰細胞を研究することによって多くの追加解析のパフォーマンスもことができます。喀痰培養上清中のメディエーター8,19,22の分析と好酸球22サンプルの遊走活性の評価があります。喀痰細胞から RNA を抽出してマイクロ Rna を使用できるまたは遺伝子発現解析19,23 。喀痰細胞は、とりわけ、診療とセルを並べ替えできる流れ cytometry9,23で分析できます。さらに、喀痰細胞培養10日をすることができ、その伝達物質産生体外測定24をすることができます。それはここでは注目に値する、調停内容がわかること喀痰の培養上清から異なります。確かに、居住者の気道からの分泌物、喀痰細胞培養モデル24に反して、プラズマ滲出喀痰培養上清中メディエーターを影響可能性があります。最後に、免疫細胞化学およびその場で交配も行える喀痰細胞7を使用します。
誘発喀痰法には、いくつかの制限があります。誘導は、医療監督の下で行う必要があります。また、患者に徹底した指示を与えるオペレーターのために不可欠です。他の制限には呼吸努力が必要な協力と患者の健康状態が含まれます。子供でこの技術の可能性について成功と256 歳以上のお子様に安全なだったいくつかの研究を報告しています。上の子のデータ &#60;25, 6 歳に欠けているが、それは喀痰誘発がそれらの子供14で行うことは困難である可能性。技術は、それが技術的に困難な時間のかかる、それは訓練を受けたスタッフ1を必要とするので、サービス、専門センターを研究に制限されています。別の制限は、喀痰誘発と分析の手法は、常に成功すると、読みやすい cytospin26常に得られないことを意味ないです。ただし、成功率は約 80% 患者4,26,27,28,29の異なるコホートでは通常。喀痰細胞数30,31に影響を与えるようだった時代のマッチングについての患者の別のコホートを比較するとき最後に、注意が必要です。同様に、ジェンダーとタバコの習慣などの他のパラメーターは、彼らはまた、喀痰細胞数29,32妨げる可能性があるに一致しなければなりません。患者照合が不可能な年齢、性別、喫煙の有無を考慮する別の方法これらの特性の統計的分析を調整することです。
誘発喀痰法気道生検、気管支肺胞洗浄などから細胞を集めることができる他の技術と比較して単純な安定、安全、再現性、費用効率、および非侵襲的であることの利点があります。これらの利点は大規模で、時間をかけて、繰り返し実行する誘発喀痰法の許可し、気道サンプリングに最適な代替は。Bronchosorption は、気道メディエーター33を査定するために粘膜内層流体のコレクションを許可する別の手法です。このテクニック (必要とする気管支鏡検査) は誘発喀痰検査法よりも、唾液で汚染を回避し、気管支肺胞洗浄33より仲介人の高い濃度を得ることの利点があります。
重要なステップには、プロトコルでは注意が必要。最初に、これらの 2 つのパラメーターが結果に影響を与える標準化された34,35になっているために、生理食塩水の濃度および、誘導時間をに関する注意を取られなければなりません。第二に、DTT の孟は処理の重要なステップです。PBS と比較してより喀痰細胞7スライド、cytopsin、品質が向上し、再現可能なセルの数2を持つことが不可欠ですを分散させる DTT を示した。ただし、粘液溶解剤は、生化学成分の測定を妨げる可能性があります。実験をスパイクは、新しい生化学的化合物36を測定するときに、実行する必要があります。最後に、プロシージャのもう一つの重要なステップは信頼性と解釈できる結果を確保するための訓練を受けた技術者が行う必要があるステップを数えるセルです。
全体の痰ではなく喀痰プラグ (粘性や密度の高いパーツ) を使用して別の方法は文献7に説明されています。両方の技術の長所と短所があります。全体喀痰手法によりより迅速な処理7が、頻繁にサンプルを希釈し、cytospins2,7の質を減らすことができます唾液で汚染されています。プラグ選択手法でサンプルが cytospin スライド7流体相のメディエーターの投与のためのより良い品質の多いことを意味する唾液の汚染は低減されます。処理はしかし長く7と選択したプラグは、サンプル全体の37の代表できない場合があります。またすべてのサンプルを含むプラグ、制限することができますは注目に値するです。両方のメソッドは、検証と再現と両方これらのメソッドから取得した差分のセル数が異なる14,38だという証拠がないです。
将来は、誘発喀痰検査法を臨床ツールとして使用して、調査、診断、および炎症性呼吸器疾患のすべての種類の管理のためのバイオ マーカーを提供する可能性があります。

気道炎症を調べるにいくつかの方法を使用: 直接測定 (気管支生検、気管支肺胞洗浄など) と間接法 (症状評価のような血液サンプルの分析および肺機能検査)1。直接テクニック確実に気道炎症を評価するという利点がありますが、侵襲と不可能で大規模な患者の不快感のため、リスク発生1。間接法としては不十分な気道炎症1の直接の評価と相関する彼ら。
喀痰コレクション気道からサンプル細胞に別の方法、気道炎症の直接の評価を可能です。それにもかかわらず、自発的に痰の生産質の悪いサンプルにつながる可能性があります、すべて患者2は不可能します。この問題は、喀痰生産2を誘発する超音波噴霧高張生理食塩水を使用してによって克服されています。このメソッドは、ニューモシスチス ・ カリニ肺炎3の診断用ひと免疫不全ウイルス (HIV) に感染した患者に使われた当初、健常者と喘息患者 1992年4に適応されました。喀痰誘発は等張生理食塩水5を使用してもより深刻な患者で可能であります。一般的に忍容されている生理食塩水の吸入は hyperresponsive 航空5患者の気管支けいれんを引き起こす可能性があります。したがって、手順1の前に短時間作用の β 作動薬を管理することをお勧めします。さらに、我々 は以前超音波ネブライザーで食塩にサルブタ モールを追加することでこのリスク6さらに減少したことを示しています。喀痰誘発の利点は、それは非侵襲的な2 、5のとき適切な安全予防措置です。
喀痰サンプルの処理の 2 つの方法は文献で現在使用されて: 全体痰法とプラグの選択7。当研究室全体痰法が行われます。喀痰処理の主な目的は、炎症気道内腔に存在の種類を研究する差分セル数を取得することです。ただし、多くの追加解析は喀痰培養上清中8で仲介人を研究することによって、または喀痰細胞の詳細な調査を実行することによってさらに炎症性プロセスおよび免疫のメカニズムを調査することも (など、流れ cytometry9セル文化10、ゲノム10、プロテオミクス10、免疫細胞化学7の in situハイブリダイゼーション7、等)
喀痰誘発と分析の手法は、現在は技術的に困難な時間のかかる、1訓練を受けたスタッフが必要ですのでサービス、臨床専門センターを研究に限定されます。気道の炎症は、喘息、慢性閉塞性肺疾患 (COPD)、慢性の咳、または特発性肺線維症11のような様々 な呼吸器疾患のためこの方法で調査されるかもしれない。

<table><tbody><tr><td>肺活量計 - Spirobank</td><td>MIRフランス</td><td></td><td></td></tr><tr><td>サルブタモールMDI - Ventolinグラ</td><td>クソスミスクライン</td><td>CNK:0135-913</td><td>国で利用可能な薬を参照してください</td></tr><tr><td>ネブライザーUltraNeb</td><td>DeVilbissヘルスケア 米国</td><td>UltraNeb U3000</td><td></td></tr><tr><td>Devilbiss UltraNeb 使い捨てカップ&蓋</td><td>DeVilbissヘルスケアUSA</td><td>100HD-647</td><td></td></tr><tr><td>UltraNebネブライザー用DeVilbissバクテリアフィルター</td><td>DeVilbiss Healthcare USA</td><td>1001005879</td><td></td></tr><tr><td>一方向バルブ</td><td>ハドソンRCI USA</td><td>41664</td><td></td></tr>一<tr><td>方向バルブ</td><td>ハドソンRCI USA</td><td>41665</td><td></td></tr><tr><td>エアロゾルTコネクタ&nbsp;</td><td>ハドソンRCI米国</td><td>41077</td><td></td></tr><tr><td>換気回路モノブランチ波形</td><td>国際医療フランス</td><td>TA30A</td><td></td></tr><tr><td>NaCl 5 %&nbsp;</td><td>/</td><td>/</td><td>当院薬局</td></tr><tr><td>Mini-Plasco NaCl 0.9%</td><td>B.Braun Medical社製&nbsp;Diegem Belgium</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Salbutamol sulfate 5 mg/mL - Ventolin</td><td>GLAXOSMITHKLINE</td><td>CNK: 0094-987</td><td>国内で利用可能な薬剤を参照</td></tr><tr><td>臭化イプラトロピウム 0.25 mg/2 mL - Atrovent</td><td>Boehringer Ingelheim Germany</td><td>CNK: 1543-305</td><td>国内で利用可能な薬剤を参照</td></tr><tr><td>Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline</td><td>LONZA Belgium</td><td>BE17512F</td><td></td></tr><tr><td>Sputolysin 試薬</td><td>Calbiochem</td><td>56000</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Blue 0.4% solution 100 mL</td><td>LONZA Bio Whittaker Belgium</td><td>17-942E</td><td></td></tr><tr><td>Hemocytometer - Thoma chamber</td><td>Labor Optik Lancing UK</td><td>1500000</td><td></td></tr><tr><td>Hemacolor Stainig set</td><td>Merck Belgium</td><td>1116610001</td><td>Alternative product&nbsp; : Diff Quik Staining Set &nbsp;メディオン診断&nbsp;</td></tr><tr><td>封入剤 - Entellan</td><td>Merck Belgium</td><td>107960</td><td></td></tr><tr><td>Statspin Cytofuge 12&nbsp;</td><td>ベックマン・コールター</td><td>ベルギーX00-003066-001</td><td></td></tr></tbody></table>

喀痰誘発および実験室の処理のための方法論

Methodology for Sputum Induction and Laboratory Processing

喀痰誘発と処理の手法はコレクション、喘息、慢性閉塞性肺疾患 (COPD) のような様々 な呼吸器疾患における興味深いである気道からの細胞の分析を許可する認められた非侵襲的な方法慢性の咳、または特発性肺線維症。この手法はよく容認、安全かつ非侵襲的、技術的に困難、時間のかかるは、訓練を受けたスタッフが必要ですので、臨床研究サービスおよび専門センターに現在限定は。喀痰誘発の解析成功率は約 80% です。
ここでは、喀痰の誘導および実験室の処理について述べる.サルブタ モールと高張または等張生理食塩水の吸入による喀痰。処理全体痰テクニックを使用します。ジチオトレイトール (DTT) は、喀痰の孟を許可する使用されます。喀痰処理の主な目的は、気道の内腔内にあるセル型を研究する差分セル数を取得することです。追加の分析は、喀痰培養上清中の炎症性プロセスや免疫機構に調査を進めることがありますの喀痰細胞も実行可能性があります。喀痰培養上清中メディエーターを勉強し、フローサイトメトリー、ゲノミクス、プロテオミクスなどの喀痰細胞の解析の大きいスペクトルを実行するがあります。
最後に、健常者、喘息、COPD 患者の喀痰分析の代表の結果が掲載されています。

検定 典型的なイメージは、検定を用いた顕微鏡で可視化した図 1に示すように。扁平上皮細胞は識別簡単に彼らが非扁平上皮細胞よりもはるかに大きい。これらの扁平上皮細胞、上皮細胞、口の中から来る。両方の種類の細胞はトリパン青死んだとき汚れます。酵母、細菌、およびスクラップをカウントを避けるために注意する必要があります。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56612/56612fig1.jpg"> 
図 1: 死んで非扁平上皮細胞と、(C)、扁平上皮細胞 (A) 生活非扁平上皮細胞、(B) を示す検定画像。スケールバー = 50 μ m.<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56612/56612fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
Cytospin スライド: 喀痰処理後に得られる cytospin スライドの代表イメージを図 2に示します。形態と色によって、異なる種類の細胞 (好中球、好酸球、マクロファージ、リンパ球、上皮細胞) を区別できます。いくつかのケースで扁平上皮細胞による汚染は重要な可能性があり、扁平上皮細胞の割合が 80% を超える場合、サンプルは失敗した (図 3)。
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56612/56612fig2.jpg"> 
図 2:好中球、マクロファージ、好酸球、(C) (D)、リンパ球 (B) (A) を示す Cytospin スライド画像と上皮細胞 (E)。スケール バー = 20 μ m.<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56612/56612fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56612/56612fig3.jpg"> 
図 3:質の悪い cytospin スライドの例 &gt; 扁平上皮細胞の 80%。スケール バー = 20 μ m.<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56612/56612fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
成功率 当科で (成功した誘導と読める cytospin を組み合わせた) プロシージャの成功率 1,129 患者 (健常者、喘息または COPD 患者) のサンプルに基づく、82% (924/1,129) です。患者のタイプによるとサブ解析で成功率は 75% (57/76) 健常者で、82% (827/1,004) 喘息、COPD 患者の 82% (40/49)。
健常者の結果 当科の中央 (四分位範囲) から 289 健常者のシリーズのレトロスペクティブ分析で 3.72 g (四分位幅 2.46 g-5.54 g) であり、喀痰の中央値の合計非扁平上皮細胞数/g が x 106 (0.59 喀痰重量0.37 x 10 の四分位範囲6 - 1.29 × 106)。
、それらの健常者に扁平上皮細胞の比率は 19% (10%-34%) と低水準と生存率は 66% (54 78%) に高い。異なった細胞のタイプの割合に関する結果は、図 4 aにまとめたものです。マクロファージ (49% [31-68%]) の比率中リンパ球 (2% [1-3]) の割合 (34% [14%-60%])、好中球の割合よりも高くなって、好酸球 (0% [0% 0%]) と上皮細胞 (4% [2 11%]) が低いことがわかります。これらの結果は、データを絶対値 (図 4 b) で表現した場合に似ています。
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56612/56612fig4.jpg"> 
図 4:健常者にみられる差動細胞数の代表の結果は絶対値をパーセンテージ (A) または (B) で表されます。結果は、中央 (四分位幅) として表示されます。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56612/56612fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
また、患者の年齢を考慮することが重要です。確かに、強い相関が痰のサンプル (図 5) 患者さんの年齢と好中球の割合の間に存在。同様に、10 年間の年齢別グループ (図 6) によると患者を分類するとき増加する年齢と好中球の割合が大幅に増加を見ました。したがって、別のコホート研究の結果を比較するときにこの変数を考慮する必要があり、主題の一致に注意する必要があります。
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56612/56612fig5.jpg"> 
図 5:年齢および喀痰中の好中球の割合の相関。相関関係を求めたスピアマン テスト。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56612/56612fig5large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56612/56612fig6.jpg"> 
図 6:年齢カテゴリによると好中球比率の進化します。分散分析の p 値は &lt; 0.0001 好中球の割合年齢クラス間の比較のため。複数の比較は、ダンの多重比較検定で作られました。P 値は次のように表されます: * p &lt; 0.05 * * p &lt; 0.01 と * * * p &lt; 0.001。結果は、中央 (四分位幅) として表示されます。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56612/56612fig6large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
呼吸器疾患を患っている患者の結果 誘発喀痰検査法のテクニックは、気管支喘息患者における炎症細胞プロファイルを評価するために使用されます。この手法は、別の炎症性呼吸器疾患、COPD を患っている患者にも適用可能性があります。健常者、喘息、COPD 患者 (年齢、性別、およびタバコの習慣の一致する 3 つのグループ) を比較すると、炎症性細胞プロファイルは全然違うこれらのコホート (図 7) を観測しました。確かに、気管支喘息患者通常によって特徴付けられる上げられた喀痰中好酸球、喀痰中好中球の割合は、健常者に比べて COPD 患者で通常より高い疾患重症度に結びついています。
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56612/56612fig7.jpg"> 
図 7:健常者の喀痰炎症細胞プロファイル (n = 45)、気管支喘息患者 (n = 108)、および COPD 患者 (n = 54).3 つのグループは、性別、年齢、タバコの習慣に一致しました。ANOVA の p 値が &lt; 0.05、&lt;、0.0001 と &lt; 0.0001 好中球、好酸球、マクロファージ、グループ間の比較のためそれぞれ。複数の比較は、ダンの多重比較検定で作られました。P 値は次のように表されます: * p &lt; 0.05 と * * * p &lt; 0.001。結果は、中央 (四分位幅) として表示されます。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56612/56612fig7large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

ここで喀痰誘発の手法について述べる。このプロトコルは、喀痰処理差分セル数を数えるために、喀痰培養上清を収集するために、さらなる分析のための細胞にも説明します。

The technique of sputum induction and processing is a recognized non-invasive method allowing the collection and analysis of cells from the airways, which ...

誘発された痰の技術は、90年代初頭に開発されました。この技術は、喘息、COPD などの閉塞性気道疾患の新しい情報を調査するために提案され、最近では肺線維症の新しい情報を調べることにも関心が寄せられています。この技術の主な利点は、気管支鏡検査とは対照的に、比較的非侵襲的であることです。この処理には実験室での作業が必要で、時間がかかるため、かなり要求が厳しく、時間がかかり、実験室での専門知識が必要で、どのセンターでも入手するのが難しい技術であることは明らかです。誘発された喀痰の技術は2つの部分で構成されており、最初の部分は誘導であり、2番目の部分は処理です。喀痰を誘発する前に、患者が生成できる量と流量の評価である肺活量測定を実施する必要があります。そして、喀痰の誘発自体が気管支痙攣を引き起こす可能性があるため、患者の肺活量測定のベースライン値を絶対に知る必要があります。そこで、最初に肺活量測定を行い、次に患者に気管支拡張薬を投与し、通常は400マイクログラムのサルブタモールを投与して、患者の気道を最大限に開き、導入期に発生する可能性のある気管支痙攣を予防します。そして15分後、再び肺活量測定を測定し、肺活量測定のベースライン値、特に患者が1秒以内に吐き出すことができる量であるFEV1を調べます。推奨レベルまで蒸留水をネブライザーチャンバーに注ぎます。ネブライザーチャンバーにきれいなカップを置きます。充填されたキャップを適切な蓋で覆います。気管支拡張薬後のFEV1が予測された65%を超える場合は50mLの高張生理食塩水、気管支拡張薬後のFEV1が予測された65%未満の場合は50mLの等張生理食塩水9%でカップを満たします。1.75サルブタモール硫酸塩溶液を5ミリグラム/mlの濃度でカップに加えます。メーカーの指示に従ってチューブとバルブを接続します。この技術は、医師の監督の下で実行する必要があります。患者に検査の原理を説明します。患者にノーズクリップを使用するように依頼します。ネブライザーを始動し、エアロゾルとファンの設定の最低レベルを選択します。患者にマウスピースからエアロゾルを吸い込み、潮汐呼吸をするように依頼します。.エアロゾルとファンの設定のレベルは、患者の耐性に応じて増加する場合があります。呼吸器系の不快感による胸部の圧迫感がある場合は、処置を中止し、肺活量測定を行って患者のFEV1値を測定します。吸入から5分後、または咳や吐き気がある場合は、ネブライザーを停止してください。ノーズクリップを外し、口をすすぎ、水道水で2回うがいをし、この水を流しに捨てるように患者に依頼してください。その後、患者が喀咳をして咳き込み、プラスチック容器に喉から出ているものを吐き出します。FEV1を測定するために、最初の呼吸操作を行います。喀痰産生の各暫定的な後、FEV1 値を測定します。FEV1 値が 20% 以上低下した場合、手順を停止し、患者に臭化イプラトロピウムの噴霧を行います。これは、手順中にすでに投与したベータ 2 アゴニストと組み合わせて作用する抗コリン作用薬です。FEV1値が20%以上低下しない場合は、患者が生成する痰の質と量に応じて、合計10〜20分間手順を続行します。喀痰のサンプルを入手したら、処理まで冷蔵庫に保管してください。したがって、2番目の部分は喀痰の処理で構成されており、このために、最初にこの処理に使用する2つのソリューションを準備する必要があります。だから私たちはDTTとしても知られるDithiothreitolを準備する必要があります。溶液は、6.5ミリモル溶液を得るために、DTTを滅菌水で希釈することによって調製する必要があります。そのため、DTTを周囲の空気にさらさないようにする必要があり、これには注射器と針を使用します。次に、トリパンブルー溶液を調製する必要があります、そしてこのためにあなたはトリパンブルーでDPBSの希釈を行わなければなりません、0.08%の溶液を得るために、喀痰に関しては、50mLの円錐形の底のプラスチックチューブに全体の喀痰を移し、サンプルを秤量する必要があります。DPBS溶液の3倍の重量を追加します。サンプルを30秒間ゆっくりとボルテックスし、800gで摂氏4度で10分間遠心分離します。上清を50mLの円錐形の底部プラスチックチューブに集め、滅菌ガーゼの2つの単層でろ過します。上清を2mLのプラスチックチューブに割り付け、マイナス80°Cで保存します。なお、上清サンプルは喀痰の三相成分として有用です。セルパレットの容量が5 mL未満の場合は、DPBSを添加して細胞懸濁液の容量を5 mLにします。細胞懸濁液を1容量のDTTで6.5ミリモルで希釈します。ベンチワーカーと一緒に室温で20分間細胞懸濁液を揺さぶります。細胞懸濁液をDPBSで少なくとも3倍に希釈します。希釈した細胞懸濁液を550gで4°Cで10分間遠心分離します。上清を捨てます。セルパレットを約1 mLのDPBSに懸濁します。細胞懸濁液の正確な量を評価し、記録します。希釈したトリパンブルー溶液50マイクロリットルに50マイクロリットルの細胞懸濁液を加え、均質化します。ヘモシルサイトメーターのカバースリップの下にサンプルを置き、光学顕微鏡の下に置きます。細胞懸濁液の細胞濃度、扁平上皮細胞の割合、および非扁平上皮細胞の生存率を評価します。懸濁液の割り当てをDPBSで希釈して、1mLあたり500,000細胞で少なくとも350マイクロリットルの細胞懸濁液を得る。製造元の指示に従ってセルコンセントレーターを組み立てます。細胞濃縮器の3つのコンパートメントのそれぞれに100マイクロリットルの細胞懸濁液を追加します。細胞遠心分離機で室温150 gで2分間遠心します。上清を捨てます。スライドを風乾させます。スライドは、メーカーの指示に従ってdiv quickまたはニッケル価染色キットで染色します。封入材とカバースリップで取り付けます。スライドを油浸した光学顕微鏡の下に置きます。少なくとも500の非扁平上皮細胞、好中球、好酸球、マクロファージ、リンパ球、および上皮細胞を数え、絶対値とパーセンテージ、および細胞タイプを記録します。結果に関しては、血球計算盤を使用して、着色されていない生きている非扁平上皮細胞を数える必要があります。また、青色で着色された死んだ非扁平上皮細胞。そして扁平上皮細胞。これらの細胞は、口から出てくる上皮細胞です。それらは大きいので、小さな人間の細胞に比べて認識しやすいです。したがって、バクテリア、酵母、またはスクラップを数えることも避ける必要があります。細胞懸濁液に扁平上皮細胞が80%以上含まれている場合、このサンプルは質が悪く、サイトスピンスライドには適していないと考えられます。したがって、このサンプルは失敗と見なされます。染色されたサイトスピンのカウントは、細胞の色とその形態に従って行われます。ザ・ 好中球、主な特徴は、細胞の識別を容易にした多葉性核です。これらのセルは丸く小さく、ニュートラルピンクで着色されています。ザ・ 好酸球、これらの細胞は赤い顆粒で構成されており、簡単に識別できます。これらの細胞のサイズは好中球に近いです。ザ・ マクロファージ、それらは好中球の2〜5倍大きく、青色で着色されています。細胞質には破片や液胞が含まれている可能性があります。ザ・ リンパ球、これらの細胞は丸くて小さく、青色で着色されており、大きくて密な核を持っています。上皮細胞は円柱状で、ピンク色に着色されており、多くの場合、上部に繊毛が見られます。ここでは、扁平上皮細胞が80%を超えるサイトスピンサンプルが読めない例をいくつか紹介します。これは非常に有用な技術だと思いますが、喀痰の誘導は医師の監督の下で行わなければならないため、非常に注意する必要がありますが、喀痰の誘導の技術は、気道内の患者の炎症状態について多くの情報を提供します。上清中のさまざまな生化学的マーカーを測定でき、細胞部分のさまざまなものも測定できるため、誘導された喀痰により、フローサイトメトリー、プロテオミクス、トランスクリプトミクス、さらにはゲノミクスを実行できます。

methodology-for-sputum-induction-and-laboratory-processing

Research

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粘液は、嚢胞性線維症の気道を差し込ま（CF）の患者は、微生物病原体が繁栄するための理想的な環境です。原稿は、彼らが病気を引き起こし、どのように化学的条件の変化は、微生物のダイナミクスを駆動することができ模倣環境でCF肺microbiomeを研究するための新規な方法を説明します。...

WinCFモデル - 肺感染症の微生物学を研究するための粘液で閉鎖された細気管支の安価で収縮可能なマイクロコスモス

このプロトコルは嚢胞性線維症の患者の喀痰内の細菌のセルそして多糖類の統合の遺伝子座(Psl)の多糖類の視覚化のための方法を提供する。...

嚢胞性線維症患者の喀痰中の 緑膿菌 の可視化

このプロトコルは、真空支援吸着剤抽出法、Entechサンプル調製レールを使用した質量分析と組み合わせたガスクロマトグラフィー、およびデータ分析による生体サンプルからの揮発性有機化合物の抽出を記述しています。また、生物学的サンプルの培養および安定同位体プロービングについても記載する。...

真空支援吸着剤抽出によるヒト関連サンプルからの活発に生産された微生物揮発性有機化合物の捕捉

このプロトコルは、標準的なフローサイトメトリックプラットフォーム上の単一細胞懸濁液に痰を解離し、その後の細胞サブセットの特性を分類するための効率的な方法を説明する。...

フローサイトメトリーによる品質管理痰解析

さまざまな細菌性病原体は、正確に検出され、迅速に治療されない場合、気道感染症を引き起こし、深刻な健康問題を引き起こす可能性があります。ループを介した等温増幅...

マイクロ流体チップベースのループ媒介等温増幅による下気道感染症を引き起こす細菌性病原体の迅速な検出

この記事では、個々の粒子状物質曝露レベルでの内部被ばく線量を評価することを目的として、気道マクロファージの炭素含有量を測定するための詳細な実験プロトコルについて説明します。...

炭素含有粒子状物質に曝露された気道マクロファージの炭素含有量の測定

本稿では、マトリックスベースの抽出法と磁気ビーズ精製を組み合わせた、除染された喀痰からのDNA抽出に最適化された方法を提示し、ダウンストリームの標的次世代シー ケンシングに取り組みます。...

除染された喀痰サンプルの標的次世代シーケンシングのためのマトリックスベースのDNA抽出

脂肪パッドの吸引は、全身性アミロイドーシスの診断にアミロイドを検出するためには、他の方法に比べて優先、低侵襲、低コストのアプローチです。このビデオの記事では、最適な診断結果のための検体の適切な処理によって脂肪パッドの吸引を行うための手続きの概要を示しています。...

アミロイドのための前方脂肪パッドのFNAの実行と処理

どの年齢でも測定gyrification（皮質フォールディング）は初期の脳の発達にウィンドウを表します。したがって、我々は以前に半球上の点の数千にローカルgyrificationを測定するアルゴリズムを開発...

ローカルGyrificationのインデックスを計算するステップバイステップのチュートリアル：MR画像からの皮質折りたたみを測定する方法

学ぶ喀痰誘発法と実験室処理のプロトコル。気道閉塞性疾患や肺線維症の研究に有用な非侵襲的サンプリング技術です。細胞解析と上清液収集の詳細な方法を解説します。

喀痰誘発および実験室の処理のための方法論

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