Name: パラフィン包埋と顕微解析の微生物コロニー バイオ フィルムの薄い断面 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-23T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 52 s
Description: 学ぶ パラフィン包埋法による微生物コロニーバイオフィルムの薄切法。蛍光タンパク質を用いた遺伝子発現分布の可視化と高解像度顕微鏡観察が可能になり、バイオフィルム構造の詳細解析に役立ちます。

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この作品は、NSF のキャリア賞を受賞 1553023 と NIH/NIAID 賞 R01AI103369 によって支持されました。

1. 緑膿菌コロニー バイオ フィルムの成長
<ol><li>中二層プレートの準備<ol>
<li>トリプトン 10 g/L、寒天 10 g/L を準備脱イオン水 (材料の表を参照) ソリューション。</li>
		<li>水浴中で 20 分 50-60 ° C に涼しいオートクレーブ。</li>
		<li>トリプトン寒天培地溶液 45 mL を注ぎ 100 mm × 100 mm 角皿 (材料の表を参照してください) 50 mL コニカル チューブを使用します。寒天を固めるための許可 (20 ~ 30 分)。最初の層の上に 2 番目、15 mL の層を注ぐ。一晩固化させるは、糸くずのティッシュで拭くことによって必要に応じて蓋から結露を除去します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>バイオ フィルムのコロニー スポッティング<ol>
<li>LB 寒天培地プレート13に冷凍庫株から関心の系統を連勝し、37 ° C、80-100% の相対湿度で 12-16 時間暗闇の中で孵化させなさい。</li>
		<li>各ひずみまたは複製、LB の 2 mL を接種して 250 rpm で振とうしながら 37 ° C で 12-16 h のため暗闇の中でインキュベートする単一コロニーを使用します。</li>
		<li>新鮮な LB と 250 rpm で振とうしながら 37 ° C で 2.5-3 時間暗闇の中でインキュベートに 1: 100 希釈することによってサブカルチャーします。</li>
		<li>分光光度計を使用して光の密度を測定し、OD に細胞懸濁液を達成するために無菌の LB で調整500 nm ~ 0.5。</li>
		<li>目的のコロニーによってサイズ、(1.1 の手順で準備) 中二層板に細胞懸濁液のピペットで移しなさい 2.5-10 μ L とペトリふたを半開き直火の近く残して 〜 20 分が乾燥を促進するために乾燥するスポットを許可します。</li>
		<li>25 ° C と 80-100% の相対湿度、最大 4 日間の暗闇の中で植民地に斑点を孵化させなさい。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 固定液の作製
<ol><li>サンプルの収穫の日に固定液を準備します。37% ホルムアルデヒド (FA) を 4% の最終的な集中に 1x PBS で希釈 FA。 注意: FA は揮発性、有毒です。保護具を着用し、換気発煙のフードで働きます。</li>
	<li>使用直前に溶解 4 %l-リジン塩酸塩 50 mM L リジン塩酸の最終的な集中に室温で FA (ステップ 2.1 の準備)。</li>
</ol>3. [オプション] コロニー バイオ フィルムの中に定着剤のアプリケーションを直接します。
注: 我々 はバイオ フィルム形態最高固定前に寒天オーバーレイを追加するとき、保持されることを発見しました。ただし、この手順は、遺伝子発現に影響を及ぼす環境の変化も構成します。蛍光レポーターの発現パターンは、前述のように固定ステップは寒天で、オーバーレイの追加前に実施するため、別々 のプロトコルを使用してしたがって検証すべき。
<ol><li>固定および換気のヒューム フードでの作業の日、植民地の端、それを沈めることがなくコロニーの周囲に到達することができます周りの寒天培地の表面に直接手順 2 で準備定着剤をピペットします。多くの定着剤は完全に必要に応じてサラウンド植民地として約 500 μ L。 許可植民地および周囲の寒天に拡散して定着剤だけに適用されます。</li>
	<li>定着剤は植民地と周辺メディア、約 20-30 分に完全に吸収されているし、残留 FA は、プレートに表示されなくなります、3.1 の手順を繰り返します。植民地および周囲の寒天に拡散してこの定着剤を許可します。</li>
	<li>定着剤は完全に植民地に吸収されているし、周囲メディア手順 3.1 では、この時間を直接植民地の表面に定着剤を適用します。植民地および周囲の寒天に拡散してこの定着剤を許可するに進むステップ 4 だけ結局定着性吸収されているし、は、プレートに表示されなくなります。</li>
</ol>4. オーバーレイする植民地寒天培地
<ol><li>固定の日、脱イオン水と溶解する 10 〜 20 分間のオートクレーブで寒天液 10 g/L を準備します。50 ° C の水浴でクールします。</li>
	<li>優しく成長培地や植民地を寒天溶液 15 mL を注ぐ。5 分 (図 1 b) 室温でゲルを形成する寒天を許可します。</li>
	<li>上の 2 つの層の間に積層コロニー広場では、3 層のチャックをカットするのに鋭いかみそりの刃を使用します。各チャックは、複数のサンプルを準備する場合は、同等のサイズにカットされます。</li>
	<li>優しくコロニー含むチャックから余分な寒天を削除します。</li>
	<li>チャック (図 1) の下層から寒天培地 (植民地含む) の 2 つの上位層を持ち上げる、1 × PBS または水でヘラのフラット ヘッドを濡れている、優しく上部と下部層の間に挿入します。積層の植民地は下部層から分離する必要があります。根元から持ち上げるとき積層コロニーを歪める曲げたりしないように注意します。</li>
</ol>5. 固定
<ol><li>すぐに埋め込みカセットに積層の植民地 (すなわち、2 層チャック) を転送換気ドラフトでの作業 (材料の表を参照) の付いた耐薬品性マーキングペン。ガラス スライド メーラーに埋め込みカセットを配置 (材料の表参照) 準備手順 2.1 2.2 定着剤が含まれています。埋め込みカセット内部に閉じ込められた気泡がないかどうかを確認します。</li>
	<li>室温で暗闇で一晩固定液にサンプルをインキュベートします。</li>
</ol>6. サンプル処理: バッファー洗浄、脱水、清算・浸透
<ol><li>一晩固定後サンプルを 1 h の 1x PBS で 2 回洗います。最高の結果を得るには、スピンを利用して試薬の均質化を自動化自動ティッシュ プロセッサの機能は、低設定に設定 (材料の表を参照)。プロセッサがない場合、処理は手動で実行できます。</li>
	<li>室温で 1 時間傾斜一連 1 × PBS (25%、50%、70%、95%) のエタノール (エタノール) 希釈液の脱水によるバッファー洗浄に従ってください。</li>
	<li>100% の 3 つの洗浄で脱水エタノール室温で 1 時間。</li>
	<li>100% オレンジ オイル ベース クリア エージェントの 3 つの洗浄で乾燥のサンプルをオフに (材料の表参照) 室温で 1 時間。</li>
	<li>潜入クリア サンプル 2 回溶融パラフィン ワックス (材料の表を参照)、加熱 2 時間、55˚C。</li>
</ol>7. サンプルの埋め込み
<ol><li>55 ° C に加熱溶融パラフィン ワックスとワックス金型を入力します。温水、フラット ヘラを使用すると、埋め込みカセットからワックスを金型、金型のベースに並列がチャックにかかっていることを確実に浸透したチャックをすばやく転送します。チャックに過度の圧力を適用することを避けるため。ワックス成形カスタム 3 D 印刷、または市販 (材料の表を参照)。</li>
	<li>4 ° C で一晩を固めるためのワックスを許可します。固形ワックスの成形品のサンプルは、4 ° C で不明確に保存される可能性があります。</li>
	<li>ワックスが凝固した、金型からサンプルを消費税し、かみそりの刃でサンプルの周りから余分なワックスをトリミングします。ミクロトームにクランプするために使用できるサンプルの断面、平面に平行の一方の端から拡張する余分なワックスを残す (材料の表を参照してください)。またサンプルのまわり、ワックス、約 1 mm の厚さのシースを残して、その面を滑らかに。</li>
</ol>8. 断面
<ol><li>42 ° C の水浴を加熱します。ブレードの端に垂直指向植民地の表面とミクロトームにサンプルをクランプ (材料の表を参照してください)。</li>
	<li>植民地の目的の平面に到達するまで、セクションが収集されます 50 μ m 間隔で試料をトリミングします。</li>
	<li>75-80 rpm のセクショニング速度・ 6 10˚ の逃げ角設定ミクロトームを使用して 10 μ m 厚いセクションの目的の数のリボンをカットします。細い絵筆を使用して、ブレードからリボンをデタッチします。</li>
	<li>風呂の水にリボンを転送 (推奨) パスツール ピペットや鉗子の先端に水のドロップを使用して、優しく。セクションの下のトラップ空気泡を避けるために注意してください。</li>
	<li>すぐに風呂の水にスライドを挿入し、45 の角度でリボンの下に配置。</li>
	<li>つや消しラベルのすぐ下のスライドにリボンの狭い端に触れます。リボンが従う必要があります。</li>
	<li>風呂の水、水の表面に垂直になる角度を調整し、その長さに沿ってスライドに対して平らにリボンからスライドを引きます。リボンの下に余分な水分をトラップを避けてください。</li>
	<li>優しく、吸水糸くずの組織は、セクションから余分な水分を吸湿発散性にスライドを立ってください。</li>
	<li>ペーパー タオルの上にスライドを置くし、暗闇の中で一晩室温で乾燥すること。スライドは、暗闇の中で 4 ° C で不明確に保存することができます。</li>
</ol>9. 熱固定、水分補給、と取り付け
<ol><li>45 ° C に平準化されたホット プレートを加熱します。30-60 分のスライドを加熱します。ワックスなり半溶融、スライドに張りつき。</li>
	<li>ホット プレートからスライドを持ち上げてそれを置く優しく滑らかな、平準化、室内温度表面にフラットをワックス凝固 (~ 1 分) までに溶けたロウがスライドのいずれかの側にプルしないように注意を使用して。</li>
	<li>4 洗浄の洗浄の間ソリューションを削除するを Büchner 吸引を使用して 5 分ごとに、エージェントをオフにスライドをワックス脱ガラス スライド メーラーを使用して。</li>
	<li>100% で 3 回スライドを洗う 1 分の江藤。</li>
	<li>傾斜一連のエタノール (95%、70%、50%、25%) を 1 分ずつ 1x PBS で 2 つの 1 分洗浄処理の逆の順序でスライドを水分補給します。</li>
	<li>トリス緩衝取付中の各セクションをすぐにマウント (材料の表を参照) し、気泡の発生を回避する、観察を適用。一晩常温で重合するメディアをマウントを許可します。</li>
	<li>重合、一度クリアのマニキュアを使用してスライドに coverslip をシールします。密封されたスライドは、4 ° C で暗闇の中不明確に保存されるかもしれない。</li>
</ol>

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</ol>

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パラフィン包埋、薄切片組織サンプルは微細形態構造のイメージングを有効にし、一般に真核生物の組織、使用、微生物サンプル8 にいくつかの成功と適用されている古典的な組織学的手法 ,9。Cryoembedding 内因性および蛍光信号の強力な保持できますが、パラフィン包埋は一般に望ましい形態16のより良い保全を提供します。この微生物バイオ フィルムへの応用法を適応で、私たちのシステムに固有の特性に着目。細胞と組織のマトリックス頻繁に開かれる一緒に比較的頑健、バイオ フィルムより繊細な; する傾向がある中我々 したがって、ルーチン固定とワックスのサンプル保持を最大限にプロトコルを埋め込むことに最適化されています。その成長の基質のサンプルを維持してすぐに固定する前に寒天培地にコロニーを重ねることは、サンプルが上端または基部から失われないことを保証します。ただし、余分なケアは、このステップの間にしなければならないので、高温で寒天をコロニーに重ねることと、コロニーが損傷することが。</p...

ほとんど微生物バイオ フィルム フォームする能力があります、セルのコミュニティは、セルフ プロデュースの行列で一緒に開催。バイオ フィルムは、栄養素と基板の提供の様々 な体制で物理的なセットアップの多くの種類で栽培できます。再現可能な多細胞構造を生成する傾向がある特定のアッセイのバイオ フィルム形成とコミュニティまたは巨視的レベルで系統発生的に多様な種のための一般的なアーキテクチャが観察されます。微生物は雰囲気下で固体媒体の植民地で栽培される、肉眼形態はマトリックス生産能力についての情報を伝えるし、他の特徴1,2,3とよく相関します。微生物コロニーの内部アーキテクチャは、バイオ フィルムに固有の化学および生理学に関する手がかりを提供することもが特徴付けることは困難されています。細菌のコロニーに cryoembedding、セクショニングの技術の最近のアプリケーションは、画像と前例のない解像度4,5,6で特定の機能の可視化に有効にしています。しかし、動物組織を用いた研究は、パラフィン包埋 cryoembedding 7と比較されたとき形態の優れた保存を提供し、組織8,9の細菌を視覚化するために使用されていることを示しています。したがって、固定、パラフィン包埋、微生物コロニー バイオ フィルムの薄切片法にプロトコルを開発しました。ここでは、緑膿菌PA14 コロニー バイオ フィルム中薄いセクション10,11, の作製について述べるが、の細菌によって形成されるバイオ フィルムにこの手法を行ったも正常にSynxantha 緑膿菌、枯草菌、とコレラ12。
パラフィン包埋、薄切片のバイオ フィルムの簡単な論理は次のとおりです。まず、バイオ フィルムは処理の間に形態を維持する寒天の層に包まれています。第二に、包まれてバイオ架橋高分子に定着剤に沈んでいるし、形態を維持します。アルコールで脱水しより非極性溶媒でクリアし、し、液体のパラフィン ワックスを浸透させた。潜入、一度サンプルは区分のためのワックスのブロックに埋め込まれています。セクションは、カット、スライド、マウントより本来の状態に戻すために復元します。この時点から、染色したり顕微鏡分析のためのメディアをマウントで覆われています。
このプロトコルには、組織学的解析に適した微生物バイオ フィルムの薄い部分が生成されます。コロニー バイオ フィルムの部分は、このメソッドを使用して薄い切片を光学顕微鏡検査によってイメージが表示されます。バイオ フィルムの個々 の機能のために特定のメディア含む蛍光汚れに成長してまたは退避手順の (ステップ 9.5 9.6) をマウントする前にすぐに染色もできます。最後に、その場でこれらのコミュニティ内での細胞分布や遺伝子発現の報告を許可する構成または規制的に蛍光蛋白質を生成する微生物を設計することができます。コロニー バイオ フィルム深度、セル分布、マトリックス分布、成長パターン、時空間の遺伝子発現を決定するこれらのメソッドを使いました。

<table><tbody><tr><td>5 3/4 "パスツールピペット</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>13-678-6A</td><td>大学のバイオストアから購入&nbsp;</td></tr><tr><td>寒天&nbsp;</td><td>テクノバ&nbsp;</td><td>A7777</td><td></td></tr><tr><td>ブフナーアスピレーター(真空)フラスコ&nbsp;</td><td>Pyrex</td><td>5340</td><td>大学のバイオストアから購入&nbsp;</td></tr><tr><td>耐薬品性マーキングペン</td><td>VWR</td><td>103051-182</td><td>メーカー:ライカ</td></tr><tr><td>クリア フィンガー ネイル ポリッシュ&nbsp;</td><td></td><td></td><td>店は</td></tr><tr><td>コンゴレッドインジケーターグレード</td><td>VWR</td><td>AAAB24310-14</td>を購入した<td>メーカー:Alfa Aesar</td></tr><tr><td>Coomassie Blue&nbsp;</td><td>VWR</td><td>EM-3340</td><td>メーカー:EMD Millipore</td></tr><tr><td>TRISバッファ実装媒体(DAPI付き)&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>50 247 04</td><td>メーカー: Electron Microscopy Sciences</td></tr><tr><td>Embedding Mold&nbsp;</td><td></td><td></td><td>3Dプリントされた社内</td></tr><tr><td>埋め込み型(商用)&nbsp;</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>70182</td><td></td></tr><tr><td>エタノール 200P</td><td>Decon Labs, Inc.&nbsp;</td><td>2701</td><td>大学バイオストアから購入&nbsp;</td></tr><tr><td>細い先端のブラシ</td><td></td><td></td><td>店が買った、ペイントブラシ</td></tr><tr><td>ガラスカバースリップ60x22mm</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>12-519-21C</td><td></td></tr><tr><td>ガラス再水和メーラー&nbsp;</td><td>テッドペラ</td><td>21043</td><td>20スライドメーラー&nbsp;</td></tr><tr><td>Histoclear-II、オレンジ油ベースの清澄剤&nbsp;</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>50 899 90150</td><td>メーカー:国立診断&nbsp;</td></tr><tr><td>Histosette, Embedding Casette</td><td>Fisher Scientific</td><td>15 182 701A</td><td></td></tr><tr><td>L-リジン塩酸塩&nbsp;</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>BP386 100</td><td></td></tr><tr><td>ロープロファイルミクロトームブレードフィ</td><td>ッシャーサイエンティフィック</td><td>22 210 048</td><td>メーカー:スターキー&nbsp;</td></tr><tr><td>マイクロピペット&nbsp;</td><td>VWR</td><td>89080-004</td><td>プロモーションパック</td></tr><tr><td>マイクロピペットのヒント&nbsp;</td><td>コメントセクション</td>を参照 コメント<td>セクション</td><td>p10 (Fisher Scientific, 02 707 469), p200 (VWR, 89079-474), p1250 (VWR, 89079-486)</td></tr><tr><td>ミクロトーム&nbsp;</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>905200U / 00016050</td><td>モデル:HM355S、メーカー:マイクロム、カタログなし、ベンダーカタログ#905200U / 00016050</td></tr><tr><td>ホルムアルデヒド、37%水性(ホルマリン)</td><td>リッカケミカル</td><td>RSOF0010-500A</td><td></td></tr><tr><td>パラプラストエクストラ(パラフィンワックス)</td><td>VWR</td><td>15159-486</td><td>メーカー:マコーミックサイエンティフィック&nbsp;</td></tr><tr><td>ペトリ皿スクエア100x100x15mm</td><td>実験室使い捨て製品&nbsp;</td><td>D210-16</td><td></td></tr><tr><td>塩化カリウム&nbsp;</td><td>EMDケミカルズ&nbsp;</td><td>PX1405-1</td><td>リン酸緩衝生理食塩水の成分、社内で調製&nbsp;</td></tr><tr><td>リン酸カリウム&nbsp;</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>P380-500</td>リン<td>酸塩緩衝生理食塩水の成分、社内で調製&nbsp;</td></tr><tr><td>カミソリの刃&nbsp;</td><td>VWR</td><td>55411-050</td><td>大学のバイオストアから購入&nbsp;</td></tr><tr><td>スライドウォーマー&nbsp;</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>NC0865259</td><td>非カタログ、ベンダーカタログ#12857D</td></tr><tr><td>塩化ナトリウム&nbsp;</td><td>VWR</td><td>0241-1KG</td><td>リン酸緩衝生理食塩水の成分、社内で調製&nbsp;</td></tr><tr><td>リン酸ナトリウム&nbsp;</td><td>VWR</td><td>BDH9296.500</td><td>、リン酸緩衝生理食塩水の成分、社内で調製&nbsp;</td></tr><tr><td>超凍土組織学スライド&nbsp;</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>12-544-2</td><td></td></tr><tr><td>組織浮選ウォーターバス&nbsp;</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>NC0815797</td><td>メーカー:テッドペラ、ベンダーカタログ#28156-B</td></tr><tr><td>自動ティッシュプロセッサ&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>813160U/Q#00009061</td><td>モデル: STP120 ティッシュプロセッサー</td></tr><tr><td>トリプトン&nbsp;</td><td>テクノバ&nbsp;</td><td>T9012</td><td></td></tr><tr><td>酵母エキス</td><td>テクノバ&nbsp;</td><td>9010</td><td></td>円</tr></tbody></table>

パラフィン包埋と顕微解析の微生物コロニー バイオ フィルムの薄い断面

Paraffin Embedding and Thin Sectioning of Microbial Colony Biofilms for Microscopic Analysis

真核生物において広く確立された技術は、パラフィン包埋による区分します。ここでの埋め込み・灌流のパラフィン ワックスを使用してそのまま微生物コロニー バイオ フィルムの断面、固定法を実施します。コロニー バイオ フィルムで使用するためこのメソッドを適応し、我々 はその成長基板の各サンプルを維持すると、寒天オーバーレイヤーのラミネート技術を開発し、固定液にリジンを追加しました。これらの最適化は、微細形態機能のサンプルの保存/保護を向上させます。この方法で作製した試料は、薄膜の断面と光、蛍光、および透過電子顕微鏡によるイメージングに適しています。緑膿菌 synxantha 菌、枯草菌、コレラ菌のコロニー バイオ フィルムにこの手法を用いています。ディテールはこのメソッドによって生成されるサンプルでの高レベル レポーターひずみと組み合わせて工学または特定の染料の使用は生理学と微生物の開発にエキサイティングな洞察力を提供することができます。

このメソッドは、明瞭な形態学的特徴と遺伝子発現のゾーンを DIC、蛍光顕微鏡、電子顕微鏡によって視覚化される前記バイオ フィルム薄いセクションを生成します。油浸対物レンズ × 40 を使用して DIC イメージングは、いくつかの形態学的特徴 (図 2 e) を表示するのに十分なことができますが、我々 はその蛍光を発見した恒常エクスプレス蛍光蛋白質に設計された系統の顕微鏡は、強化されたを提供しますサンプル (図 2 D) 内の細胞分布の可視化(図 2 b) 全体の植民地の断面を生成し、巨視的レベル (比較で全体の形態内の構造の特徴のローカリゼーションのためのコンテキストを提供する、個々 のセクションの画像を一緒にステッチすることができます。図 2 a、B、および C)。形態学的特徴と蛍光シグナルは、イメー...

固定、パラフィン包埋、および微生物コロニー バイオ フィルムの薄い断面技法について述べる。作製した試料では、顕微鏡によるバイオ フィルムの基礎部分やレポーターの発現パターンを視覚化できます。

Sectioning via paraffin embedding is a broadly established technique in eukaryotic systems. Here we provide a method for the fixation, embedding, and ...

この手順の全体的な目標は、無傷のネイティブ形態内での蛍光タンパク質産生によって報告される遺伝子発現の分布を評価するために使用できるパラフィン包埋バイオフィルム切片を生成することです。この方法は、エクソポリマー物質の生産における特定の遺伝子の発現がネイティブバイオフィルムアーキテクチャのコンテキストでどのように分布するかなど、微生物群集の研究における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、バイオフィルム断面の保存された形態内での遺伝子発現の解析を可能にすると同時に、明確な特徴の染色や共焦点顕微鏡や電子顕微鏡などの高解像度イメージングなどの下流処理にも適していることです。テキストプロトコルに従って寒天トリプトン溶液を調製した後、50ミリリットルの円錐管を使用して、100ミリメートル×100ミリメートルの正方形の皿に45ミリリットルの溶液を注ぎます。寒天が約20〜30分間固まるのを待ちます。最初の層の上に2番目の15mmの層を注ぎ、一晩固化させ、必要に応じて、糸くずの出ないティッシュを使用して蓋の結露を取り除きます。次に、コロニーバイオフィルムを見つけるために、テキストプロトコルに従って凍結ストックから単離された単一のP.Aeruginosaコロニーを成長させた後、細胞懸濁液の2.5〜10マイクロリットルを培地二重層プレート上にピペットで移動します。コロニーは、摂氏25度の暗闇、相対湿度80〜100%で最大4日間インキュベートできます。15ミリリットルの寒天溶液を増殖培地とコロニーに静かに注ぎ、寒天を室温で5分間ゲル形成させます。次に、鋭利なカミソリの刃を使用して、上部の2つの層の間にコロニーをラミネートした正方形の3層チャックをカットします。複数のサンプルを調製する場合は、各チャックが同等のサイズにカットされていることを確認してください。チャックを含むコロニーから余分な寒天をそっと取り除きます。次に、へらの平らな頭をPBSまたは水で濡らし、寒天の上層と下層の間にそっと挿入します。ラミネートされたコロニーを、耐薬品性のマーキングペンでラベル付けされた包埋カセットに直ちに移します。埋入カセットを、事前に準備した固定剤が入ったスライドガラスメーラーに入れます。サンプルを処理します。1X PBSを使用して、それぞれ1時間ずつ2回洗います。最良の結果を得るには、自動ティッシュプロセッサーのスピン機能の低設定を使用して試薬の均質化を自動化します。サンプルを埋め込むには、55°Cに加熱した溶融パラフィンワックスをワックス型に充填し、加熱した平らなヘラを使用して、浸潤したチャックを埋め込みカセットからワックス型にすばやく移し、チャックが金型のベースと平行になるようにします。ワックスが摂氏4度で一晩固まるのを待ちます。固体ワックスで成形されたサンプルは、この温度で無期限に保存できます。ワックスが固まったら、サンプルを型から取り出し、かみそりの刃を使用してサンプルの周りから余分なワックスを切り取ります。サンプルの一方の端から伸びるワックスを残して、ミクロトームに固定するために使用できます。ワックスに埋め込まれたサンプルは、その形状が滑らかな直線状のリボンの収集を容易にするようにトリミングすることが重要です。トリミングの小さな欠陥は、リボンにアーティファクトを生成し、セクションの完全性を損なう可能性があります。次に、ウォーターバスを摂氏42度に加熱します。次に、コロニーの表面をブレードの端に垂直に向けるように、サンプルをミクロトームにクランプします。コロニーの所望の平面に達するまで、サンプルを50マイクロメートル間隔でトリミングし、そこから切片を採取するミクロトームを75〜80 RPMの切片化速度と6〜10度のクリアランス角度に設定して行います。厚さ10マイクロメートルのセクションを必要な数のリボンにカットします。次に、先端の細いペイントブラシを使用して、リボンをブレードから取り外します。次に、パスツールピペットの先端に鉗子または水滴をさらして、リボンを水浴にそっと移します。すぐにスライドをウォーターバスに挿入し、リボンの下に45度の角度で配置します。リボンの狭い方の端を、つや消しラベルのすぐ下のスライドに接触させます。リボンが接着している必要があります。スライドをウォーターバスから引き出し、角度を調整して水面に対して垂直になるようにし、リボンがその長さに沿ってスライドに対して平らになるようにします。リボンの下に余分な水が溜まらないようにしてください。スライドを糸くずの出ない吸収性のあるティッシュにそっと立て、切片から余分な水分を逃がします。次に、スライドをペーパータオルの上に置き、室温で一晩暗闇で乾かします。水平にしたホットプレートを摂氏45度に加熱し、スライドをプレートに30〜60分間置きます。ワックスは半溶融し、スライドに対して平らになります。スライドをホットプレートからそっと持ち上げ、ワックスが固まるまで約1分間、滑らかな水平な室温の表面に平らに置きます。溶融ワックスがスライドの両側に引っ張られないことを確認してください。スライドガラスメーラーにサンプルを入れた状態で、清澄剤を4回洗浄し、それぞれ5分間スライドにワックスを落とします。Buchnerアスピレーターを使用して、洗浄の合間に溶液を除去します。100%エタノールを使用して、スライドを3回、それぞれ1分間洗浄します。次に、テキストプロトコルに従ってスライドを再水和した後、すぐに切片をトリスバッファー封入剤にマウントし、カバースリップを塗布します。切片の周りのオーバーレイ寒天は固定剤と反応しないため、フダンソウスライドに付着しません。この寒天は、再水和中に剥がれ落ちて切片を損傷する可能性があるため、再水和中に溶液を攪拌しないように注意する必要があります。封入剤を室温で一晩重合させます。重合したら、透明なマニキュアを使用してカバーガラスをスライドに密封します。最後に、密封されたスライドは、摂氏4度の暗闇で無期限に保管します。40倍油浸対物レンズを使用したDICイメージングは、バイオフィルムの薄切片の形態学的特徴を示すのに十分ですが、蛍光タンパク質を恒常的に発現するように設計された株の蛍光顕微鏡法は、サンプル内の細胞分布の視覚化を強化します。これらのパネルに示されているように、個々のセクションの画像をつなぎ合わせてコロニー全体の断面を生成することができ、巨視的なレベルでの全体的な形態内の構造的特徴の局在化のコンテキストを提供します。特定のプロモーターの制御下で蛍光タンパク質を発現するように改変された株を用いることで、遺伝子発現の分布を可視化することができます。さらに、コロニーは色素を含む培地で成長させることができ、または染色剤の特定の多糖類にポストセクショニングで色素を添加することができます。最後に、ここに示すように、透過型電子顕微鏡を使用してサンプルを調製し、より高い分解能でイメージングすることもできます。この手順を試みる際には、サンプルの不安定性に注意し、固定、切片化、または再水和によって蛍光アーチファクトや構造アーチファクトが生じる可能性に注意することが重要です。これは、データの解釈に影響を与える可能性があります。この手順により、蛍光レポーターの発現プロファイルを形態学的特徴やバイオフィルムのZ軸と相関させるなど、定量的な画像解析が可能になります。このプロトコルは、緑膿菌、コレラ菌、枯草菌など、医学的および産業的に重要なバイオフィルム形成微生物の多様な種に適用できます。このビデオを見れば、パラフィン包埋による切片化のためのコロニーバイオフィルムの育成方法と調製方法について十分に理解できるはずです。

paraffin-embedding-thin-sectioning-microbial-colony-biofilms-for

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

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パラフィン包埋と顕微解析の微生物コロニーバイオフィルムの薄い断面

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