Name: 形態形成、パターニング、および細胞分化の初期段階を理解するためのニワトリ組換え四肢アッセイ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-01-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 8 s
Description: 学ぶニワトリ組換え四肢アッセイによる細胞分化と形態形成の機構。胚性シグナルの影響をin vivoで解析し、再生医療や発生生物学研究への応用可能性を示す。

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図2の画像についてはエステファニア・ガライ=パチェコに、アートワークについてはマリア・ヴァレリア・キマル=モンテス・デ・オカに感謝します。この研究は、JC-Mに授与されたメキシコ国立自治大学(DGAPA)と、JC-Mに授与されたConsejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT) [助成金番号1887 CONACyT-Fronteras de la Ciencia]によって支援されました。JC M-Lは、Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología(CONACyT-Fronteras de la Ciencia-1887)からポスドクフェローシップを授与されました。

この研究は、メキシコ国立オートノーマ大学(UNAM、メキシコ、メキシコ)の実験動物の世話と使用のための治験審査委員会によってレビューされ、承認されました。このプロトコルの一般的なステップの概略フローチャートを 図1Aに示す。
1. 胚の孵化と生存率の決定
<ol><li>受精した鶏の卵を38°C、相対湿度60%で約3日半孵化させ、22HH段階に達するまで(Hamilton and Hamburger, 1951による)16。 注:受精したての鶏卵は、15°Cで最大1週間保存できます。<ol>
<li>受精卵を孵化させるには、尖った面を下にして卵を加湿インキュベーターに入れます。発達中の胚が卵殻膜に付着するのを防ぐために必要なので、孵卵中に卵を回転させる。 注:受精鶏の卵は地元の農場から入手することができます。受精したホワイトレグホーン鶏の卵は、一般的に後期胚の羽毛の色素沈着を避けるために使用されています。(1)四肢中胚葉細胞、(2)四肢外胚葉、および(3)RLを移植するドナー胚の3つの構造を得るために、十分な卵子を別々に孵化させることを検討してください。</li>
	</ol>
</li>
	<li>3日半のインキュベーションの後、インキュベーターから卵を取り出し、70%エタノールで綿棒で拭き取り、風乾させる。</li>
	<li>血管を観察し、胚を見つけるために卵子を傾けている発達中の胚を特定する。胚を持たない卵子を捨てる。 注:この時点で、卵を分配して中胚葉系細胞、外胚葉、およびRLの宿主を取得します。</li>
</ol>2.外胚葉を埋めるための四肢中胚葉細胞の取得
注:操作を開始する前に、作業領域、顕微鏡、およびすべての機器を70%エタノール溶液で拭き取って消毒することを強くお勧めします。
<ol><li>鈍い鉗子の端で卵殻の鈍い端をタップして窓を開き、鉗子を使って約1 cm x 1 cmの殻を取り除きます。</li>
	<li>卵をプラスチックまたはカートンホルダーに移し、実体顕微鏡の下に1つずつ置きます。空気膜を特定し、容器が見つからない小さな穴を選んで取り除きます。細かい外科用鉗子の助けを借りてこの領域を引っ張ります。 注:空気膜は、卵を窓を開けた直後に観察された白くて不透明な膜として識別することができます。<ol>
<li>胚と接触する可能性のある卵殻の小片を取り除きます。 注: プロトコルを開始する前に、胚が 22 HH 段階にあることを確認してください。初期段階の胚は、卵殻窓をテープで密封した後、インキュベーターに戻すことができる。</li>
	</ol>
</li>
	<li>細かい外科用鉗子を使用して羊膜を引き裂いて羊膜嚢を完全に開きます( 材料表を参照)。 注:羊膜は、胚を密接に覆い、羊水で満たされた透明な膜として識別することができる。</li>
	<li>一対の鈍い鉗子を使用して卵から胚を慎重に取り出し、氷冷リン酸緩衝生理食塩水(1x PBS)を含む滅菌ペトリ皿に移す。残りの卵についてこの手順を繰り返します。〜8〜10個の胚のみが中胚葉系細胞を得るのに十分であると考えてください。</li>
	<li>胚を氷冷1x PBSで1回洗浄し、実体顕微鏡( 材料表を参照)の助けを借りて、残りの膜を撤回する。後肢の芽を見つけます。 注:四肢芽は、胚の前後軸に沿って側面からの突起として位置する丸みを帯びた構造である。後肢は前肢よりも後方に位置しています。</li>
	<li>胚を清潔な1x PBSに維持し、一対の微細な外科用鉗子を用いて、各後肢の芽を縦方向に切り取る。胚の側面に非常に近い芽を切って、後肢の芽全体を解剖する。残りの胚でこの手順を繰り返します。</li>
	<li>プラスチック製の移送ピペットを使用して、四肢の芽を空の1.5 mLマイクロ遠心チューブに移します。</li>
	<li>ピペットチップを使用して、過剰の1x PBSを除去し、PBSを500 μLの0.5%トリプシン溶液と交換します( 材料表を参照)。四肢の芽をサーモブロック中で37°Cで7分間インキュベートする。</li>
	<li>トリプシン溶液を取り出し、ハンクス平衡塩溶液中の2mg/mLで500μLのコラゲナーゼIV型と交換し( 材料表を参照)、37°Cのサーモブロック中で8分間インキュベートする。 注:トリプシンインキュベーションは外胚葉をわずかに剥離し、コラゲナーゼは中胚葉系細胞を分解する。</li>
	<li>インキュベーション後、できるだけ多くのコラゲナーゼを除去し、10%ウシ胎児血清(FBS)を添加した1mLの冷たいダルベッコの改変イーグル中高グルコース(DMEM-HG)培地と交換して酵素を失活させます。混合物を穏やかに〜10回ピペットする。</li>
	<li>細胞を含む懸濁液を70μmのセルストレーナーでろ過し、外胚葉を残します。 注:ろ過はまた、未消化の四肢の芽を除去し、単一細胞の懸濁液を残す。</li>
	<li>濾過後、懸濁液を再び5〜10回ピペットし、室温で200 x g で5分間遠心分離し、次いで上清を捨てる。</li>
	<li>10%FBSを添加したDMEM-HG1mlを使用して、余分なコラゲナーゼを洗浄する。懸濁液を200 x g で室温で5分間遠心分離する。</li>
	<li>培地をピで慎重に廃棄し、チューブの底部の細胞を乱すことなく、10%FBSを添加した1mLの新鮮なDMEM-HGと交換してください。</li>
	<li>細胞をサーモブロック中で37°Cで1〜1.5時間インキュベートした後、細胞がコンパクトなペレット(再凝集)を形成するのを許す。 注:中胚葉系細胞がペレットを形成している間、四肢外胚葉を得るのが便利である。</li>
</ol>3.四肢外胚葉の取得
<ol><li>セクション2のステップ1〜6を、外胚葉を得るために選択された他の22個のHHニワトリ胚と別々に繰り返す。 注:この目的のための胚の数は、所望のRLの最終数に比例する。2:1の外胚葉-RLの比率が適切である。</li>
	<li>後肢の芽を得た後、プラスチックピペットを使用して空の微量遠心チューブに移します。過剰の1x PBSを除去し、滅菌1x PBS中の500 μLの0.5%トリプシンと交換する。混合物をサーモブロック中で37°Cで30分間インキュベートする。</li>
	<li>酵素消化後、四肢の芽を含むトリプシン溶液を滅菌ペトリ皿に移す。</li>
	<li>マイクロピペットを使用して余分なトリプシンをできるだけ除去する;すべての四肢の芽が覆われるまで、FBSの10%を補充した氷冷1x PBSでペトリ皿を浸します。 注:FBSは馬の血清の代わりにすることができます。</li>
	<li>実体顕微鏡下で四肢の芽を同定する;外胚葉を四肢中胚葉系細胞からわずかに剥離した透明な膜として同定する(図1B)。</li>
	<li>細かい外科的鉗子の助けを借りて四肢芽の最も近位端を保持し、他の鉗子を使用して外胚葉層を慎重に剥離および分離する。 注:外胚葉の入手は、中胚葉系の細胞が凝集して外胚葉に付着するため、粘着性になるため、困難な場合があります。ペトリ皿の外胚葉のみを維持するために、中胚葉系細胞を常に捨てることが推奨される。</li>
	<li>外胚葉を氷冷1x PBS-10%FBS溶液で維持する。 注:外胚葉は、再凝集した中胚葉が準備ができていない場合に備えて、4°Cで保存することができます。ただし、ペレットのインキュベーション時間を外胚葉系で調整することが好ましい。</li>
</ol>4. 外胚葉系カバー内の中胚葉系細胞の組み立て
注:このためには、中胚葉系細胞の形成されたペレットを含む滅菌1x PBS-10%FBS溶液を含むペトリ皿に空の外胚葉を有することが必要である。
<ol><li>ペレットが形成された後(セクション2を参照)、ピによってチューブから約600μLの培地を捨てる。</li>
	<li>ペレットをピペットチップを使用して、粉砕または破壊することなく、慎重に底から取り外します。</li>
	<li>ペレットがチューブの底部から完全に剥離したら、チューブを逆さまにして、空の外胚葉を含むペトリ皿にペレットを移します(図1C)。</li>
	<li>一対の細かい外科用鉗子の助けを借りてペレットの小片を切断し、それをできるだけ外胚葉の近くに置く。</li>
	<li>それが袋であるかのように、外胚葉を外科用鉗子で開き、ペレット片を外胚葉カバーにできるだけしっかりと入れます。必要な数のRLに対してこの手順を繰り返します(図1D)。 注:ペレットの小片を1つずつ切り、外胚葉を満たして1x PBS-10%FBS溶液を清潔に保ちます。ペレットのサイズは、各外胚葉に対応する必要があります。</li>
	<li>外胚葉と中胚葉を室温で約30分間一緒に治癒させ、胚宿主に移植する。未使用の外胚葉および中胚葉を捨てる。</li>
</ol>5. 充填された外胚葉の宿主胚への移植 
 
注:外胚葉を移植する前に、2つの実体顕微鏡をベンチトップに隣り合わせに配置し、1つは胚操作とRL移植用です。もう一つは、充填された外胚葉を胚に移植する準備ができている状態を維持するためである。
<ol><li>充填された外胚葉を移植するために所望の卵の数を選択する。</li>
	<li>鈍い鉗子の端を使って、22個のHH宿主胚の卵殻をタップして窓を開きます。空気膜を特定し、一対の微細な外科用鉗子を使用して、それを完全に除去する。</li>
	<li>前肢近くの羊膜嚢を開き、胚の右脇腹を露出させる。手順を実行するために必要な金額のみを開きます。</li>
	<li>前肢の位置に導かれて、タングステン針( 材料表を参照)で2〜3個のソマイトの長さまで創傷掻き傷を行い、出血するまで中胚葉をわずかに損傷する。</li>
	<li>充填された外胚葉(RL)を雛胚に個別に移し、組換え四肢の基部をソマイト創傷の上に置く。 メモ:RL転送は、プラスチックピペットまたは斜めのスリットナイフで行うことができます。</li>
	<li>直径0.025mm、長さ0.5~1mmのパラジウム線2本でRLを正しく固定します( 材料表を参照)。RLの基部を創傷に合わせ、RLが宿主胚の側面に付着し、血管化されることを確認する(図1E)。</li>
	<li>窓をテープで密封し、卵をインキュベーターに戻します。分析のために所望の時点で胚を収集する。</li>
</ol>

<ol><li>Malashichev, Y., Christ, B., Pröls, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Avian+pelvis+originates+from+lateral+plate+mesoderm+and+its+development+requires+signals+from+both+ectoderm+and+paraxial+mesoderm%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+and+Tissue+Research%22%5BJournal%5D)">Avian pelvis originates from lateral plate mesoderm and its development requires signals from both ectoderm and paraxial mesoderm.</a> Cell and Tissue Research. 331 (3), 595-604 (2008).</li>
<li>Mahmood, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+role+for+FGF-8+in+the+initiation+and+maintenance+of+vertebrate+limb+bud+outgrowth%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">A role for FGF-8 in the initiation and maintenance of vertebrate limb bud outgrowth.</a> Current Biology. 5 (7), 797-806 (1995).</li>
<li>Yu, K., Ornitz, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FGF+signaling+regulates+mesenchymal+differentiation+and+skeletal+patterning+along+the+limb+bud+proximodistal+axis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">FGF signaling regulates mesenchymal differentiation and skeletal patterning along the limb bud proximodistal axis.</a> Development. 135 (3), 483-491 (2008).</li>
<li>Riddle, R. D., Johnson, R. L., Laufer, E., Tabin, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sonic+hedgehog+mediates+the+polarizing+activity+of+the+ZPA%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Sonic hedgehog mediates the polarizing activity of the ZPA.</a> Cell. 75 (5), 1401-1416 (1993).</li>
<li>McQueen, C., Towers, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+the+pattern+of+the+vertebrate+limb%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Establishing the pattern of the vertebrate limb.</a> Development. 147 (17), (2020).</li>
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<li>Fernandez-Teran, M., Piedra, M. E., Ros, M. A., Fallon, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+recombinant+limb+as+a+model+for+the+study+of+limb+patterning%2C+and+its+application+to+muscle+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+and+Tissue+Research%22%5BJournal%5D)">The recombinant limb as a model for the study of limb patterning, and its application to muscle development.</a> Cell and Tissue Research. 296 (1), 121-129 (1999).</li>
<li>Hamburger, V., Hamilton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+series+of+normal+stages+in+the+development+of+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Morphology%22%5BJournal%5D)">A series of normal stages in the development of the chick embryo.</a> Journal of Morphology. 88 (1), 49-92 (1951).</li>
<li>Ganan, Y., Macias, D., Duterque-Coquillaud, M., Ros, M. A., Hurle, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+TGF+beta+s+and+BMPs+as+signals+controlling+the+position+of+the+digits+and+the+areas+of+interdigital+cell+death+in+the+developing+chick+limb+autopod%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Role of TGF beta s and BMPs as signals controlling the position of the digits and the areas of interdigital cell death in the developing chick limb autopod.</a> Development. 122 (8), 2349-2357 (1996).</li>
<li>Ros, M. A., Simandl, B. K., Clark, A. W., Fallon, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+manipulating+the+chick+limb+bud+to+study+gene+expression%2C+tissue+interactions%2C+and+patterning%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology+Protocols%22%5BJournal%5D)">Methods for manipulating the chick limb bud to study gene expression, tissue interactions, and patterning.</a> Developmental Biology Protocols. 137, 245-266 (2000).</li>
<li>MacCabe, J. A., Saunders, J. W., Pickett, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+control+of+the+anteroposterior+and+dorsoventral+axes+in+embryonic+chick+limbs+constructed+of+dissociated+and+reaggregated+limb-bud+mesoderm%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">The control of the anteroposterior and dorsoventral axes in embryonic chick limbs constructed of dissociated and reaggregated limb-bud mesoderm.</a> Developmental Biology. 31 (2), 323-335 (1973).</li>
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</ol>

著者らは開示するものは何もありません。

一般に、RLプロトコルは、(1)胚のインキュベーション、(2)外胚葉を埋める四肢中胚葉細胞の取得、(3)外胚葉の取得、(4)外胚葉カバーの内部に中胚葉細胞を組み立てる、および(5)充填された外胚葉の宿主胚への移植の5つのステップに分けることができる。RL 手法の主な制限は、長くて詳細なプロトコルであり、適切に実行するために忍耐を必要とする多くの重要なポイントがあります。プロトコルを正常に完了するには、重要な瞬間を特定する必要があります。中胚葉系細胞の調達中、細胞の完全性および生存率は不可欠である。細胞死は適切なRL発達を妨げる。同様の静脈において、中胚葉系細胞と外胚葉系細胞との間の相互作用を保証するために、正しい外胚葉操作が必要である。外胚葉が詰め込まれるとき、中胚葉系細胞はAERの下の遠位外胚葉にできるだけ近づかなければならない。中胚葉系および外胚葉系の両方の調達にとって、ドナー胚の発生段階も重要である。中胚葉系細胞は、その発達段階に応じて差次的に応答すると考える必要があります。ただし、現像段階は実験要件に応じて自由に選択することができる。それでも、外胚葉の取得を容易にし、細胞の完全性とシグナル伝達を維持するために、22HH期を維持す...

脊椎動物の四肢は、細胞分化、細胞増殖、細胞死、パターン形成、および形態形成を研究するための手ごわいモデルである1,2。発生中、四肢は側板中胚葉1に由来する細胞から膨らみとして出現する。四肢芽は、外胚葉で覆われた中胚葉系細胞の中心核からなる。この初期の構造から、丸ごと整った四肢が出現する。四肢の蕾が生じた後、(1)近位 - 遠位軸([PD]肩から指へ)、(2)背腹側軸([DV]手の甲から手のひらまで)、および(3)前後軸([AP]親指から指へ)の3つの軸が認識される。近位 - 遠位軸は、四肢芽の遠位先端に位置する特殊な外胚葉である頂端外胚葉隆起(AER)に依存する。AERは、伸長、生存維持、増殖、およびシグナル2,3を受け取る細胞の未分化状態に必要である。一方、偏光活性ゾーン(ZPA)は前後パターニング4を制御し、背側および外胚葉は背側腹部パターニング7、8を制御する。3次元パターニングの統合は、これら3つの軸5間の複雑なクロストークを意味する。四肢の発達中の分子経路を理解しているにもかかわらず、四肢全体を形成するためのパターニングと適切な伸長を制御するメカニズムに関する未解決の疑問は未解決のままである。
Edgar Zwilling は 1964 年に組換え四肢 (RL) システムを開発し、発達中の四肢における四肢間葉系細胞と外胚葉との相互作用を研究しました6.RLシステムは、解離・再凝集した四肢芽中胚葉を胚性四肢外胚葉に組み立て、ドナーの雛胚の背部に移植する。外胚葉によって提供されるシグナルは、時空間的に分化遺伝子およびパターニング遺伝子の発現を誘導し、したがって、四肢発生中に起こる細胞プログラムを反復することができる四肢様構造の形成を誘導する7,8,9。
RLモデルは、四肢成分の性質および中胚葉系細胞と外胚葉系細胞との間の相互作用を理解するのに有用である6。RLは、外胚葉カバー6の内部で四肢芽中胚葉細胞を実験的に組み立てまたは再結合することによって作成された四肢様構造として定義することができる。RLの形態形成は、外胚葉系パターニングシグナルに応答する中胚葉系細胞(または他のタイプ)の特性に依存する。この実験システムの利点の1つは、その汎用性である。この特性は、異なる発生段階からの細胞、四肢に沿った異なる位置からの細胞、または全体(解離していない)または再凝集した細胞7、8、9、10などの中胚葉系細胞の供給源を変えることによって、複数の組み合わせの作成を可能にする。別の例は、ニワトリ以外の種、例えばカメ11、ウズラ、またはマウス12から胚性外胚葉を得る能力である。
この意味で、RL技術は、四肢の発達と四肢間葉系細胞と外胚葉系細胞との間の相互作用を進化的観点から研究するのに役立ちます。この技術はまた、胚性外胚葉12、13、14によって提供されるシグナルを利用して四肢様構造に分化する前駆細胞の異なる供給源の能力を分析するための大きな可能性を秘めている。インビトロ培養とは対照的に、RLは、発達中の四肢からの胚性シグナルを解釈することによって、細胞集団の分化および形態形成能を評価することを可能にする9,15。
このプロトコルでは、再凝集した中胚葉性四肢芽細胞を用いてRLを成功させるためのステップバイステップガイドが提供され、したがって、このプロトコルを異なる再凝集細胞源または異なる外胚葉源と適合させる可能性を開く。

<table><tbody><tr><td>アルシアンブルー8GX</td><td>シグマ</td><td>A5268</td><td></td></tr>角度<tr><td>付きスリットナイフ</td>アル<td>コン</td><td>2.75mmDB</td><td></td></tr><tr><td>鈍い鉗子</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>11052-10</td><td></td></tr>コ<tr><td>ラゲナーゼIV型</td><td>Gibco</td><td>1704-019</td><td></td></tr><tr><td>DMEM-HG</td><td>シグマ</td><td>D5796</td><td></td></tr><tr><td>卵インキュベーター</td>メキシコ<td>Incumatic1000</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>Gibco</td><td>16000069</td><td></td></tr><tr><td>Fine surgical Forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>9115-10</td><td></td></tr><tr><td>Hanks Balanced Salt Solution</td><td>Sigma</td><td>H6648</td><td></td></tr><tr><td>Microcentrifuge</td><td>Eppendorf</td><td>5417R</td><td></td></tr><tr><td>Micropipet</td><td>NA</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Palladium wire</td><td>GoodFellow</td><td>7440 05-3</td><td></td></tr><tr><td>ペトリ皿</td><td>ネスト</td><td>705001</td><td></td></tr><tr><td>ピペット</td><td>crmglobe</td><td>PF1016</td><td></td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>ツァイス</td><td>ステミ DV4</td><td></td></tr><tr><td>テープ</td><td>NA</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>トリプシン 豚</td><td>メルク</td><td>9002 07-7</td><td></td></tr><tr><td>タングステン針</td><td>GoodFellow</td><td>E74-15096/01</td><td></td></tr></tbody></table>

形態形成、パターニング、および細胞分化の初期段階を理解するためのニワトリ組換え四肢アッセイ

Chicken Recombinant Limbs Assay to Understand Morphogenesis, Patterning, and Early Steps in Cell Differentiation

細胞分化は、発達中の組織および器官の確立中に異なる特殊な細胞型の形成につながる細胞コミットメントの微調整されたプロセスである。このプロセスは成人期に積極的に維持されます。細胞分化は、器官の発生および恒常性維持の間の進行中のプロセスである。細胞分化の初期段階を理解することは、形態形成などの他の複雑なプロセスを知るために不可欠です。したがって、組換えニワトリ四肢は、胚パターニングシグナル下での細胞分化およびパターン生成の研究を可能にする実験モデルである。この実験モデルは 、in vivo 環境を模倣しています。それは初期の四肢の芽から得られた外胚葉性のカバーに再凝集した細胞を組み立てる。その後、外胚葉は、その発達を可能にするために、ひよこの胚受容体に移植および移植される。このアッセイは、主に中胚葉性四肢芽細胞を評価するために使用された。しかし、それは他の生物からの他の幹または前駆細胞に適用することができる。

よくできた組換え四肢の認識 移植後、操作された胚をインキュベーターに戻し、RLが発達するようにした。インキュベーション時間は、実験の要件と相関していた。それにもかかわらず、RLは移植の12時間後に容易に区別することができる。移植が適切であったかどうかを決定するために、RLはドナー胚の中胚葉壁に確実に付着した隆起として観察された(図2A)。それどころか、細胞生存率および/または移植片のいずれかが失敗したかどうかにかかわらず、RLは中胚葉壁から剥離したか、または大まかな形態を示した(図2B)。
組換え四肢の形態学的およびパターニング検査 形態学的検査のために、RLをアルシアンブルー17 で染色し、骨格要素の形成およびそれらのパターニングを観察した。処置中にRLを逃さないようにドナー胚の体幹全体を染色することが推奨される(<strong cla...

組換え四肢は、細胞分化の過程と胚シグナルの影響下でのパターンの生成を研究することを可能にする強力な実験モデルである。このプロトコルは、異なる生物から得られた他の細胞型に適応可能なニワトリ四肢 - 中胚葉系細胞を有する組換え四肢を生成するための詳細な方法を提示する。

Cell differentiation is the fine-tuned process of cell commitment leading to the formation of different specialized cell types during the establishment of ...

組換え四肢は、in vivo環境における胚性シグナルの影響下での細胞分化およびパワー形成の過程における研究のための強力なモデルである。このアッセイは、鶏肢の発生生物学に限定されることなく、潜在的な用途を可能にする複数のバリエーションを可能にします。これは、他の生物からの他の茎または前駆者に適用することができる。まず、3日半後にインキュベーターから卵を取り出し、70%エタノールで綿棒で拭き取り、風乾させてください。次に、卵子を傾けて血管を観察することによって、発達中の胚を特定し、位置を特定する。胚を持たない卵子を捨てる。一対の鈍い鉗子の端で卵の殻の鈍い端をタップして窓を開き、鉗子を使って殻の約1平方センチメートルを取り除きます。その後、卵をプラスチックまたはカートンホルダーに移します。卵を実体顕微鏡の下に置きます。空気膜を特定し、容器のない領域に小さな穴を開けて取り除きます。細かい外科用鉗子の助けを借りてこの領域を引き出し、胚と接触している卵殻の破片を取り除きます。羊膜嚢を細かい外科用鉗子で裂く。鈍い鉗子で卵から胚を慎重に取り出し、氷冷した1x PBSを含む滅菌ペトリ皿に移す。氷冷1x PBSで胚を一度洗浄し、残りの膜を実体顕微鏡下で取り出す。次に、後肢の芽を見つけます。各後肢の芽を縦方向に切り取り、胚の側面に非常に近いものを細かい外科的鉗子で切断する。胚を1x PBSで維持する。次に、四肢の芽をプラスチック転写ピペットで1.5ミリリットルのマイクロ遠心チューブに移します。次に、PBSを500マイクロリットルの0.5%トリプシン溶液と交換する。四肢の芽をサーモブロックで摂氏37度で7分間孵化させる。次いで、トリプシン溶液をHBSS中の4型コラゲナーゼ1ミリリットル当たり2ミリグラムの500マイクロリットルと交換し、それをサーモブロック中でさらに8分間インキュベートする。できるだけ多くのコラゲナーゼを除去し、1ミリリットルの低温高グルコースDMEMと10%FBSと交換して酵素を失活させる。混合物を10回程度穏やかにピペットで挽く。細胞を含む懸濁液を70マイクロメートルの細胞ストレーナーでろ過し、外胚葉を残します。懸濁液を再び5〜10回程度ピペットし、室温で5分間200倍gで遠心分離した。その後、上清を捨てる。余分なコラゲナーゼを1ミリリットルの培地で洗浄し、懸濁液を遠心分離し、培地を慎重に廃棄する。次に、細胞を乱すことなく1.5ミリリットルの培地を加え、サーモブロック内で摂氏37度で1〜1.5時間インキュベートし、細胞がコンパクトなペレットを形成できるようにします。後肢の芽を得た後、プラスチックピペットで空のマイクロ遠心チューブに移す。余分な1x PBSを除去し、滅菌1x PBS中の500マイクロリットルの0.5%トリプシンと交換する。混合物をサーモブロック中で摂氏37度で30分間インキュベートする。四肢の芽を持つトリプシン溶液を滅菌ペトリ皿に移す。その後、余分なトリプシンをできるだけ多く取り除き、すべての四肢の芽が覆われるまで、氷冷した1x PBSを10%FBSでペトリ皿に浸します。実体顕微鏡下で四肢の芽を特定する。次に、外胚葉を四肢中胚葉系細胞からわずかに剥離した透明な膜として同定する。細かい外科的鉗子で四肢芽の最も近位端を保持する鉗子で外胚葉を切り離して分離する。前のステップから中胚葉ペレットを取り、約600マイクロリットルの培地を捨てる。その後、ペレットを粉砕せずにピペットチップで慎重に取り外します。チューブを逆さまにして、空の外胚葉を含むペトリ皿にペレットを移します。ペレットの小片を一対の細かい外科用鉗子で切断し、外胚葉にできるだけ近づける。外胚葉を外科用鉗子で開き、ペレットを外胚葉ホールにできるだけしっかりと置きます。前肢近くの羊膜嚢を開き、胚の右脇腹を露出させる。前肢の位置に導かれて、タングステン針で2〜3個のソマイトの長さに創傷引っ掻き傷を行い、出血するまで中胚葉をわずかに損傷する。組換え肢を雛胚に個々に移し、その基部をソマイト創傷の上に置く。組換え肢を2本のパラジウム線で正しく固定します。組換え四肢の基部を創傷に合わせる。窓をテープで密封し、卵をインキュベーターに戻します。移植の成功において、組換え四肢は、ドナー胚の中胚葉壁に確実に付着した隆起として観察された。それどころか、組換え四肢は中胚葉壁から剥離したか、または細胞生存率または移植片のいずれかが失敗したときに大まかな形態を示した。アルシアンブルー染色は、6日間のニワトリ、ニワトリ組換え四肢において骨格要素を示した。アルシアンブルーをクリアする前に、形態学的および定量的測定のためにエタノール中の画像が得られた。H&E染色または染色されていない四肢をスライスし、組織および細胞を観察した。この技術は、インビボで四肢オルガノイドを開発し、異なる供給源または種からの幹細胞を使用して細胞分化または形態形成プロセスを研究することができる。

chicken-recombinant-limbs-assay-to-understand-morphogenesis

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

このビデオでは、in situハイブリダイゼーション2色全体のマウント、2つの異なる遺伝子の空間的および時間的発現パターンは、若いニワトリ胚で可視化することができる方法を示しています。このメソッドは当​​初、Davidウィルキンソン、ドミンゴスエンリケ、フィルインガムとデビッドイシュ-...

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神経誘導、脳の形成の最初のステップです。それはヘンゼンのノード（主催者）は、神経の運命を採用する隣接する組織に指示するメカニズムである、神経系を生じさせるために、すなわち。このビデオでは、ニワトリ胚における神経誘導のためのアッセイを示しています。...

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頭蓋顔面の開発時には外胚葉上皮のシグナリング特性を評価する

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初期のニワトリ胚の形態形成の組織の変形を追跡

成長因子またはシグナル伝達経路の特定の阻害剤に浸したビーズを発生中の胚に移植することにより、それらの効果を生体内で直接テストすることが可能です。このプロトコルでは、ビーズを四肢の芽に移植して、これらの分子が遺伝子発現とシグナル伝達に及ぼす影響を決定します。...

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&gt;jove_content&lt;手足の形成に必要なニワトリ胚の本体軸と脇腹の組織間の誘導イベントを阻止するために不透過性バリアを使用するプロトコルが説明されています。候補誘導性シグナルに浸したビーズは、バリア配置の影響を克服するために使用され、遺伝子発現の解析によりこれが確認されています。...

チックに誘導シグナルを研究するために、候補因子浸しビーズと組み合わせることで不浸透性の障壁の応用

浸漬ビーズアッセイは、細胞分化および形態形成の調節を研究するために、任意の発生時点で試験試薬の標的送達を含む。任意の実験動物モデルに適用可能な、3つの異なるタイプの浸漬ビーズを調製し、これらをニワトリ胚の桁間に移植するための詳細なプロトコールが提示される。...

浸漬ビーズアッセイを用いたニワトリ胚発生時の細胞分化、形態形成、パターニングの解析

ここでは、組織相互作用、4Dイメージング、タイムラプス動画(3Dプラス時間)、分子機能のグローバルまたはローカル摂動、およびシステム生物学の特性評価を調べるために使用できる3種類の鳥類胚性皮膚外植片培養のプロトコルについて説明します。...

鳥類の皮膚外植片を用いた組織パターン形成と器官形成の研究

この研究では、ゼブラフィッシュの幼生に対してEvans Blue Dye(EBD)分析を行う簡単な方法について説明します。...

エバンスブルー色素でゼブラフィッシュ幼生骨格筋の整合性の分析

Xenopusの胚では、胚盤胞の屋根からの細胞は多能性であり、さまざまな組織を生成するようにプログラムすることができます。ここでは、両生類の胚盤胞の屋根外植片をアッセイシステムとして使用するプロトコルについて説明し、初期の神経発達の主要なin vivoおよびin...

幹細胞様<em&gt;アフリカツメガエル</em&gt;胚外植片を早期神経発達の特徴を研究するために<em&gt;インビトロ</em&gt;と<em&gt;インビボ</em

学ぶニワトリ組換え四肢アッセイによる細胞分化と形態形成の機構。胚性シグナルの影響をin vivoで解析し、再生医療や発生生物学研究への応用可能性を示す。

形態形成、パターニング、および細胞分化の初期段階を理解するためのニワトリ組換え四肢アッセイ

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